Summary

Kontraktilitet Målinger på Isolerte papillemusklene for Undersøkelse av Cardiac inotropi i Mus

Published: September 17, 2015
doi:

Summary

Murine venstre ventrikkel papillær muskel kan brukes til å undersøke kardial kontraktilitet in vitro. Denne artikkelen beskriver i detalj isolering og eksperimentelle protokoller for å undersøke hjerte kontraktile egenskaper.

Abstract

Papillære muskel isolert fra voksne mus hjerter kan brukes til å studere hjertets kontraktilitet i ulike fysiologiske / patologiske tilstander. Sammentrekningene egenskaper kan vurderes uavhengig av ytre påvirkninger som for eksempel vaskulær tonus eller neurohumoral status. Det viser en vitenskapelig tilnærming mellom encellete målinger med isolerte hjertemuskelceller og in vivo studier som ekkokardiografi. Således papillære muskelpreparater tjene som en utmerket modell for å studere kardial fysiologi / patofysiologi og kan anvendes for undersøkelser som modulasjonen av farmakologiske midler eller utforskningen av transgene dyremodeller. Her beskriver vi en fremgangsmåte for å isolere den murine venstre fremre papillarmuskel å undersøke hjertets kontraktilitet i et organbad oppsett. I motsetning til en muskel strimmel forberedelse isolert fra den ventrikulære veggen, kan den papillære muskelfremstilles in toto uten å skade muskelen tissue alvorlig. Orgelet bad oppsettet består av flere temperaturkontrollerte, gasset og elektrode utstyrt organ bade kamre. Det isolerte papillarmuskel er festet i organbadet kammeret og elektrisk stimulert. Den fremkalte rykk Kraften registreres ved hjelp av en trykktransduser og parametere som rykk og napp kraft amplitude kinetikken blir analysert. Forskjellige eksperimentelle protokoller kan bli utført for å undersøke kalsium- og frekvensavhengig kontraktilitet samt doseresponskurver av kontraktile midler slik som katekolaminer eller andre farmasøytiske midler. I tillegg kan patologiske tilstander som akutt iskemi simuleres.

Introduction

Undersøkelsen av proteiner som ionekanaler referer deres rolle for hjertets kontraktilitet er viktig å oppdage forskjellige pathomechanisms og for å etablere nye terapeutiske strategier for hjertesykdommer slik som iskemi og hjertesvikt.

Kontraktile funksjon av pattedyr kardiomyocytter er kjent for å bli modulert ved forskjellige ionekanaler, transportører og andre proteiner. Aksjonspotensial fremkalt aktivering av spenningsavhengige sarcolemmal L-type Ca 2+ kanaler fører til Ca 2+ tilstrømningen fra ekstracellulære rom og senere til Ca 2+ -indusert Ca 2+ frigjøring (CICR) 1, som utløser cellular sammentrekning to. Ca 2+ -signaling spiller en sentral rolle i hjertekontraksjonen og tilpasning til fysiologisk eller patologisk stress. Katekolaminer aktivere kardiale p-adrenerge reseptorer, og dermed stimulere adenylylcyklase (AC) som syntetiserer cAMP. Aktiveres, Proteinkonn kinase A (PKA) phosphorylates ulike intracellulære og membran assosierte proteiner som L-type Ca 2+ kanaler, phospholamban og ryanodine reseptorer resulterer i endring av Ca 2 + transienter og hjertekontraktilitet 1,3,4. cAMP forringes av fosfodiesterase (PDE). Aktivering av Gs-koblete reseptorer enn p-adrenerge reseptorer også fører til akkumulering av cAMP.

Teknikken med kontraktilitet målinger i isolerte ventrikulære muskelstriper er vel etablert for større pattedyr 5-8. På bakgrunn av muligheten for målretting genet i mus er det viktig å etablere metoder for å analysere murine hjerte fysiologi. Men eksisterende data om de fysiologiske egenskapene til isolerte muskel preparater i mus varierer avhengig av eksperimentelle forhold 9-12.

Den beskrevne metoden brukes til å analysere hjertets kontraktilitet av venstre ventrikkel papillær muskel preparations in vitro. Undersøkelse av hjertets kontraktilitet utføres i fravær av påvirkning modifiser hjertets kontraktilitet in vivo, slik som blodtrykk, neurohumoral stimulering og fysisk eller metabolsk stress. Juling frekvensen av oppdragsgiver muskel forberedelse kan være strengt definert og endret vilkårlig. Nappe kraft kan analyseres i sammenheng med spesifikke stimuli slik som kalsiumkonsentrasjon, slo frekvens eller temperatur. I tillegg kan denne fremgangsmåte benyttes til å undersøke ulike komponenter signalveien, og til å sammenligne hjertefunksjon av genetisk modifiserte musemodeller ved å kontrollere forsøksbetingelser som er nevnt ovenfor.

Protocol

MERK: De grunnleggende trinn i isoleringsprosedyren er vist i figur 1. Alle trinn er beskrevet i detalj i den følgende protokoll.. Papillemuskel isolering, montering i organbad kammer, innsamling og analyse er utført i en sammenhengende og obligatorisk tidsskala. Alle dyreforsøk ble utført i henhold til tysk lovgivning om vern av dyr og ble godkjent av Etisk Review Board of Universitetet i Heidelberg. 1. Utarbeidelse av Instrum…

Representative Results

Protokollen fra dette manuskriptet for kontraktilitet målinger av isolerte murine papillarmuskel forberedelser er innstilt til optimale forhold for å oppnå reproduserbare eksperimentelle resultater under fysiologiske forhold. For å definere optimale forsøksbetingelser vi gjennomført pilotforsøk varierende organbad temperatur og ekstracellulært kalsium konsentrasjon (se også 12). Protokollen er beskrevet her ble utført med en ekstracellulær kalsiumkonsentrasjon på 1,5 mM og en temperatur på 32 ° …

Discussion

I dette manuskriptet beskriver vi en fremgangsmåte for å undersøke kontraktilitet av murine papillære muskel in vitro, som kan brukes til å svare på flere vitenskapelige spørsmål relatert til hjerte fysiologi og patologi hos mus, samt å understøtte analyse av transgene linjer og oppdagelsen av nye farmasøytiske tilnærminger å behandle hjerte dysfunksjoner. Vi illustrerer bruken av denne metoden for å vurdere fysiologiske, patologiske og farmakologiske egenskapene til hjertemuskelen kontraktilitet …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av Deutsche Forschungsgemeinschaft (KFO 196 "Signaltransduktion bei adaptativen und maladaptiven kardialen Remodelling-Prozessen", FR 1 638 / 1-2) og ved DZHK (tysk Senter for Cardiovascular Research, en del av de tyske Centres of Health Research , som er en BMBF (tysk Kunnskapsdepartementet) initiativ).

Materials

Sodium chloride Sigma-Aldrich S7653
Sodium bicarbonate Sigma-Aldrich S5761 
Potassium chloride Sigma-Aldrich P9333
Glucose Sigma-Aldrich D9434 
Sodium pyruvate Sigma-Aldrich P5280 
Calcium chloride dihydrate Sigma-Aldrich 223506
Magnesium sulfate heptahydrate Sigma-Aldrich 230391
Potassium phosphate monobasic Sigma-Aldrich P 5655
2,3-Butanedione monoxime Sigma-Aldrich B0753
Forskolin Sigma-Aldrich F3917 Hazard statement H312, solve in DMSO
3-?Isobutyl-?1-?methylxanthine Sigma-Aldrich I5879 Hazard statement H 302, solve in DMSO
Dimethyl sulfoxide (DMSO) Sigma-Aldrich D2650
Isoprenaline hydrochloride Sigma-Aldrich I5627 Hazard statement H 315-H319-H335
Sodium Heparine 250.000 IE/10ml ratiopharm PZN 3874685
Histamine dihydrochloride Sigma-Aldrich H7250 Hazard statement H 315-H 317-H319- H334-H335

References

  1. Endoh, M. Cardiac Ca2+ signaling and Ca2+ sensitizers. Circ J. 12 (12), 1915-1925 (2008).
  2. Bers, D. M. Calcium cycling and signaling in cardiac myocytes. Annu Rev Physiol. 70, 23-49 (2008).
  3. Bers, D., Despa, S. M. Na/K-ATPase—an integral player in the adrenergic fight-or flight response. Trends Cardiovasc Med. 19, 111-118 (2009).
  4. Bers, D. M. Cardiac excitation–contraction coupling. Nature. 415, 198-205 (2002).
  5. Pieske, B., et al. al. Ca(2+)-dependent and Ca(2+)-independent regulation of contractility in isolated human myocardium. Basic Res Cardiol. 92, 75-86 (1997).
  6. Corbin, J. Sildenafilcitrate does not affect cardiac contractility in human or dog heart. Curr Med ResOpin. 19 (8), 747-752 (2003).
  7. Romero-Vecchione, E., Vasquez, J., Rosa, F. Direct negative inotropic effect of cocaine in rat ventricle strip. Acta Cient Venez. 47 (1), 17-23 (1996).
  8. Näbauer, M., et al. Positive inotropic effects in isolated ventricular myocardium from nonfailing and terminally failing human hearts. Eur J Clin Invest. 18 (6), 600-606 (1988).
  9. Gao, W. D., Perez, N. G., Marban, E. Calcium cycling and contractile activation in intact mouse cardiac muscle. J Physiol. 507, 175-184 (1998).
  10. Bluhm, W. F., Kranias, E. G., Dillmann, W. H., Meyer, M. Phospholamban: a major determinant of the cardiac force-frequency relationship. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 278 (1), H249-H255 (2000).
  11. Redel, A., Baumgartner, W., Golenhofen, K., Drenckhahn, D., Golenhofen, N. Mechanical activity and force-frequency relationship of isolated mouse papillary muscle: effects of extracellular calcium concentration, temperature and contraction type. Pflugers Arch. 445 (2), 297-304 (2002).
  12. Uhl, S., Mathar, I., Vennekens, R., Freichel, M. Adenylyl cyclase-mediated effects contribute to increased Isoprenaline-induced cardiac contractility in TRPM4 deficient mice. JMCC. 74, 307-317 (2014).
  13. Allen, D. G., Jewell, B. R., Wood, E. H. Studies of the contractility of mammalian myocardium at low rates of stimulation. J Physiol. 254 (1), 1-17 (1976).
  14. Pieske, B., Maier, L. S., Schmidt-Schweda, S. Sarcoplasmic reticulum Ca2+ load in human heart failure. Basic Res Cardiol. 97, 163-171 (2002).
  15. Koch-Weser, J., Blinks, J. R. The Influence of the Interval between Beats on Myocardial Contractility. Pharmacol Rev. 15, 601-652 (1963).
  16. Bocalini, D. S. Myocardial remodeling after large infarcts in rat converts post rest-potentiation in force decay. Arq Bras Cardiol. 98 (3), 243-251 (2012).
  17. Juggi, J. S. Effect of ischemia-reperfusion on the post-rest inotropy of isolated perfused rat heart. J Cell Mol Med. 6 (4), 621-630 (2002).
  18. Lakatta, E. G. Beyond Bowditch: the convergence of cardiac chronotropy and inotropy. Cell Calcium. 35 (6), 629-624 (2004).
  19. Taylor, D. G., Parilak, L. D., LeWinter, M. M., Knot, H. J. Quantification of the rat left ventricle force and Ca2+ -frequency relationships: similarities to dog and human. Cardiovasc Res. 61 (1), 77-86 (2004).
  20. Schmidt, U., Hajjar, R. J., Gwathmey, J. K. The force-interval relationship in human myocardium. J Card Fail. 1 (4), 311-321 (1995).
  21. Rossman, E. I., Petre, R. E., Chaudhary, K. W., Piacentino, V. 3. r. d., Janssen, P. M., Gaughan, J. P., Houser, S. R., Margulies, K. B. Abnormal frequency-dependentresponses represent the pathophysiologic signature of contractile failure inhuman myocardium. JMCC. 36 (1), 33-42 (2004).
  22. Moran, A. E., Forouzanfar, M. H., Roth, G. A., Mensah, G. A., Ezzati, M., Murray, C. J., Naghavi, M. Temporal trends in ischemic heart disease mortality in 21 world regions, 1980 to 2010: the Global Burden of Disease 2010 stud. Circulation. 129 (14), 1483-1492 (1980).
  23. Lee, J. A., Allen, D. G. Changes in intracellular free calcium concentration during long exposures to simulated ischemia in isolated mammalian ventricular muscle. Circ Res. 71 (1), 58-69 (1992).
check_url/53076?article_type=t&slug=contractility-measurements-on-isolated-papillary-muscles-for

Play Video

Cite This Article
Uhl, S., Freichel, M., Mathar, I. Contractility Measurements on Isolated Papillary Muscles for the Investigation of Cardiac Inotropy in Mice. J. Vis. Exp. (103), e53076, doi:10.3791/53076 (2015).

View Video