Summary

Facile Utarbeidelse av Internt Selv montert Lipid Partikler Stabilisert av karbonnanorør

Published: February 19, 2016
doi:

Summary

We report on a smart application of carbon nanotubes for kinetic stabilization of lipid particles that contain self-assembled nanostructures in their cores. The preparation of lipid particles requires rather low concentrations of carbon nanotubes permitting their use in biomedical applications such as drug delivery.

Abstract

Vi presenterer en lettvint metode for å forberede nanostrukturerte fettpartikler stabilisert av karbon nanorør (CNTs). Enkelt vegger (perfekt) og med flere vegger (funksjon) CNTs brukes som stabiliseringsmidler for å fremstille Pickering typen olje-i-vann (O / W) emulsjoner. Lipider nemlig Dimodan U og Phytantriol anvendes som emulgatorer, som i overskudd av vann selv montere inn i bikontinuerlig kubiske Pn3m fase. Denne svært viskøs fase fragmenteres til mindre partikler ved hjelp av en sonde ultrasonicator i nærvær av konvensjonelle overflateaktive stabilisatorer eller CNTs som gjøres her. Til å begynne med blir de CNTs (pulverform) dispergert i vann etterfulgt av ytterligere ultralydbehandling med det smeltede lipid for å danne den endelige emulsjonen. Under denne prosessen CNTs bli belagt med lipid-molekyler, som igjen antas å omgi lipid dråpene for å danne en partikkelformet emulsjon som er stabil i flere måneder. Den gjennomsnittlige størrelsen på CNT-stabiliserte nanostrukturerte lipidpartikler er i submikron range, som sammenligner godt med partiklene stabiliseres ved hjelp av konvensjonelle overflateaktive midler. Liten vinkel X-ray spredning av data bekrefter retensjon av den opprinnelige Pn3m kubiske fase i CNT-stabiliserte dispersjoner lipid sammenlignet med den rene lipidfasen (bulk tilstand). Blått skift og senking av intensitetene i karakteristiske G og G 'bånd av CNTs observert i Raman-spektroskopi karakterisere interaksjonen mellom CNT overflate og lipidmolekyler. Disse resultater antyder at interaksjonen mellom de CNTs og lipider er ansvarlige for deres innbyrdes stabilisering i vandige oppløsninger. Ettersom konsentrasjonen av CNTs som anvendes for stabilisering er svært lave og lipidmolekyler er i stand til å funksjonalisere de CNTs, er giftigheten av CNTs forventet å være ubetydelig, mens deres biokompatibilitet sterkt forbedret. Derav det nåværende tilnærming finner et stort potensial i ulike biomedisinske applikasjoner, for eksempel, for å utvikle hybrid nanocarrier systemer for levering av multiple funksjonelle molekyler som i kombinasjonsterapi eller polyterapi.

Introduction

I løpet av de siste tiårene, har nanoteknologi dukket opp som et kraftig verktøy spesielt innen preklinisk utvikling av medisin for å bekjempe beryktede sykdommer som kreft en. I denne sammenheng, nanoskala strukturer med størrelse <1000 nm er mye utforsket som levering kjøretøy av ulike aktive biomolekyler så som legemidler, proteiner, nukleinsyrer, gener og diagnostiske avbildningsmidler 1-4. Disse biomolekyler er enten innkapslet i nanopartikler eller konjugert på overflaten av nanopartiklene og de ​​frigjøres ved virkningsstedet ved triggere som pH eller temperatur 5,6. Selv om det ekstremt liten i størrelse, viser det store overflatearealet av disse nanopartiklene for å være svært fordelaktig for målrettet levering av aktive biomolekyler. Kontrollen over partikkelstørrelse og biokompatibilitet er av største betydning for å optimalisere den terapeutiske effekt og følgelig anvendelse av nanopartikler 7,8.Lipider 9-13, polymerer 14,15, metaller 16,17 og karbon nanorør 18,19 er vanligvis ansatt som nanocarriers for ulike biomedisinske og farmasøytiske applikasjoner.

Videre nanocarrier applikasjoner basert på lipid selv montert nanostrukturer har et bredt betydning i mange andre disipliner, inkludert mat og kosmetisk industri 20,21. For eksempel, er de brukt i protein krystallisasjon 22, separasjon av biomolekyler 23, som mat stabilisatorer for eksempel, i desserter 24, og i levering av aktive molekyler slik som næringsstoffer, smaksstoffer og parfymer 25-31. Selv-sammensatte lipid nanostrukturer ikke bare har evnen til å frigi bioaktive molekyler i en kontrollert og målrettet måte 32-38, men de er også i stand til å beskytte de funksjonelle molekyler fra kjemisk og enzymatisk nedbrytning 39,40. Selv om planar væske bilaget er den mest commpå nanostrukturen dannet av amfifile lipidmolekyler i nærvær av vann, er andre strukturer som heksagonal og kubisk også ofte observert 20,41,42. Den type nanostrukturen som dannes avhenger av lipidene 'molekylær form struktur, lipidsammensetningen i vann så vel som på de fysisk-kjemiske betingelser som anvendes for eksempel temperatur og trykk 43. Anvendeligheten av ikke-plane lipid nanostrukturer, særlig som kubiske faser, er begrenset på grunn av deres høye viskositet og ikke-homogent domene konsistens. Disse problemene overvinnes ved å dispergere lipid nanostrukturer i stor mengde vann for dannelse av emulsjoner som inneholder mikron eller submikron størrelse lipidpartikler olje-i-vann (O / W). På denne måte kan et passende produkt med lav viskositet fremstilles og samtidig beholde den opprinnelige lipid selv-montert struktur på innsiden av dispergerte partikler. Dannelsen av disse interne selv-sammensatte partikler (forkortet som ISAsomes 44 </sup> F.eks cubosomes fra kubiske faser og hexosomes fra heksagonale faser) krever vanligvis en kombinasjon av en høy energitilførsel trinn og tilsetning av stabilisatorer så som overflateaktive midler eller polymerer. Nyere forskning i denne retning demonstrerer anvendelsen av ulike faste partikler 45 inkludert silikananopartikler 46, leire 47-49 og karbon nanorør 50 for stabilisering av nevnte emulsjoner, hensiktsmessig betegnes som Pickering 51 eller Ramsden-Pickering emulsjoner 52.

I de senere årene, karbonbasert nanostrukturer som enslige vegger karbon nanorør (SWCNTs), har multi-vegger karbon nanorør (MWCNTs) og fullerener fått mye oppmerksomhet som nye biomaterialer 53,54. De største bekymringene er deres toksisitet 55-58, vannuoppløselighet 59 og dermed deres biokompatibilitet 56. En effektiv måte å takle disse problemene er overflaten funksjonalization ved hjelp av ikke-toksiske biokompatible og molekyler slik som lipider. I nærvær av vann, lipider samhandle med CNTs på en måte som hydrofob overflate av CNTs er skjermet fra polart vandig medium, mens de hydrofile lipid hodegrupper hjelp deres oppløselighet eller dispergering i vann 60,61. Lipider er integrerte bestanddeler av celleorganeller, samt noen mat materialer, derfor deres dekorasjon bør ideelt sett redusere in vivo toksisitet av CNTs. Biomedisinske applikasjoner basert uavhengig på CNTs 18,19 og lipid nanostrukturer 9-13 er under omfattende utvikling, men de programmene som kombinerer egenskapene til de to er ennå ikke godt utforsket.

I dette arbeidet, benytter vi to forskjellige typer av lipider og tre typer av CNTs som SWCNTs er i den uberørte formen, mens MWCNTs er funksjonalisert med hydroksyl og karboksylgrupper. Vi har benyttet meget lave konsentrasjoner av CNTs å fremstille dispersjoner som harstabilitet avhenger av flere faktorer, for eksempel typen av lipid, type CNT, forholdet mellom lipid til CNT brukt, så vel som på sonication parametere som anvendes som kraft og varighet. Denne videoen protokollen gir tekniske detaljer om en metode for kinetisk stabilisere lipid nanopartikler ved hjelp av ulike CNT-stabilisatorer.

Protocol

Forsiktig: CNTs som brukes i dette arbeidet er i nanopartikkel form som kan ha ekstra risiko i forhold til sine bulk kolleger. Innånding av grafitt, både naturlig og syntetisk, kan føre til pneumokoniose 62 lik kull arbeiderens pneumoconiosis. Dessuten har det vært spørsmål angående toksisiteten av karbonbaserte nanostrukturer og noen av de tidligere studiene foreslår akutt og kronisk toksisitet forbundet med inhalering av CNTs 63-68. Derfor unngå innånding av fint CNT pulver og håndtere det med stor forsikt…

Representative Results

De følgende resultater representerer a) stabilitet av dispersjoner, b) størrelsesfordelingen av lipidpartikler, c) den type av selv-sammenstillingen, og d) det bevis for lipid belegging av CNTs. Stabiliteten av dispersjoner (figur 2) ble overvåket ved hjelp av et 5 MP kamera med autofokus og LED-blits. Figur 2. Skjematisk av CNT …

Discussion

Stabilisering av fettpartikler
Tre forskjellige CNTs blir brukt til å stabilisere dispersjonene lipid; hvorav to er multi-vegger og funksjon hjelp -OH og -COOH grupper, og man er singel vegger og ikke-funksjon (perfekt). Den CNTs variert i størrelse slik (diameter x lengde): MWCNT-COOH: 9,5 nm x 1,5 mikrometer; MWCNT-OH: 8-15 nm x 50 mikrometer; SWCNT: 1-2 nm x 1-3 mikrometer. Pulverisert CNTs ble dispergert i vann ved sonde ultra-sonikering. Nevnte størrelser av CNTs er sannsynlig å redusere…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi ønsker å takke Dr. Matthew J. Baker, nå ved University of Strathclyde, Glasgow for støtten med Raman eksperimenter og Mr. Nick Gaunt for sitt tidligere arbeid med dette prosjektet.

Materials

Dimodan U Danisco 15312 Store at 4°C, Non-hazardous. Irritant to eyes and skin
Phytantriol (> 95%, GC) TCI Europe N.V. P1674 Store at 4°C, Non-hazardous. Irritant to eyes and skin
Single walled Carbon Nanotubes (90%) Nanostructured & Amorphous Materials, Inc.  1246YJS Store at room temperature. Away from direct light. Irritating to eyes, skin and respiratory system
Multi-walled carboxylic acid functionalised Carbon Nanotubes (> 80% Caron basis, > 8% carboxylic acid functionalized) Sigma-Aldrich Co. LLC  755125 Store at room temperature. Away from direct light. Causes serious eye irritation. May cause respiratory irritation
Graphitized Multi-walled hydroxy functionalised Carbon Nanotubes (99.9%) Nanostructured & Amorphous Materials, Inc. (NanoAmor)  1224YJF Store at room temperature. Away from direct light. Irritating to eyes, skin and respiratory system
Pluronic F127 Sigma-Aldrich Co. LLC  P2443 BioReagent, suitable for cell culture. Not a hazardous substance or mixture. Store at room temperature.
Acetone (99.5%) Fisher Scientific  10134100 Highly flammable liquid. Causes serious eye irritation. May cause drowsiness or dizziness
Scintillation Vial VWR International Ltd 548‐0704 Soda‐lime glass vial with low background count Fitted with foil lined urea cap, 20 ml
Jars with loose, enfolding lids (375ml) VWR International Ltd 216-3308
Beaker , 1000mL Fisher Scientific  12942161 heavy duty, low form, with spout and graduations
Pasteur glass pipette (150 mm length) with latex bulb Fisher Scientific  10006021
Microcentrifuge tube conical snap cap 1.5mL Fisher Scientific  11558232
Spatula Fisher Scientific  11352204
Heating magnetic stirrer Fisher Scientific  11715704
Magnetic stirrer bars (cylindrical, opaque PTFE, 30mm x 7mm (l x diameter)) Fisher Scientific  10011792
Needle (0.9 mm x 40 mm cannula length) Terumo UK Ltd MN-2038MQ
Retort Stand Set – With stand, clamp, base, rod, rubber 3 jaw and bosshead Camlab Ltd, UK 1177157
Millipore water equipment Barnstead Nanopure, Thermoscientific, USA
Progen Genfuge 24D Digital Microcentrifuge Progen Scientific C-2400
Probe ultra-sonicator, with 13 mm  SONICS, Vibracell,  USA
5MP camera with auto-focus and LED flash Samsung Galaxy Fame Mobile camera
Raman Spectrometer Horiba Jobin-Yvon LabRAM HR800 spectrometer
Mastersizer 3000  Malvern Instruments Ltd, Malvern, United Kingdom
Small angle X-ray scattering (SAXS) SAXSpace camera (Anton Paar, Graz, Austria), X-ray generating equipment (ISO-DEBYEFLEX3003, GE Inspection Technologies GmbH), closed water circuit (Chilly 35, HYFRA, Germany). 

References

  1. Peer, D., et al. Nanocarriers as an emerging platform for cancer therapy. Nature Nanotech. 2, 751-760 (2007).
  2. White, R. R., Sullenger, B. A., Rusconi, C. P. Developing aptamers into therapeutics. J. Clin. Invest. 106, 929-934 (2000).
  3. Itaka, K., Chung, U. I., Kataoka, K. Supramolecular nanocarrier for gene and siRNA delivery. Nippon Rinsho Jpn. J. Clin. Med. 64, 253-257 (2006).
  4. Xu, S., et al. Development of pH-responsive core-shell nanocarriers for delivery of therapeutic and diagnostic agents. Bioorg. Med. Chem. Lett. 19, 1030-1034 (2009).
  5. Soppimath, K. S., Tan, D. C. W., Yang, Y. Y. pH-triggered thermally responsive polymer core-shell nanoparticles for drug delivery. Adv. Mater. 17, 318-323 (2005).
  6. Hans, M., Lowman, A. Biodegradable nanoparticles for drug delivery and targeting. Curr. Opin. Solid State Mater. Sci. 6, 319-327 (2002).
  7. Petros, R. A., DeSimone, J. M. Strategies in the design of nanoparticles for therapeutic applications. Nat Rev Drug Discov. 9, 615-627 (2010).
  8. Torchilin, V. P. Multifunctional nanocarriers. Adv Drug Deliver Rev. 64, 302-315 (2012).
  9. Shmeeda, H., et al. Delivery of zoledronic acid encapsulated in folate-targeted liposome results in potent in vitro cytotoxic activity on tumor cells. J. Controlled Release. 146, 76-83 (2010).
  10. Xu, Z., et al. The performance of docetaxel-loaded solid lipid nanoparticles targeted to hepatocellular carcinoma. Biomaterials. 30, 226-232 (2009).
  11. Rosenthal, E., et al. Phase IV study of liposomal daunorubicin (DaunoXome) in AIDS-related Kaposi sarcoma. Am. J. Clin. Oncol.-Canc. 25, 57-59 (2002).
  12. Dong, Y. D., Larson, I., Bames, T. J., Prestidge, C. A., Boyd, B. J. Adsorption of Nonlamellar Nanostructured Liquid-Crystalline Particles to Biorelevant Surfaces for Improved Delivery of Bioactive Compounds. Acs Appl Mater Inter. 3, 1771-1780 (2011).
  13. Rizwan, S. B., Boyd, B. J., Rades, T., Hook, S. Bicontinuous cubic liquid crystals as sustained delivery systems for peptides and proteins. Expert Opin. Drug. Deliv. 7, 1133-1144 (2010).
  14. Yoo, H. S., Park, T. G. Folate receptor targeted biodegradable polymeric doxorubicin micelles. J. Controlled Release. 96, 273-283 (2004).
  15. Khandare, J. J., et al. Dendrimer versus linear conjugate: Influence of polymeric architecture on the delivery and anticancer effect of paclitaxel. Bioconjug. Chem. 17, 1464-1472 (2006).
  16. Prabaharan, M., Grailer, J. J., Pilla, S., Steeber, D. A., Gong, S. Gold nanoparticles with a monolayer of doxorubicin-conjugated amphiphilic block copolymer for tumor-targeted drug delivery. Biomaterials. 30, 6065-6075 (2009).
  17. Fan, J., et al. Targeted anticancer prodrug with mesoporous silica nanoparticles as vehicles. Nanotechnology. 22, (2011).
  18. Bianco, A., Prato, M. Can carbon nanotubes be considered useful tools for biological applications?. Adv. Mater. 15, 1765-1768 (2003).
  19. Kam, N. W. S., Dai, H. J. Carbon nanotubes as intracellular protein transporters: Generality and biological functionality. J. Am. Chem. Soc. 127, 6021-6026 (2005).
  20. Kulkarni, C. V. Lipid crystallization: from self-assembly to hierarchical and biological ordering. Nanoscale. 4, 5779-5791 (2012).
  21. Yaghmur, A., et al. . Drug Formulations Based on Self-Assembled Liquid Crystalline Nanostructures. , 341-360 (2014).
  22. Kulkarni, C. V. . Advances in Planar Lipid Bilayers and Liposomes. 12, 237-272 (2010).
  23. Landau, E. M., Navarro, J. V. . US Pat. , (2001).
  24. Kulkarni, C., Belsare, N., Lele, A. Studies on shrikhand rheology. J. Food Eng. 74, 169-177 (2006).
  25. Mezzenga, R., Schurtenberger, P., Burbidge, A., Michel, M. Understanding foods as soft materials. Nature Mater. 4, 729-740 (2005).
  26. Ubbink, J., Burbidge, A., Mezzenga, R. Food structure and functionality: a soft matter perspective. Soft Matter. 4, 1569-1581 (2008).
  27. Dong, Y. D., Larson, I., Hanley, T., Boyd, B. J. Bulk and dispersed aqueous phase behavior of phytantriol: effect of vitamin E acetate and F127 polymer on liquid crystal nanostructure. Langmuir. 22, 9512-9518 (2006).
  28. Yaghmur, A., Glatter, O. Characterization and potential applications of nanostructured aqueous dispersions. Adv. Colloid Interface Sci. 147, 333-342 (2009).
  29. Pardeike, J., Hommoss, A., Müller, R. H. Lipid nanoparticles (SLN, NLC) in cosmetic and pharmaceutical dermal products. Int. J. Pharm. 366, 170-184 (2009).
  30. Yaghmur, A., Rappolt, M., Østergaard, J., Larsen, C., Larsen, S. W. Characterization of bupivacaine-loaded formulations based on liquid crystalline phases and microemulsions: the effect of lipid composition. Langmuir. 28, 2881-2889 (2012).
  31. Singh, H., Ye, A., Horne, D. Structuring food emulsions in the gastrointestinal tract to modify lipid digestion. Prog. Lipid Res. 48, 92-100 (2009).
  32. Angelova, A., Angelov, B., Mutafchieva, R., Lesieur, S., Couvreur, P. Self-Assembled Multicompartment Liquid Crystalline Lipid Carriers for Protein, Peptide, and Nucleic Acid Drug Delivery. Accounts Chem. Res. 44, 147-156 (2011).
  33. Clogston, J., Caffrey, M. Controlling release from the lipidic cubic phase. Amino acids, peptides, proteins and nucleic acids. J. Controlled Release. 107, 97-111 (2005).
  34. Shah, J. C., Sadhale, Y., Chilukuri, D. M. Cubic phase gels as drug delivery systems. Adv. Drug Deliver. Rev. 47, 229-250 (2001).
  35. Boyd, B. J., Whittaker, D. V., Khoo, S. M., Davey, G. Lyotropic liquid crystalline phases formed from glycerate surfactants as sustained release drug delivery systems. Int. J. Pharm. 309, 218-226 (2006).
  36. Drummond, C. J., Fong, C. Surfactant self-assembly objects as novel drug delivery vehicles. Curr. Opin. Colloid Interface Sci. 4, 449-456 (1999).
  37. Zhao, X. Y., Zhang, J., Zheng, L. Q., Li, D. H. Studies of cubosomes as a sustained drug delivery system. J. Dispersion Sci. Technol. 25, 795-799 (2004).
  38. Malmsten, M. Phase transformations in self-assembly systems for drug delivery applications. J. Dispersion Sci. Technol. 28, 63-72 (2007).
  39. Sadhale, Y., Shah, J. C. Stabilization of insulin against agitation-induced aggregation by the GMO cubic phase gel. Int. J. Pharm. 191, 51-64 (1999).
  40. Amar-Yuli, I., Azulay, D., Mishraki, T., Aserin, A., Garti, N. The role of glycerol and phosphatidylcholine in solubilizing and enhancing insulin stability in reverse hexagonal mesophases. J. Colloid Interface Sci. 364, 379-387 (2011).
  41. Rappolt, M., Leitmannova Liu, A. . Advances in planar lipid bilayers and liposomes. 5, 253-283 (2006).
  42. Rappolt, M., Cacho-Nerin, F., Morello, C., Yaghmur, A. How the chain configuration governs the packing of inverted micelles in the cubic Fd 3 m-phase. Soft Matter. 9, 6291-6300 (2013).
  43. Kulkarni, C. V., Wachter, W., Iglesias-Salto, G., Engelskirchen, S., Ahualli, S. Monoolein: a magic lipid?. Phys. Chem. Chem. Phys. 13, 3004-3021 (2011).
  44. Yaghmur, A., de Campo, L., Sagalowicz, L., Leser, M. E., Glatter, O. Emulsified Microemulsions and Oil-Containing Liquid Crystalline Phases. Langmuir. 21, 569-577 (2005).
  45. Kulkarni, C. V., Glatter, O., Nissim, G. Ch. 6. Self-Assembled Supramolecular Architectures: Lyotropic Liquid Crystals.Surface and Interfacial Chemistry. , (2012).
  46. Salonen, A., Muller, F. O., Glatter, O. Internally Self-Assembled Submicrometer Emulsions Stabilized by Spherical Nanocolloids: Finding the Free Nanoparticles in the Aqueous Continuous Phase. Langmuir. 26, 7981-7987 (2010).
  47. Guillot, S., Bergaya, F., de Azevedo, C., Warmont, F., Tranchant, J. F. Internally structured pickering emulsions stabilized by clay mineral particles. J. Colloid Interface Sci. 333, 563-569 (2009).
  48. Muller, F., Salonen, A., Glatter, O. Monoglyceride-based cubosomes stabilized by Laponite: Separating the effects of stabilizer, pH and temperature. Colloids Surf., A. 358, 50-56 (2010).
  49. Salonen, A., Muller, F. O., Glatter, O. Dispersions of Internally Liquid Crystalline Systems Stabilized by Charged Disklike Particles as Pickering Emulsions: Basic Properties and Time-Resolved. Langmuir. 24, 5306-5314 (2008).
  50. Gaunt, N. P., Patil-Sen, Y., Baker, M. J., Kulkarni, C. V. Carbon nanotubes for stabilization of nanostructured lipid particles. Nanoscale. 7, 1090-1095 (2015).
  51. Pickerings, S. U. Emulsions. J. Chem. Soc. 91, (2001).
  52. Ramsden, W. Separation of Solids in the Surface-Layers of Solutions and ‘Suspensions’ (Observations on Surface-Membranes, Bubbles, Emulsions, and Mechanical Coagulation). — Preliminary Account. Proceedings of the Royal Society of London. 72, 156-164 (1903).
  53. Lin, Y., et al. Advances toward bioapplications of carbon nanotubes. J. Mater. Chem. 14, 527-541 (2004).
  54. Saito, N., et al. Safe Clinical Use of Carbon Nanotubes as Innovative Biomaterials. Chem. Rev. 114, 6040-6079 (2014).
  55. Pulskamp, K., Diabate, S., Krug, H. F. Carbon nanotubes show no sign of acute toxicity but induce intracellular reactive oxygen species in dependence on contaminants. Toxicol. Lett. 168, 58-74 (2007).
  56. Smart, S. K., Cassady, A. I., Lu, G. Q., Martin, D. J. The biocompatibility of carbon nanotubes. Carbon. 44, 1034-1047 (2006).
  57. Colvin, V. L. The potential environmental impact of engineered nanomaterials. Nat. Biotechnol. 21, 1166-1170 (2003).
  58. Firme, C. P., Bandaru, P. R. Toxicity issues in the application of carbon nanotubes to biological systems. Nanomed-Nanotechnol. 6, 245-256 (2010).
  59. Haddon, R. C. Carbon nanotubes. Accounts Chem. Res. 35, 997-997 (2002).
  60. Kapralov, A. A., et al. Adsorption of Surfactant Lipids by Single-Walled Carbon Nanotubes in Mouse Lung upon Pharyngeal Aspiration. Acs Nano. 6, 4147-4156 (2012).
  61. Wallace, E. J., Mark, S. P. S. Carbon nanotube self-assembly with lipids and detergent: a molecular dynamics study. Nanotechnology. 20, 045101 (2009).
  62. George, R. B. Chest medicine: essentials of pulmonary and critical care medicine. Lippincott Williams & Wilkins. , (2005).
  63. Monteiro-Riviere, N. A., Nemanich, R. J., Inman, A. O., Wang, Y. Y., Riviere, J. E. Multi-walled carbon nanotube interactions with human epidermal keratinocytes. Toxicol. Lett. 155, 377-384 (2005).
  64. Shvedova, A., et al. Exposure to carbon nanotube material: assessment of nanotube cytotoxicity using human keratinocyte cells. J. Toxicol. Env. Heal. A. 66, 1909-1926 (2003).
  65. Jia, G., et al. Cytotoxicity of carbon nanomaterials: single-wall nanotube, multi-wall nanotube, and fullerene. Environ. Sci. Technol. 39, 1378-1383 (2005).
  66. Sato, Y., et al. Influence of length on cytotoxicity of multi-walled carbon nanotubes against human acute monocytic leukemia cell line THP-1 in vitro and subcutaneous tissue of rats in vivo. Mol. BioSyst. 1, 176-182 (2005).
  67. Bottini, M., et al. Multi-walled carbon nanotubes induce T lymphocyte apoptosis. Toxicol. Lett. 160, 121-126 (2006).
  68. Cui, D., Tian, F., Ozkan, C. S., Wang, M., Gao, H. Effect of single wall carbon nanotubes on human HEK293 cells. Toxicol. Lett. 155, 73-85 (2005).
  69. Huang, T., Toraya, H., Blanton, T., Wu, Y. X-ray powder diffraction analysis of silver behenate, a possible low-angle diffraction standard. J. Appl. Crystallogr. 26, 180-184 (1993).
  70. Bokobza, L., Zhang, J. Raman spectroscopic characterization of multiwall carbon nanotubes and of composites. Express Polym. Lett. 6, 601-608 (2012).
  71. Zhao, Q., Wagner, H. D. Raman spectroscopy of carbon-nanotube-based composites. Philos. Trans. R. Soc. London, Ser. A -Math. Phys. Eng. Sci. 362, 2407-2424 (2004).
  72. Douroumis, D., Fatouros, D. G., Bouropoulos, N., Papagelis, K., Tasis, D. Colloidal stability of carbon nanotubes in an aqueous dispersion of phospholipid. Int. J. Nanomed. 2, 761-766 (2007).
  73. Worthington, R. J., Melander, C. Combination approaches to combat multidrug-resistant bacteria. Trends Biotechnol. 31, 177-184 (2013).
check_url/53489?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Patil-Sen, Y., Sadeghpour, A., Rappolt, M., Kulkarni, C. V. Facile Preparation of Internally Self-assembled Lipid Particles Stabilized by Carbon Nanotubes. J. Vis. Exp. (108), e53489, doi:10.3791/53489 (2016).

View Video