In Xenopus embryos, cells from the roof of the blastocoel are pluripotent and can be programmed to generate various tissues. Here, we describe protocols to use amphibian blastocoel roof explants as an assay system to investigate key in vivo and in vitro features of early neural development.
Understanding the genetic programs underlying neural development is an important goal of developmental and stem cell biology. In the amphibian blastula, cells from the roof of the blastocoel are pluripotent. These cells can be isolated, and programmed to generate various tissues through manipulation of genes expression or induction by morphogens. In this manuscript protocols are described for the use of Xenopus laevis blastocoel roof explants as an assay system to investigate key in vivo and in vitro features of early neural development. These protocols allow the investigation of fate acquisition, cell migration behaviors, and cell autonomous and non-autonomous properties. The blastocoel roof explants can be cultured in a serum-free defined medium and grafted into host embryos. This transplantation into an embryo allows the investigation of the long-term lineage commitment, the inductive properties, and the behavior of transplanted cells in vivo. These assays can be exploited to investigate molecular mechanisms, cellular processes and gene regulatory networks underlying neural development. In the context of regenerative medicine, these assays provide a means to generate neural-derived cell types in vitro that could be used in drug screening.
Virveldyr nervesystemet kommer fra det nevrale plate som et homogent lag av neuroepithelial celler. Forstå hvordan utviklingsprogrammene blir indusert, kodet, og etablert under regionalisering av nevrale plate er i dag, et hovedmål i utviklingsbiologi. Sammenlignet med andre systemer, er eksperimentelt mottagelig Xenopus embryo en modell av valget for å analysere tidlige trinn av nevral utvikling 1,2. Det er lett å få tak stort antall av embryoer, og ekstern utvikling gir tilgang til de aller første trinnene i neurulation tre. Mange verktøy er tilgjengelige for eksperimentelt manipulere Xenopus laevis (X. laevis) embryonal utvikling. Mikro-injeksjon av mRNA eller morpholinos (MO), inkludert induserbare Mos, sammen med biokjemiske og farmakologiske verktøy, tillater kontrollert gevinst på funksjon (GOF) og tap av funksjon (LOF) og spesifikk endring av signalveier 4,5. The blastocoel tak ektoderm, plassert rundt dyret pol av en blastula, eller et meget tidlig gastrula embryo, og refereres til som "Animal Cap '(AC), er en kilde til pluripotente celler som kan programmeres ved manipulering av genekspresjon før eksplantater forberedelse. I dette manuskriptet er detaljerte protokoller å bruke X. laevis AC explants å teste in vitro og in vivo molekylære mekanismer og cellulære prosesser underliggende nevrale utvikling.
En teknikk er presentert, slik fin observasjon av genutrykksmønster i en Xenopus rumpetroll nevralrøret, et tidlig trinn i identifiseringen av skjebnen besluttsomhet signaler. Mens observasjon av flatmontert vev er ofte brukt i studiet av kyllingfoster 6, det har ikke vært riktig beskrevet i Xenopus. Manipulering av genuttrykk ved å injisere syntetisk mRNA eller MO inn i blastomeres av 2 eller 4 celle scene embryoer tillater programmering av ACeksplantater 4. For eksempel hemming av Bone Morfogenetisk protein (BMP) veien ved ekspresjon av anti-BMP faktor Noggin, gir et nevralt identitet til AC-3 celler. Protokollen er beskrevet for å utføre lokal og tidsstyrt eksponering av AC-eksplantater til ytre signaler via direkte kontakt med en anionbytterharpiks vulst. Endelig en teknikk er beskrevet for testing utviklingstrekk av nevrale stamceller in vivo ved transplantasjon av blandede eksplantater preparert fra forskjellige programmerte celler dissosierte og re-forbundet.
Frosken embryo er en kraftig modell for å studere tidlig virveldyr neural utvikling. Kombinere manipulering av genuttrykk eksplanterer in vitro kulturer gir viktig informasjon i studiet av neuroepithelium regionalisering, spredning, og morphogenesis 7-12. Programmeringen av AC eksplantater tillatt utvikling av en funksjonell hjerte ex vivo 13,14. Brukenav eksplantat pode 15 førte til identifisering av den minimale induserende transkripsjonen bryteren neural crest differensieringsprogram 16. Zona limitans intrathalamica (ZLI) er et signal senter som utskiller Sonic pinnsvin (Shh) for å kontrollere veksten og regionalisering av halebrain. Når kontinuerlig utsatt for Shh, neuroepithelial celler coexpressing de tre transkripsjonsfaktorer gener – barH lignende homeobox-2 (barhl2), orthodenticle-2 (otx2) og Iroquois-3 (irx3) – erverve to kjennetegn ved ZLI rommet: kompetanse til å uttrykke shh, og evnen til å skille fra fremre plate nevrale celler. Som modellsystem, vil induksjon av en ZLI skjebne i neuroepithelial celler bli presentert åtte.
Disse protokollene tar sikte på å gi enkle, billige og effektive verktøy for utviklings biologer og andre forskere til å utforske grunnleggende mechanisms av viktige nervecelle atferd. Disse protokollene er svært allsidig og la etterforskningen av et stort spekter av ytre og indre nevrale bestemmelses signaler. Det tillater langsiktig in vivo analyse av nevrale avstamning engasjement, induktive interaksjoner og celle atferd.
Neural utvikling er orkestrert av et komplekst samspill mellom cellulære utviklingsprogrammene og signaler fra de omkringliggende vev (Anmeldt i 3,31,32). Her beskriver vi et sett med protokoller som kan brukes i X. laevis embryoer for å utforske ytre og indre faktorer som er involvert i nerve skjebne bestemmelse og neural morphogenesis in vitro og in vivo. Disse protokoller kan anvendes som sådan på X. Tropic embryoer, men X. Tropic embryoer er fire ganger min…
The authors have nothing to disclose.
The author thanks Hugo Juraver-Geslin, Marion Wassef and Anne Hélène Monsoro-Burq for their help and advice, and the Animal Facility of the Institut Curie. The author thanks Paul Johnson for his editing work on the manuscript. This work was supported by the Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS UMR8197, INSERM U1024) and by grants from the “Association pour la Recherche sur le Cancer” (ARC 4972 and ARC 5115; FRC DOC20120605233 and LABEX Memolife) and the Fondation Pierre Gilles de Gennes (FPGG0039).
Paraformaldehyde | VWR | 20909.290 | Toxic |
anion exchange resin beads | Biorad | 140- 1231 | |
Bovine Serum Albumin | SIGMA | A-7888 | For culture of animal cappH 7.6 |
Gentamycine | GIBCO | 15751-045 | antibiotic |
Bovine Serum Albumin | SIGMA | A7906 | for bead preparation |