Summary

Syntes av keratin-baserad nanofiber för medicinsk teknik

Published: February 07, 2016
doi:

Summary

Elektrospunna nanofibrer har en hög ytarea i förhållande till vikten, utmärkt mekanisk integritet, och stödja celltillväxt och proliferation. Dessa Nanofiber har ett brett utbud av biomedicinska tillämpningar. Här fabricera vi keratin / PCL Nanofiber med hjälp av elektrospinning teknik och karakterisera fibrer för möjliga tillämpningar inom tissue engineering.

Abstract

Electro, på grund av dess mångsidighet och möjligheter för tillämpningar inom olika områden, används ofta för att tillverka nanofibrer. Produktionen av dessa porösa Nanofiber är av stort intresse på grund av deras unika fysikalisk-kemiska egenskaper. Här har vi närmare in på tillverkning av keratin som innehåller poly (ε-kaprolakton) (PCL) nanofibrer (dvs PCL / keratin komposit fiber). Vattenlösliga keratin extraherades först av människohår och blandas med PCL i olika förhållanden. Den blandade lösningen av PCL / keratin förvandlades till nanofibrous membran med hjälp av ett laboratorium utformad elektrospinning inrättas. Fiber morfologi och mekaniska egenskaperna hos den erhållna nanofiber observerades och mättes med användning av svepelektronmikroskopi och dragprovare. Dessutom var nedbrytbarhet och kemiska egenskaperna hos den nanofiber studeras med FTIR. SEM bilder visade enhetlig yta morfologi för PCL / keratinfibrer med olika sammansättningar. Dessa PCL / keratin fibrer uppvisade också utmärkta mekaniska egenskaper såsom Youngs modul och misslyckande punkt. Fibroblastceller kunde fästa och föröka sig som styrker god cellviabilitet. Baserat på de egenskaper som diskuterats ovan, kan vi starkt hävda att de blandade Nanofiber av naturliga och syntetiska polymerer kan representera en utmärkt utveckling av kompositmaterial som kan användas för olika biomedicinska tillämpningar.

Introduction

Electro redovisas som en förhärskande metod för att uppnå polymernanofibrer. Fibrerna kan framställas på en nanoskala och de fiber egenskaper är anpassade 1. Denna utveckling och egenskaperna hos elektrospunna Nanofiber har varit särskilt intressant för sina tillämpningar inom medicinsk teknik, särskilt i vävnadsteknik. De elektrospunna Nanofiber har likheter med den extracellulära matrisen och därmed främja celladhesion, migrering och proliferation två. På grund av denna likhet till den extracellulära matrisen (ECM), kan elektrospunna fibrer användas som material för att hjälpa till sårförband, läkemedelstillförsel, och för tekniska vävnader såsom lever, ben, hjärta och muskel 3.

En mängd olika polymerer av syntetiskt och naturligt ursprung har använts för att skapa elektrospunna fibrer för olika biomedicinska tekniska tillämpningar 4. Nyligen har ökat itresse i utvecklingen av kompositnanofibrer genom blandning av syntetiska och naturliga polymerer 4. I dessa kompositioner de slutliga produkterna ärver vanligtvis den mekaniska hållfastheten associerade med den syntetiska polymeren samtidigt anta biologiska signaler och egenskaper från den naturliga polymeren.

I detta experiment, PCL och keratin presenteras som de syntetiska och naturliga polymerer som skall användas för syntesen av en kompositnanofiber. Keratin är en naturlig polymer som finns i hår, ull och naglar. Det innehåller många aminosyrarester; av noterbar intresse är cystein 4,5. Helst ett naturligt förekommande polymer skulle vara biorenewable, biokompatibel och biologiskt nedbrytbar. Keratin besitter alla tre av dessa egenskaper samtidigt öka celltillväxt och fastsättning biomaterial har införlivats i sex.

Polykaprolakton (PCL) är ett resorberbart, syntetisk polymer som är betydande ivävnadsteknik 4. Denna polymer har tidigare hyllats för dess strukturella och mekanisk stabilitet, men saknar det cell affinitet och uppvisar en lång nedbrytningshastighet. Den hydrofoba naturen hos PCL är sannolikt ansvarig för bristen på cellaffinitet 7. Men gör PCL upp för sina begränsningar genom att vara mycket blandbar med andra polymerer. En PCL / keratin komposit bör visa de mekaniska egenskaperna hos PCL och införliva de biologiska egenskaperna av keratin, vilket gör det till ett idealiskt val för olika biomedicinska tillämpningar.

Protocol

Alla protokoll följer riktlinjer State University Office of Research Compliance och etik North Carolina A & T. 1. Kemisk Förberedelse för Keratin Extraction 4 För att framställa 1000 ml 2% vikt / volym perättiksyralösning (PAS), under en huv tillsätt 20 ml av perättiksyra till 980 ml Avjoniserat (DI) vatten. För att framställa 1000 ml 100 mM Tris baslösning (TBS), tillsätt 12,2 g Tris-bas till 1000 ml Dl-vatten och rör om tills helt upplöst. Förbereda…

Representative Results

fiber Morfologi SEM-bilder av fibrerna erhölls för alla fiberkompositionerna. Se figur 3. Fiber bild bekräftar att fibrerna är slumpmässigt orienterade. mekanisk provning Mekaniskt starka fibrer allmänhet krävs för olika vävnadstekniska tillämpningar. Dessa fibrer bör behålla tillräcklig styrka och flexibilitet under vissa s…

Discussion

Utvinning av keratin av människohår uppnåddes framgångsrikt. Perättiksyran agerade som ett oxidationsmedel på människohår, vilket gör att keratin som skall extraheras av Tris Base. Produktionen av keratin pulver var liten skala beroende på det faktum att det bara var gjort för forskningsändamål. Detta förfarande har redan fastställts inom industrin för storskalig produktion. Syftet att utvinna den småskaliga keratin var att kontrollera föroreningar, batch variation och kostnadseffektivitet.

<p clas…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Författarna vill tacka National Science Foundation genom Engineering Research Center för att revolutionera Metallic biomaterial (ERC-0.812.348) och nanoteknik Grundutbildning (EEG 1.242.139) för att finansiera stöd.

Materials

Human Hair  N/A N/A Obtained from Local Barber Shop in Greensboro
Peracetic acid Sigma Aldrich N/A
PCL (e-caprolactone polymer) Sigma Aldrich 502-44-3 Mn 70-90 kDa
Trifluoroethanol (TFE) Sigma Aldrich 75-89-8
Tris Base (TrizmaTM Base Powder) Sigma Aldrich N/A > 99.9% crystalline
Hydrochloric Acid Fischer Scientific A144C-212 Lot 093601 Waltham, MA
Kwik-Sil World Precision Instruments N/A Sarasota, FL
Cellulose membrane Sigma Aldrich N/A 12-14 kDa molecular cutoff
optical microscope Olympus BX51M BX51M Japan
scanning electron microscope Hitachi SU8000 SU8000 Japan
Table-Top Shimadzu machine North America Analytical and Measuring Instruments AGS-X series AGS-X Series  Columbia, MD
Fourier transform infrared spectroscopy Bruker Tensor 2 Instrument  N/A Billerica, MA
Microcal Origin software N/A N/A Northampton, MA
X-ray diffraction (XRD) Bruker AXS D8 Advance X-ray Diffractometer N/A Madison, WI
Fibroblast 3T3  cell American Tissue Type Culture Collection N/A Manassas, VA
Dulbecco’s modified Eagle’s medium (DMEM Invitrogen N/A Grand Island, NY
Spectra max Gemini XPS microplate reader Molecular Devices N/A Sunnyvale, CA
Student- Newman-Keuls post hoc test SigmaPlot 12 software N/A N/A

References

  1. Huang, Z. -. M., Zhang, Y. Z., Kotaki, M., Ramakrishna, S. A review on polymer nanofibers by electrospinning and their applications in nanocomposites. Compos Sci Technol. 63, (2003).
  2. Li, W. J., Laurencin, C. T., Caterson, E. J., Tuan, R. S., Ko, F. K. Electrospun nanofibrous structure: a novel scaffold for tissue engineering. J Biomed Mater Res. 60, 613-621 (2002).
  3. Liu, W., Thomopoulos, S., Xia, Y. Electrospun nanofibers for regenerative medicine. Adv Healthc Mater. 1, 10-25 (2012).
  4. Edwards, A., Jarvis, D., Hopkins, T., Pixley, S., Bhattarai, N. Poly(-caprolactone)/keratin-based composite nanofibers for biomedical applications. J Biomed Mater Res B. 103, 21-30 (2015).
  5. Dowling, L. M., Crewther, W. G., Parry, D. A. Secondary structure of component 8c-1 of alpha-keratin. An analysis of the amino acid sequence. Biochem J. 236, 705-712 (1986).
  6. Yamauchi, K., Maniwa, M., Mori, T. Cultivation of fibroblast cells on keratin-coated substrata. J Biomat Sci-Polymer. 9, 259-270 (1998).
  7. Shea, L. D., Wang, D., Franceschi, R. T., Mooney, D. J. Engineered Bone Development from a Pre-Osteoblast Cell Line on Three-Dimensional Scaffolds. Tissue E. 6, 605-617 (2000).
  8. Fortin, M. -. J. New Biological Software. Q Rev Biol. 71, 169-170 (1996).
  9. Bhattarai, N., Edmondson, D., Veiseh, O., Matsen, F. A., Zhang, M. Electrospun chitosan-based nanofibers and their cellular compatibility. Biomaterials. 26, 6176-6184 (2005).
  10. Yang, S., Leong, K. F., Du, Z., Chua, C. K. The design of scaffolds for use in tissue engineering. Part I. Traditional factors. Tissue E. 7, 679-689 (2001).
  11. Bhattarai, N., et al. Natural-Synthetic Polyblend Nanofibers for Biomedical Applications. Adv Mater. 21, 2792-2797 (2009).
check_url/53381?article_type=t&slug=synthesis-of-keratin-based-nanofiber-for-biomedical-engineering

Play Video

Cite This Article
Thompson, Z. S., Rijal, N. P., Jarvis, D., Edwards, A., Bhattarai, N. Synthesis of Keratin-based Nanofiber for Biomedical Engineering. J. Vis. Exp. (108), e53381, doi:10.3791/53381 (2016).

View Video