Ici, nous présentons un protocole pour la génération et l’imagerie d’une infection bactérienne localisée dans la vésicule otique du poisson zèbre.
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Article de méthode
Ici, nous présentons un protocole pour la génération et l’imagerie d’une infection bactérienne localisée dans la vésicule otique du poisson zèbre.
L'agent pathogène aquatique, Streptococcus iniae, est responsable de plus de 100 millions de dollars de pertes annuelles pour l'industrie de l'aquaculture et est capable de provoquer une maladie systémique dans les deux poissons et les humains. Une meilleure compréhension de S. maladie iniae pathogénie nécessite un système de modèle approprié. La traçabilité génétique et la transparence optique des premiers stades de développement du poisson zèbre pour permettre la génération et l'imagerie non-invasive de lignées transgéniques avec étiqueté par fluorescence des cellules immunitaires. Le système immunitaire adaptatif est pas complètement fonctionnel jusqu'à plusieurs semaines après la fécondation, mais larves de poisson zèbre ont un système immunitaire inné de vertébré conservé à la fois les neutrophiles et les macrophages. Ainsi, la génération d'un modèle d'infection larvaire permet l'étude de la contribution spécifique de l'immunité innée dans le contrôle de S. infection iniae.
Le site de micro-injection permettra de déterminer si une infection estsystémique ou localisée initialement. Ici, nous présentons nos protocoles pour l'injection de vésicule otique du poisson zèbre âgés de 2-3 jours après la fécondation ainsi que nos techniques d'imagerie confocale de fluorescence de l'infection. Un site d'infection localisée permet l'observation de l'invasion microbienne initiale, recrutement des cellules hôtes et la diffusion de l'infection. Nos résultats en utilisant le modèle des larves de poisson zèbre de S. iniae infection indiquent que le poisson zèbre peut être utilisé pour examiner les différents apports de neutrophiles et les macrophages d'accueil dans les infections bactériennes localisées. En outre, nous décrivons comment photomarquage des cellules immunitaires peut être utilisé pour suivre le destin des cellules hôte individuel au cours de l'infection.
Streptococcus iniae est un agent pathogène aquatique majeur qui est capable de provoquer une maladie systémique dans les poissons et les humains 1. Bien que S. iniae est responsable de pertes importantes dans l'industrie de l'aquaculture, ce est aussi un agent pathogène zoonotique potentiel, capable de provoquer une maladie chez les hôtes humains immunodéprimés atteints de pathologies cliniques similaires à ceux causés par d'autres agents pathogènes humains streptocoques. Compte tenu de ses similitudes avec des agents pathogènes humains, il est important d'étudier S. iniae pathogenèse des maladies dans le contexte....
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Adultes et embryonnaires poisson zèbre ont été maintenus en conformité avec l'Université du Wisconsin-Madison recherche Ressources Animales Center.
1. Préparation de microinjection Aiguilles
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Microinjection de S. iniae dans la vésicule otique (Figure 1 et Figure 2) conduit à une réponse de l'hôte initialement localisée. Lorsqu'elle est injectée correctement, les bactéries doivent seulement être vu dans la vésicule otique et non dans le tissu ou le sang environnant. Ceci peut être visualisé au cours de la micro-injection en utilisant un colorant rouge de phénol (figure 1A). Alternativement, si bactéries marquées sont injectées, une analyse ra.......
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La méthode d'infection utilisé ici est utile pour l'étude de la réponse immunitaire de l'hôte à une infection localisée initialement dans 2 à 3 dpf embryons et les larves. La mise au point d'un stimulus inflammatoire, comme une infection, dans une cavité fermée de telle sorte que la vésicule otique permet l'étude de la chimiotaxie de neutrophiles et de macrophages et de phagocytose. Une mise en garde de l'injection de bactéries dans la vésicule otique est que la capacité des neutrophiles à phagoc.......
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Les auteurs déclarent qu’ils n’ont pas d’intérêts financiers concurrents.
Les auteurs tiennent à remercier les membres du laboratoire pour les soins de poisson zèbre et la maintenance. Ce travail a été soutenu par les National Institutes of Health, National Service Award recherche A155397 à EA Harvie et NIH R01GM074827 à Anna Huttenlocher.
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| Nom | Entreprise | Numéro de catalogue | Commentaires |
|---|---|---|---|
| 1,7 ml Eppendorfs | MidSci | AVSS1700 | |
| 14 ml Tube Falcon | BD Falcon | 352059 | |
| 27 G x ½ ; aiguille BD | Biosciences | 305109 | |
| plaque à 96 puits | Corning Incorporated | 3596 | |
| Agar | BD Biosciences | 214030 | |
| Sondes moléculaires rouges CellTracker | , Invitrogen | C34552 | |
| CNA agar | Dot Scientific, Inc | 7126A | |
| Pipettes de transfert jetables | Fisher Scientific | 13-711-7m | |
| Lunette de dissection | Nikon | SMZ745 | |
| DMSO | Sigma Aldrich | D2650 | |
| Ethanol 200 proof | MDS | 2292 | |
| Pince à épiler fine | Science Tools | 11251-20 | |
| Peigne gel | VWR | 27372-482 | 4,2 mm de largeur, 1,5 mm d’épaisseur |
| à fond en verre | Fabriqué sur mesure en perçant un trou de 16 à 18 mm au centre d’un fond de plat de culture tissulaire de 35 mm et en plaçant une lamelle ronde #1 de 22 mm dans le trou et en scellant avec une fine couche d’adhésif optique Norland 68 durci à la lumière UV. | ||
| Glycérol | Fisher Scientific | G33-4 | |
| Agarose à haut point de fusion | Denville Scientific, Inc. | CA3510-6 | |
| Peroxyde d’hydrogène | Fisher Scientific | H325 | |
| Microscope confocal à balayage laser | Olympus | avec système | |
| Agarose à bas point | de fusion Fisher | BP165-25 | |
| Support magnétique | Tritech (Narishige) | GJ-1 | |
| Système de micro-injection | Parker | Picospritzer III | |
| Embouts de pipette à microchargeur | Eppendorf | 930001007 | |
| Micromanipulateur | Tritech (Narishige) | M-152 | |
| Extracteur de micropipettes | Sutter Instrument Company | Flaming/Brown P-97 | |
| Spectrophotmètre | Nanodrop Thermo Scientific | ND-1000 | |
| N-Phenylthiourée (PTU) | Sigma Aldrich | P7629 | |
| Paraformaldheyde | Microscopie électronique Sciences | 15710 | |
| Boîtes de Pétri | Fisher Scientific | FB0875712 | 100 x 15 mm |
| Phenol | Sigma Aldrich | P-4557 | |
| Phenol Red | Ricca Chemoical Company | 572516 | |
| Saline tamponnée au phosphate | Fisher Scientific | BP665-1 | |
| Hydroxyde de potassium | Sigma Aldrich | P-6310 | |
| Pronase | Roche | 165921 | |
| Protease peptone | Fluka Biochemika | 29185 | |
| Petite boîte de culture cellulaire | Corning Incorporated | 430165 | 35 x 10 mm |
| Sudan Black | Sigma Aldrich | S2380 | |
| Aiguilles d’injection capillaire en verre à paroi mince | World Precision Instruments, Inc. | TW100-3 | |
| Todd Hewitt | Sigma Aldrich/Fluka Analytical | T1438 | |
| Tricaïne (3-aminobenzoate d’éthyle) | Argent Chemical Laboratory/Finquel | C-FINQ-UE-100G | |
| Triton X-100 | Fisher Scientific | BP151-500 | |
| Tween 20 | Fisher Scientific | BP337-500 | |
| Extrait de levure | Fluka Biochemika | Référence 92144 |
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