This protocol describes an approach to interrogate the recombined immunoglobulin heavy chain VDJ regions of lymphomas by deep-sequencing and retrieve VDJ rearrangement and somatic hypermutation status to delineate clonal architecture of individual tumor. Comparing clonal architecture between paired diagnosis and relapse samples reveals lymphoma relapse clonal evolution modes.
Forståelse svulst klonalitet er avgjørende for å forstå mekanismene som er involvert i tumorigenesis og sykdomsutvikling. I tillegg kan forstå de klonale sammensetningen endringer som oppstår i løpet av en tumor som reaksjon på visse mikro-miljø eller behandlinger fører til utforming av mer sofistikerte og effektive metoder for å utrydde tumorceller. Imidlertid har relativ tumor klonale subpopulasjoner vært vanskelig på grunn av mangel på skjelnes markører. For å løse dette problemet, ble en VDJ-seq protokollen opprettet for å spore klonal evolusjon mønstre av diffuse store B-celle lymfom (DLBCL) tilbakefall ved å utnytte VDJ rekombinasjon og somatisk hypermutasjon (SHM), to unike funksjonene til B-celle lymfomer.
I denne protokollen, ble Next-Generation sekvensering (NGS) biblioteker med indeksering potensial konstruert fra forsterket omorganisert immunoglobulin tung kjede (avIgH) VDJ regionen fra par primærdiagnose og tilbakefall DLBCL SAMPles. I gjennomsnitt mer enn en halv million VDJ sekvenser per prøve ble oppnådd etter sekvensering, som inneholder både VDJ omorganisering og SHM informasjon. I tillegg ble tilpasset bioinformatikk rørledninger utviklet for å utnytte sekvensinformasjon for karakterisering av avIgH-VDJ repertoar innenfor disse prøvene. Videre gir rørledningen gjenoppbygging og sammenligning av klonal arkitekturen av individuelle tumorer, som gjør undersøkelsen av den klonale heterogenitet innenfor diagnose-tumorer og fradrag av klonal evolusjon mønsteret mellom diagnose og tilbakefall tumor parene. Ved søknad denne analysen til flere diagnose-tilbakefall parene, avdekket vi viktige bevis på at flere karakteristiske kreft evolusjonære mønstre kan føre til DLBCL tilbakefall. I tillegg kan denne tilnærmingen bli utvidet til andre kliniske aspekter, for eksempel identifisering av minimal restsykdom, overvåking tilbakefall fremgang og behandlingsrespons, og etterforskningen av immunrepertoares i ikke-lymfom sammenhenger.
Kreft er en klonal sykdom. Siden tretti år siden, da Peter C. Nowell foreslo kreft klonal evolusjon modell 1, har mange studier forsøkt å dissekere klonale populasjoner innen tumorprøver og rekonstruere klonal ekspansjon og evolusjonsmønstre som ligger til grunn tumorigenesis prosessen to. Nylig har hel-genomsekvense aktivert etterforskere til å ta en grundig titt på klonal heterogenitet og evolusjon 3,4. Imidlertid, på grunn av mangel på medgjørlig markører i mange celletyper, er det vanskelig å utlede nøyaktige klonale arkitektur og Utviklingsretningen. Heldigvis er det en naturlig klonalitet markør i modne B-celler som mange lymfoide maligniteter, inkludert DLBCL, stammer. Som svar på antigen stimulering, kan hver B-celle danne et enkelt produktivt avIgH VDJ-sekvens ved å slutte et V H (variabel), en D (diversitet) og en J H (delta) segment sammen av et stort basseng av disse segmentene. I løpet av denne process, kan små deler av den opprinnelige sekvensen bli slettet og ytterligere ikke-malbasert nukleotider kan tilsettes for å skape et unikt VDJ-omleiring. Denne spesifikke VDJ omorganisering kan være arvelig i alt avkommet av dette B-celle, derfor tagging individuell moden B-celle og dens avkom 5. Videre oppstår SHM på rekombinerte VDJ-sekvenser i det etterfølgende germinalsenter (GC) reaksjon for å innføre ytterligere mutasjoner for utvidelse av antistoffet bassenget og forbedring av antistoff affinitet 6. Derfor, ved å sammenligne og kontrastere VDJ og SHM mønstre av lymfom prøver som har gjennomgått disse prosessene, intra-tumor heterogenitet kan være avgrenset og klonal evolusjon banen av sykdommen kan utledes.
Tidligere kunne VDJ omleiring og SHM bli identifisert ved PCR-amplifisering av de rekombinerte regionene, kloning av PCR-produktene, hvorpå Sanger-sekvensering for å oppnå sekvensinformasjon. Denne tilnærmingen jegs lav gjennomstrømning og lavt utbytte, hente bare en meget liten del av hele repertoaret rekombinerte VDJ, og hindrer karakterisering av den totale fremstilling av klonal populasjon i en gitt prøve. En modifisert tilnærming ble skapt ved å generere NGS indeksert sekvense biblioteker fra VDJ PCR-produkter og utfører PE 2×150 bp sekvensering for å få mer enn en halv million rekombinerte VDJ sekvenser per prøve. I tillegg ble det utviklet en rørledning tilpasset til å utføre kvalitetskontroll (QC), justere filter VDJ-sekvensering for å identifisere leser rearrangementer og SHMS av hver lese- og utføre fylogenetisk analyse på klonale arkitekturen i hver prøve. I tillegg har en ny tilnærming er etablert ytterligere å karakterisere klonal evolusjon mønstre for prøver samlet inn på ulike sykdomsstadier.
Vi har brukt denne teknikken for å DLBCL pasientprøver. DLBCL er en aggressiv form for non-Hodgkins lymfom med hyppige tilbakefall i inntil ett thIFU av pasientene 7. DLBCL tilbakefall oppstår vanligvis tidlig, innen 2 til 3 år etter den første diagnosen, selv om noen oppstår etter 5 år 8. Prognose for tilbakefall pasienter er dårlig, med bare 10% som oppnådde tre år progresjonsfri overlevelse på grunn av begrenset behandlingstilbud. Dette er grunnlaget for det presserende behovet for nye tilnærminger til behandling DLBCL tilbakefall 9,10. Men molekylære mekanismer knyttet DLBCL tilbakefall er fortsatt i stor grad ukjent. Spesielt rollen klonal heterogenitet på diagnose og klonal evolusjon under DLBCL tilbakefall utvikling er i dag uncharacterized, noe som gjør det vanskelig å definere en nøyaktig og nyttig biomarkør for å forutsi tilbakefall. For å løse disse spørsmålene, vi brukt vår VDJ-sekvensering tilnærming på flere par matchet primærdiagnose-tilbakefalls DLBCL prøve par. To forskjellige klonale evolusjonære scenarier for tilbakefall dukket opp fra sammenligning av klonale arkitekturer mellom diagnosen og tilbakefall SAMPles som antyder flere molekylære mekanismer kan være involvert i DLBCL tilbakefall.
På grunn av den nesten ubegrenset antall gjentakelser av sekvensinformasjon kodet av VDJ-omleiring og SHM ved IGH locus av humane B-celler, undersøkelse av hele IGH repertoaret av high-throughput deep-sekvensering viste seg å være en effektiv og fullstendig måte å avgrense klonal og sub-klonal B-celle populasjoner. Videre kan denne strategien kan brukes til å studere utviklingen klonal banen for B-celletumorutvikling, remisjon, og tilbakefall ved å sammenligne klonale og sub-klonale arkitekturer av pasientprøve…
The authors have nothing to disclose.
The authors would like to thank Dr Rita Shaknovich and members of Elemento lab, Melnick lab, and Tam lab for thoughtful discussions. We would also like to thank the Genomics Resources Core Facility at Weill Cornell Medical College for performing the VDJ-sequencing. YJ was supported by ASH Scholar Award. WT and OE are supported by Weill Cornell Cancer Center Pilot Grant. OE is supported by the NSF CAREER award, the Starr Cancer Consortium and the Hirschl Trust. We would also like to thank Katherine Benesch, JD, MPH for her generous support to this project.
Ethanol | VWR | 89125-170 | 200 proof, for molecular biology |
TE buffer | Life Technologies | 12090-015 | 10 mM Tris·Cl, pH 8.0; 10mM EDTA |
Xylenes | VWR | EM-XX0055-6 | 500 ml |
Proteinase K | Life Technonogies | 25530-015 | 100 mg |
Deoxynucleotide triphosphate (dNTP) Solution Mix | Promega | U1515 | 10 mM each nucleotide |
10x PCR Buffer | Roche | 11699105001 | Without MgCl2 |
AmpliTaq Gold DNA Polymerase with Gold Buffer and MgCl2 | Life Technonogies | 4311806 | 50 µl at 5 U/µl |
Specimen Control Size Ladder | Invivoscribe Technologies | 2-096-0020 | 33 reactions |
IGH Somatic Hypermutation Assay v2.0 – Gel Detection | Invivoscribe Technologies | 5-101-0030 | 33 reactions, Mix 2 for IGVHFR1 detection |
IGH Gene Clonality Assay – Gel Detection | Invivoscribe Technologies | 1-101-0020 | 33 reactions, Tube B for IGVHFR2 detection |
GoTaq Flexi DNA Polymerase | Promega | M8291 | 20 µl at 5 U/µl |
10X Tris-Borate-EDTA (TBE) buffer | Corning (cellgro) | 46-011-CM | 6×1 L |
50X TAE BUFFER | VWR | 101414-298 | 1 L |
Ethidium bromide solution | Sigma-Aldrich | E1510 | 10 mg/ml |
25 bp DNA Ladder | Life Technologies | 10597011 | 1 µg/µl |
100 bp DNA Ladder | Life Technologies | 15628-019 | 1 µg/µl |
UltraPure Agarose | Life Technologies | 16500-500 | 500 g |
40% Acrylamide/Bis Solution | Bio-Rad Laboratories | 1610144 | 500 ml |
QIAquick Gel Extraction Kit | Qiagen | 28704 | 50 columns |
Agencourt AMPure XP | Beckman Coulter | A63881 | |
Qubit dsDNA High Sensitivity Assay Kit | Life Technologies | Q32854 | |
High Sensitivity DNA Kit | Agilent Technologies | 5067-4626 | |
2100 Bioanalyzer | Agilent Technologies | ||
PhiX Control v3 | Illumina | FC-110-3001 | |
MiSeq | Illumina | ||
Qubit 2.0 Fluorometer | Life Technologies | Q32872 | |
Resuspension buffer (Illumina TruSeq DNA Sample Preparation Kit v2) | Illumina | FC-121-2001 | |
End repair mix (Illumina TruSeq DNA Sample Preparation Kit v2) | Illumina | FC-121-2001 | |
A-tailing mix (Illumina TruSeq DNA Sample Preparation Kit v2) | Illumina | FC-121-2001 | |
Ligation mix (Illumina TruSeq DNA Sample Preparation Kit v2) | Illumina | FC-121-2001 | |
DNA adaptor index (Illumina TruSeq DNA Sample Preparation Kit v2) | Illumina | FC-121-2001 | |
Stop ligation buffer (Illumina TruSeq DNA Sample Preparation Kit v2) | Illumina | FC-121-2001 | |
PCR primer cocktail (Illumina TruSeq DNA Sample Preparation Kit v2) | Illumina | FC-121-2001 | |
PCR master mix (Illumina TruSeq DNA Sample Preparation Kit v2) | Illumina | FC-121-2001 | |
Magnetic stand | Life Technologies | 4457858 | |
Gel imaging system | Bio-Rad Laboratories | 170-8370 |