Summary

Negl Perler inn Utvikling kyllingembryo Limbs å identifisere signaltransduksjonsveier Påvirker Gene Expression

Published: January 17, 2016
doi:

Summary

By grafting beads soaked in growth factors or specific inhibitors of signaling pathways into developing embryos it is possible to directly test their effects in vivo. In this protocol beads are grafted into the limb bud to determine the effects of these molecules on gene expression and signal transduction.

Abstract

Ved hjelp av kyllingembryoer er det mulig å teste direkte effektene av enten vekstfaktorer eller spesifikke inhibitorer av signalveier på genekspresjon og aktivering av signaloverføringsreaksjonsveier. Denne teknikken gjør at levering av signalmolekyler på presist definerte utviklingsstadier for bestemte tider. Etter dette embryo kan høstes og genekspresjon undersøkes, for eksempel ved in situ hybridisering, eller aktivering av signaltransduksjonsveiene observert med immunfarging.

I videoen heparin perler dynket i FGF18 eller AG 1-X2 perler dynket i U0126, en MEK inhibitor, er podet inn i lem knopp i ovo. Dette viser at FGF18 induserer uttrykk for myod og ERK-fosforylering og både endogene og FGF18 indusert myod uttrykk hemmes av U0126. Perler dynket i en retinsyre antagonist kan potensere tidlig myod induksjon av FGF18.

Denne tilnærmingen kan være ossed med et bredt spekter av forskjellige vekstfaktorer og inhibitorer og kan lett tilpasses andre vev i utvikling av embryo.

Introduction

Avian embryo har gitt et kraftig verktøy for å studere utvikling i mange år 1. En av de mest nyttige egenskaper er at de er forholdsvis lette å manipulere. Ekstern utvikling gjør det mulig å åpne egget å få tilgang til embryoet og utføre forskjellige micromanipulations inkludert eksempler som klassiske vaktel-chick kimær system for å studere celle skjebne 2,3, injeksjon av retrovirus for overekspresjon i bestemte vev under utvikling 4,5 og eksplantering kultur for å identifisere utviklingssignalkilder 6. Flere nylig kimeras generert mellom umerkede vertene med grafts fra en transgen kylling linje som uttrykker GFP har vist at kombinasjonen av klassisk pode og genmodifisering kan gi viktig innsikt i utviklingen 7,8.

Den enkle som avian embryo kan manipuleres har gjort det en utmerket modell for å studere lemutvikling 9. Bruk av spesifikke vekstfaktorer for å utvikle lemmer in vivo har vært medvirkende i å identifisere faktorer som endrer lem mønster 10,11 og fortsetter å gi innsikt i denne prosessen 12. Denne fremgangsmåten har også blitt brukt til å studere de faktorer som regulerer muskelutvikling og har avdekket roller for en rekke signaler som Wnts 13, BMP 14 og 15 HGF.

Nylig denne teknikken har blitt brukt til å undersøke de signalene som styrer myogenic genuttrykk i lem knopp og har vist at interaksjoner mellom FGF18 og retinsyre kan kontrollere tidspunktet for myod uttrykk 16. Ved hjelp av en kombinasjon av vekstfaktorer og små molekyler som kan legges på perler og deretter podet direkte inn i bestemte vev på definerte utviklingsstadier gir mulighet til å gripe inn på nesten enhver tid og region under utvikling. Dette har blitt brukt til å investigate mange prosesser inkludert somitt mønster 17,18, nevrale spesifikasjon 19, neural crest migrasjon 20 og aksen forlengelse 21.

Her beskriver vi en metode for pode perler dynket i enten vekstfaktorer eller hemmere til å utvikle kylling lemmer. Dette har blitt benyttet for å bestemme effekten av disse signaler på myogenese ved å analysere muskel spesifikk genekspresjon med in situ-hybridisering. Vi beskriver grafts ved å bruke enten heparin fuktet perler, som brukes for vekstfaktorer, eller AG 1-X2-perler for små hydrofobe molekyler, slik som retinsyre eller lavmolekylære inhibitorer av spesifikke signalveier. Men andre perler er også tilgjengelige som har blitt brukt til å levere både FGF 22 og Shh 23.

Protocol

Etikk Uttalelse: Alle disse eksperimentene følger dyr omsorg og etiske retningslinjer ved Universitetet i Nottingham. 1. Utarbeidelse av Heparin Perler for Negl Vask heparin perler grundig i PBS før bruk. Merk: Perler kan lagres ved 4 ° C som en oppslemming i PBS. Velg perler for pode ved å fjerne dem fra lager med en 20 mL pipette inn i en 1 ml dråpe PBS. Deretter bruker en mikropipette satt til 2 mL å overføre perlene inn i en 20 ul dråpe av PBS…

Representative Results

På HH trinn 21 myod ikke uttrykkes i å utvikle lem myoblaster selv om farging kan sees i myotome av utviklings somites (figur 1A). Figur 1B viser in situ hybridisering for myod 6 timer etter en FGF18 vulst transplantat. Myod blir indusert i myoblaster nær vulsten mens det er ingen ekspresjon i det kontralaterale lem. Ko-poding av en vulst fuktet i U0126, en spesifikk inhibitor av MEK, blokker FGF18 induksjon av myod (figur 1C). Tilsvar pode en U0126 perle ve…

Discussion

Bruken av perle grafts brukes direkte til å utvikle vev i ovo er et kraftig verktøy for å dissekere rollen som vekstfaktor signale under utvikling som gir enestående kontroll over utviklingsstadiet hvor de brukes og varigheten av eksponeringen.

Valget av vulsten for hver type molekyl er viktig. Små hydrofobe molekyler, slik som de inhibitorene som beskrives her og retinsyre, vanligvis bindes godt til derivatisert AG 1-X2-perler, selv om det er nødvendig å teste effektiviteten av hver …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was partly funded by a University of Nottingham Early Career award to DS. RM is funded by the Higher Committee for Education Development of Iraq.

Materials

Heparin acrylic beads Sigma H5263 The acrylic-heparin beads used have been discontinued. However a replacement product is available, Heparin agarose beads, cat no H6508. These are transparent so harder to work with but can be stained with phenol red in the same way as AG 1-X2 beads,
AG 1-X2 beads Bio-Rad 140-1231
Affi Gel blue beads Bio-Rad 153-7301; 153-7302 These beads have been used with a range of growth factors including Shh and FGFs and can be used to replace heparin beads
FGF18 Peprotech 100-28 Resuspend in PBS with 0/1% BSA, prepare single use aliquots of 0.5-1ul and store at -80°C. Batches and suppliers can vary so different concentrations should be tested to determine an effective dose.
U0126 Cell Signalling 9903 Make to 20mM stock in DMSO and store in single use aliquots at -80°C. Protect from light.
BMS-493 Tocris Biosciences 3509 Resuspend in DMSO and store in single use aliquots at -80°C. Protect from light.
Black Indian ink Windsor and Newton 5012572003384 (30ml) While alternatives to this product are available care should be taken as some inks are toxic to embryos
Tungsten wire, 0.1mm dia. 99.95% Alfa Aesar 10404
Penicillin / streptomycin Sigma P0781 Dilute 100X in PBS/ink and PBS/FCS

References

  1. Davey, M. G., Tickle, C. The chicken as a model for embryonic development. Cytogenetic Genome Research. 117, 231-239 (2007).
  2. Le Douarin, N. The Nogent Institute–50 years of embryology. International Journal of Developmental Biology. 49, 85-103 (2005).
  3. Le Douarin, N. M. The avian embryo as a model to study the development of the neural crest: a long and still ongoing story. Mechanisms of Development. 121, 1089-1102 (2004).
  4. Bell, E., Brickell, P. Replication-competent retroviral vectors for expressing genes in avian cells in vitro and in vivo. Molecular Biotechnology. 7, 289-298 (1997).
  5. Abu-Elmagd, M., et al. Wnt/Lef1 signaling acts via Pitx2 to regulate somite myogenesis. Developmental Biology. 337, 211-219 (2010).
  6. Munsterberg, A. E., Lassar, A. B. Combinatorial signals from the neural tube, floor plate and notochord induce myogenic bHLH gene expression in the somite. Development. 121, 651-660 (1995).
  7. McGrew, M. J., et al. Efficient production of germline transgenic chickens using lentiviral vectors. EMBO Reports. 5, 728-733 (2004).
  8. Valasek, P., et al. Cellular and molecular investigations into the development of the pectoral girdle. Developmental Biology. 357, 108-116 (2011).
  9. Tickle, C. The contribution of chicken embryology to the understanding of vertebrate limb development. Mechanisms of Development. 121, 1019-1029 (2004).
  10. Riddle, R. D., Johnson, R. L., Laufer, E., Tabin, C. Sonic hedgehog mediates the polarizing activity of the ZPA. Cell. 75, 1401-1416 (1993).
  11. Tickle, C., Alberts, B., Wolpert, L., Lee, J. Local application of retinoic acid to the limb bond mimics the action of the polarizing region. Nature. 296, 564-566 (1982).
  12. Rosello-Diez, A., Torres, M. Regulative patterning in limb bud transplants is induced by distalizing activity of apical ectodermal ridge signals on host limb cells. Developmental Dynamics. 240, 1203-1211 (2011).
  13. Anakwe, K., et al. Wnt signalling regulates myogenic differentiation in the developing avian wing. Development. 130, 3503-3514 (2003).
  14. Amthor, H., Christ, B., Weil, M., Patel, K. The importance of timing differentiation during limb muscle development. Current Biology. 8, 642-652 (1998).
  15. Brand-Saberi, B., Muller, T. S., Wilting, J., Christ, B., Birchmeier, C. Scatter factor/hepatocyte growth factor (SF/HGF) induces emigration of myogenic cells at interlimb level in vivo. Developmental Biology. 179, 303-308 (1996).
  16. Mok, G. F., Cardenas, R., Anderton, H., Campbell, K. H. S., Sweetman, D. Interactions between FGF18 and retinoic acid regulate differentiation of chick embryo limb myoblasts. Developmental Biology. 396, 214-223 (2014).
  17. Abou-Elhamd, A., Cooper, O., Münsterberg, A. Klhl31 is associated with skeletal myogenesis and its expression is regulated by myogenic signals and Myf-5. Mechanisms of Development. , 126-852 (2009).
  18. Schmidt, M., Tanaka, M., Munsterberg, A. Expression of (beta)-catenin in the developing chick myotome is regulated by myogenic signals. Development. 127, 4105-4113 (2000).
  19. Stavridis, M. P., Lunn, J. S., Collins, B. J., Storey, K. G. A discrete period of FGF-induced Erk1/2 signalling is required for vertebrate neural specification. Development. 134, 2889-2894 (2007).
  20. Martinez-Morales, P. L., et al. FGF and retinoic acid activity gradients control the timing of neural crest cell emigration in the trunk. Journal of Cell Biology. 194, 489-503 (2011).
  21. Olivera-Martinez, I., Storey, K. G. Wnt signals provide a timing mechanism for the FGF-retinoid differentiation switch during vertebrate body axis extension. Development. 134, 2125-2135 (2007).
  22. Logan, M., Simon, H. G., Tabin, C. Differential regulation of T-box and homeobox transcription factors suggests roles in controlling chick limb-type identity. Development. 125, 2825-2835 (1998).
  23. Borycki, A. G., Mendham, L., Emerson, C. P. Control of somite patterning by Sonic hedgehog and its downstream signal response genes. Development. 125, 777-790 (1998).
  24. Sweetman, D., et al. FGF-4 signaling is involved in mir-206 expression in developing somites of chicken embryos. Developmental Dynamics. 235, 2185-2191 (2006).
  25. Chapman, S. C., Collignon, J., Schoenwolf, G. C., Lumsden, A. Improved method for chick whole-embryo culture using a filter paper carrier. Developmental Dynamics. 220, 284-289 (2001).
  26. Sweetman, D., Wagstaff, L., Cooper, O., Weijer, C., Münsterberg, A. The migration of paraxial and lateral plate mesoderm cells emerging from the late primitive streak is controlled by different Wnt signals. BMC Developmental Biology. 8, 63 (2008).
  27. Scott, B. B., Lois, C. Generation of tissue-specific transgenic birds with lentiviral vectors. Proceedings of the National Academy of Sciences of the U.S.A. 102, 16443-16447 (2005).
  28. Seidl, A. H., et al. Transgenic quail as a model for research in the avian nervous system: a comparative study of the auditory brainstem. Journal of Comparative Neurology. 521, 5-23 (2013).
check_url/53342?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Mohammed, R. H., Sweetman, D. Grafting of Beads into Developing Chicken Embryo Limbs to Identify Signal Transduction Pathways Affecting Gene Expression. J. Vis. Exp. (107), e53342, doi:10.3791/53342 (2016).

View Video