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Article de méthode

Imagerie non invasive de la réponse immunitaire innée dans un modèle de poisson zèbre larves de

10.7K vues

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DOI :

10.3791/52788

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21 avril 2015

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Dans cet article

Résumé

Ici, nous présentons un protocole pour la génération et l’imagerie d’une infection bactérienne localisée dans la vésicule otique du poisson zèbre.

Résumé

L'agent pathogène aquatique, Streptococcus iniae, est responsable de plus de 100 millions de dollars de pertes annuelles pour l'industrie de l'aquaculture et est capable de provoquer une maladie systémique dans les deux poissons et les humains. Une meilleure compréhension de S. maladie iniae pathogénie nécessite un système de modèle approprié. La traçabilité génétique et la transparence optique des premiers stades de développement du poisson zèbre pour permettre la génération et l'imagerie non-invasive de lignées transgéniques avec étiqueté par fluorescence des cellules immunitaires. Le système immunitaire adaptatif est pas complètement fonctionnel jusqu'à plusieurs semaines après la fécondation, mais larves de poisson zèbre ont un système immunitaire inné de vertébré conservé à la fois les neutrophiles et les macrophages. Ainsi, la génération d'un modèle d'infection larvaire permet l'étude de la contribution spécifique de l'immunité innée dans le contrôle de S. infection iniae.

Le site de micro-injection permettra de déterminer si une infection estsystémique ou localisée initialement. Ici, nous présentons nos protocoles pour l'injection de vésicule otique du poisson zèbre âgés de 2-3 jours après la fécondation ainsi que nos techniques d'imagerie confocale de fluorescence de l'infection. Un site d'infection localisée permet l'observation de l'invasion microbienne initiale, recrutement des cellules hôtes et la diffusion de l'infection. Nos résultats en utilisant le modèle des larves de poisson zèbre de S. iniae infection indiquent que le poisson zèbre peut être utilisé pour examiner les différents apports de neutrophiles et les macrophages d'accueil dans les infections bactériennes localisées. En outre, nous décrivons comment photomarquage des cellules immunitaires peut être utilisé pour suivre le destin des cellules hôte individuel au cours de l'infection.

Introduction

Streptococcus iniae est un agent pathogène aquatique majeur qui est capable de provoquer une maladie systémique dans les poissons et les humains 1. Bien que S. iniae est responsable de pertes importantes dans l'industrie de l'aquaculture, ce est aussi un agent pathogène zoonotique potentiel, capable de provoquer une maladie chez les hôtes humains immunodéprimés atteints de pathologies cliniques similaires à ceux causés par d'autres agents pathogènes humains streptocoques. Compte tenu de ses similitudes avec des agents pathogènes humains, il est important d'étudier S. iniae pathogenèse des maladies dans le contexte....

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Protocole

Adultes et embryonnaires poisson zèbre ont été maintenus en conformité avec l'Université du Wisconsin-Madison recherche Ressources Animales Center.

1. Préparation de microinjection Aiguilles

  1. Préparer aiguilles d'injection capillaire en verre de paroi mince (1,0 OD / 0,75 ID) en utilisant un dispositif micropipette extracteur avec les paramètres suivants: pression d'air 200, la chaleur 502, tirez 90, vitesse 80, heure 70, heure de l'air au début de la traction 5, temps d'antenne à la fin de la traction 5.
  2. En utilisant des pinces fines, détacher la pointe de l'aiguille tiré sorte que l'ouvert....

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Résultats

Microinjection de S. iniae dans la vésicule otique (Figure 1 et Figure 2) conduit à une réponse de l'hôte initialement localisée. Lorsqu'elle est injectée correctement, les bactéries doivent seulement être vu dans la vésicule otique et non dans le tissu ou le sang environnant. Ceci peut être visualisé au cours de la micro-injection en utilisant un colorant rouge de phénol (figure 1A). Alternativement, si bactéries marquées sont injectées, une analyse ra.......

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Discussion

La méthode d'infection utilisé ici est utile pour l'étude de la réponse immunitaire de l'hôte à une infection localisée initialement dans 2 à 3 dpf embryons et les larves. La mise au point d'un stimulus inflammatoire, comme une infection, dans une cavité fermée de telle sorte que la vésicule otique permet l'étude de la chimiotaxie de neutrophiles et de macrophages et de phagocytose. Une mise en garde de l'injection de bactéries dans la vésicule otique est que la capacité des neutrophiles à phagoc.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs déclarent qu’ils n’ont pas d’intérêts financiers concurrents.

Remerciements

Les auteurs tiennent à remercier les membres du laboratoire pour les soins de poisson zèbre et la maintenance. Ce travail a été soutenu par les National Institutes of Health, National Service Award recherche A155397 à EA Harvie et NIH R01GM074827 à Anna Huttenlocher.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
1,7 ml EppendorfsMidSciAVSS1700
14 ml Tube FalconBD Falcon352059
27 G x ½ ; aiguille BDBiosciences305109
plaque à 96 puitsCorning Incorporated3596
AgarBD Biosciences214030
Sondes moléculaires rouges CellTracker, InvitrogenC34552
CNA agarDot Scientific, Inc7126A
Pipettes de transfert jetablesFisher Scientific13-711-7m
Lunette de dissectionNikonSMZ745
DMSOSigma AldrichD2650
Ethanol 200 proofMDS2292
Pince à épiler fine Science Tools11251-20
Peigne gelVWR27372-4824,2 mm de largeur, 1,5 mm d’épaisseur
à fond en verreFabriqué sur mesure en perçant un trou de 16 à 18 mm au centre d’un fond de plat de culture tissulaire de 35 mm et en plaçant une lamelle ronde #1 de 22 mm dans le trou et en scellant avec une fine couche d’adhésif optique Norland 68 durci à la lumière UV.
GlycérolFisher ScientificG33-4
Agarose à haut point de fusionDenville Scientific, Inc.CA3510-6
Peroxyde d’hydrogèneFisher ScientificH325
Microscope confocal à balayage laserOlympusavec système
Agarose à bas pointde fusion FisherBP165-25
Support magnétiqueTritech (Narishige)GJ-1
Système de micro-injectionParkerPicospritzer III
Embouts de pipette à microchargeurEppendorf930001007
MicromanipulateurTritech (Narishige)M-152
Extracteur de micropipettesSutter Instrument CompanyFlaming/Brown P-97
SpectrophotmètreNanodrop Thermo ScientificND-1000
N-Phenylthiourée (PTU)Sigma AldrichP7629
ParaformaldheydeMicroscopie électronique Sciences15710
Boîtes de PétriFisher ScientificFB0875712100 x 15 mm
PhenolSigma AldrichP-4557
Phenol RedRicca Chemoical Company572516
Saline tamponnée au phosphateFisher ScientificBP665-1
Hydroxyde de potassiumSigma AldrichP-6310
PronaseRoche165921
Protease peptoneFluka Biochemika29185
Petite boîte de culture cellulaireCorning Incorporated43016535 x 10 mm
Sudan BlackSigma AldrichS2380
Aiguilles d’injection capillaire en verre à paroi minceWorld Precision Instruments, Inc.TW100-3
Todd HewittSigma Aldrich/Fluka AnalyticalT1438
Tricaïne (3-aminobenzoate d’éthyle)Argent Chemical Laboratory/FinquelC-FINQ-UE-100G
Triton X-100Fisher ScientificBP151-500
Tween 20Fisher ScientificBP337-500
Extrait de levureFluka BiochemikaRéférence 92144
Plats FV-1000

Références

  1. Agnew, W., Barnes, A. C. Streptococcus iniae: An aquatic pathogen of global veterinary significance and a challenging candidate for reliable vaccination. Vet. Microbiol. 122 (1-2), 1-15 (2007).
  2. Danilova, N., Steiner, L. A. B cells devel....

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Réimpressions et autorisations

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