Summary

A Rat carótida Balão Injury modelo para testar Therapeutics remodela Anti-vasculares

Published: September 19, 2016
doi:

Summary

The rat carotid balloon injury model described below allows researchers to evaluate drugs or therapeutics that negate injury-induced arterial hyperplasia. Detailed pre-surgical preparation, surgical procedure, and post-surgical cares of the animal are described.

Abstract

The rat carotid balloon injury is a well-established surgical model that has been used to study arterial remodeling and vascular cell proliferation. It is also a valuable model system to test, and to evaluate therapeutics and drugs that negate maladaptive remodeling in the vessel. The injury, or barotrauma, in the vessel lumen caused by an inflated balloon via an inserted catheter induces subsequent neointimal growth, often leading to hyperplasia or thickening of the vessel wall that narrows, or obstructs the lumen. The method described here is sufficiently sensitive, and the results can be obtained in relatively short time (2 weeks after the surgery). The efficacy of the drug or therapeutic against the induced-remodeling can be evaluated either by the post-mortem pathological and histomorphological analysis, or by ultrasound sonography in live animals. In addition, this model system has also been used to determine the therapeutic window or the time course of the administered drug. These studies can leadto the development of a better administrative strategy and a better therapeutic outcome. The procedure described here provides a tool for translational studies that bring drug and therapeutic candidates from bench research to clinical applications.

Introduction

A angioplastia é um procedimento endovascular utilizado para alargar as artérias estreitadas ou obstruídas resultantes de condições patológicas tais como a aterosclerose. Uma complicação comum da angioplastia é a hiperplasia neointimal pós-operacional, ou a restenose, que ocorre devido a lesões cirúrgicas e subsequente remodelação vascular induzida por inflamação. Estas condições conduzem à proliferação de células lisas vasculares, e várias consequências fisiopatológicas 1-3. Hiperplasia neointimal re-engrossa o navio, e ocorre em até 60% dos pacientes pós-angioplastia no primeiro ano. Portanto, a restenose é um grande revés do procedimento de angioplastia amplamente utilizado 4. Embora a implantação do stent droga-eluição pode ajudar a prevenir reestenose, os candidatos selecionados apenas pode submeter a esse procedimento caro 5.

Ambos os estudos animais e clínicos têm demonstrado que a inflamação crónica gerado por vasculesão lar e / ou ferida cirúrgica serve como o principal estímulo para 2,4 crescimento neointimal pós-angioplastia. As carótidas de ratos lesão por balão modelo mimetiza a situação clínica e, portanto, serve como um sistema modelo útil para identificar factores celulares que envolvem na remodelação vascular e proliferação de células vasculares 6-9. Este sistema modelo também é uma ferramenta muito útil para avaliar e / ou tela de medicamentos e reagentes terapêuticos que suprimem o crescimento neointimal em estudos translacionais pré-clínicos 10-14.

Em comparação com o modelo de murino de arame carótida ferimento 15 e o fio artéria femoral modelo de lesão de murino 16, o modelo de lesão carótida em ratos de balão tem as vantagens de ser suficientemente grande em tamanho para a facilidade de procedimento cirúrgico que facilita a reprodutibilidade da lesão infligida. Ele pode fornecer um maior número de células primárias (por exemplo, células do músculo liso vascular, células endoteliais) para additional estudos in vitro para delinear o mecanismo molecular que regula a remodelação vascular. Importante, em comparação com os ratinhos, os ratos são também conhecidos como sendo um melhor modelo para estudos fisiológicos e toxicológicos 17. Embora uma desvantagem ou limitação do modelo de rato, é a falta de modelos genéticos modificados e knockout de genes, esta desvantagem pode ser superada pela disponibilidade da sequência genómica de rato e o desenvolvimento recente de poderosas ferramentas de edição genómicas, tais como tecnologia CRISPR-CAS que torna possível manipulação de vastas faixas de seqüências genômicas em diferentes sistemas modelo 18,19.

Embora o modelo de lesão por balão de rato foi utilizado por vários laboratórios e vários protocolos completos foram publicados 20,21, este protocolo visa fornecer mais detalhes em preparações pré-cirurgia e pode orientar investigadores novos para este procedimento para configurar esta prática cirúrgica. Ressaltamos, ainda, o cuidado pós-operatório de tele animais que não permite apenas análises post-mortem patológicos e histomorfológicas dos efeitos terapêuticos sobre o remodelamento arterial, mas também estudos de ultra-som ultra-sonográficos de animais vivos 13,22.

Protocol

NOTA: o uso do modelo de lesão por balão rato e procedimentos associados, incluindo injeção de estudos ultra-sonográficos sRAGE e ultra-som recombinantes foram aprovados pela Comissão de animal Cuidado e Uso (ACUC) do Instituto Nacional sobre Envelhecimento, NIH. 1. Preparações Pré-cirurgia Instrumento, Plataforma cirúrgica e Equipamentos de Proteção Individual. Ver Materiais e Equipamento da Tabela para todos os instrumentos …

Representative Results

Duas semanas após a lesão por balão, o rato é sacrificado e as artérias carótidas são isoladas para análise histo-morfológica. Ambos operados artéria carótida esquerda e artéria direita un-operado são cortados transversalmente, processados ​​e embebidos em parafina. As amostras são, em seguida, parafina mais fina-seccionados e corados com hematoxilina-eosina (H & E). análises Histo-morfológicas são realizadas utilizando um sistema de análise de imagem digital. O…

Discussion

Houve dois métodos utilizados para insuflar o balão, de modo a gerar a lesão que remove o endotélio mural no lúmen da carótida arteriais. Um é para encher a seringa ligada com o líquido 20, e a outra é a utilização de pressão de ar 21. Nós preferimos usar uma seringa cheia de líquido, porque o volume de líquido exacto (0,02 ml) será usado para cada procedimento. Isto rende uma inflação preciso e reprodutível do balão, o que leva a um nível semelhante de lesões em cada animal s…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The work was supported by the intramural research program of the NIH, National Institute on Aging, and by a Priority Research Centers Program grant from the National Research Foundation (NRF-2009-0093812) funded by the Ministry of Science, Information and Communication Technology, & Future Planning, the Republic of Korea (H.T.). We thank Dr. Han-sol Park for putting “material” part together for the manuscript.

Materials

2 F Fogarty balloon embolectomy catheter                  Edwards Lifesciences            
Standard scalpel Fine Science Tools
Small  curved forceps (Large radius Dumont#7shanks curved)        Fine Science Tools         
Large, medium and small micro-scissors Roboz
Needles (20 G)   TycoHealthcare
Micro-surgery forceps with micro-blunted atraumatic tips Fine Science Tools        
Atraumatic straight small arterial clamps                          Fine Science Tools                                       
Retractor  with maximum spread 5.5 cm long blunt teeth Fine Science Tools                                          
Silk suture (4.0 and  6.0 ) Fine Science Tools                                          
Syringe (1.0 ml)  BD 
Curity gauze sponges AllegroMedical
Cotton tip applicators sterile and non-sterile Puritan Medical Products
Compact hot bead sterilizer Fine Science Tools
Self-regulating heating pad Fine Science Tools                                            
ADS200 anesthesia system/ventilator Paragon Medical
Isoflurane (forane), liquid form Baxter
Sodium chloride 0.9% (Saline)  Hospira
Buprenex (buprenorphine)                      Reckitt Benckiser Healthcare (UK) Ltd. 
70% alcohol Fisher
1: 10 Betadine Fisher

References

  1. Chaabane, C., Otsuka, F., Virmani, R., Bochaton-Piallat, M. L. Biological responses in stented arteries. Cardiovasc Res. 99, 353-363 (2013).
  2. Goel, S. A., Guo, L. W., Liu, B., Kent, K. C. Mechanisms of post-intervention arterial remodelling. Cardiovasc Res. 96, 363-371 (2012).
  3. Khan, R., Agrotis, A., Bobik, A. Understanding the role of transforming growth factor-beta1 in intimal thickening after vascular injury. Cardiovasc Res. 74, 223-234 (2007).
  4. Schillinger, M., Minar, E. Restenosis after percutaneous angioplasty: the role of vascular inflammation. Vasc Health Risk Manag. 1, 73-78 (2005).
  5. Katz, G., Harchandani, B., Shah, B. Drug-eluting stents: the past, present, and future. Curr Atheroscler Rep. 17, 485 (2015).
  6. Jain, M., Singh, A., Singh, V., Barthwal, M. K. Involvement of Interleukin-1 Receptor-Associated Kinase-1 in Vascular Smooth Muscle Cell Proliferation and Neointimal Formation After Rat Carotid Injury. Arterioscler Thromb Vasc Biol. , (2015).
  7. Lee, K. P., et al. Carvacrol inhibits atherosclerotic neointima formation by downregulating reactive oxygen species production in vascular smooth muscle cells. Atherosclerosis. 240, 367-373 (2015).
  8. Li, G., Chen, S. J., Oparil, S., Chen, Y. F., Thompson, J. A. Direct in vivo evidence demonstrating neointimal migration of adventitial fibroblasts after balloon injury of rat carotid arteries. Circulation. 101 (12), 1362-1365 (2000).
  9. Noda, T., et al. New endoplasmic reticulum stress regulator, gipie, regulates the survival of vascular smooth muscle cells and the neointima formation after vascular injury. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 35 (5), 1246-1253 (2015).
  10. Deuse, T., et al. Dichloroacetate prevents restenosis in preclinical animal models of vessel injury. Nature. 509 (7502), 641-644 (2014).
  11. Guo, J., et al. p55gamma functional mimetic peptide N24 blocks vascular proliferative disorders. J Mol Med (Berl). , (2015).
  12. Oh, C. J., et al. Dimethylfumarate attenuates restenosis after acute vascular injury by cell-specific and Nrf2-dependent mechanisms. Redox Biol. 2, 855-864 (2014).
  13. Tae, H. J., et al. The N-glycoform of sRAGE is the key determinant for its therapeutic efficacy to attenuate injury-elicited arterial inflammation and neointimal growth. J Mol Med (Berl. 91 (12), 1369-1381 (2013).
  14. Zhou, Z., et al. Receptor for AGE (RAGE) mediates neointimal formation in response to arterial injury. Circulation. 107 (17), 2238-2243 (2003).
  15. Lindner, V., Fingerle, J., Reidy, M. A. Mouse model of arterial injury. Circ Res. 73 (5), 792-796 (1993).
  16. Le, V., Johnson, C. G., Lee, J. D., Baker, A. B. Murine model of femoral artery wire injury with implantation of a perivascular drug delivery patch. J Vis Exp. (96), e52403 (2015).
  17. Iannaccone, P. M., Jacob, H. J. Rats! . Dis Model Mech. 2 (5-6), 206-210 (2009).
  18. Fu, Y., Sander, J. D., Reyon, D., Cascio, V. M., Joung, J. K. Improving CRISPR-Cas nuclease specificity using truncated guide RNAs. Nat Biotechnol. 32 (3), 279-284 (2014).
  19. Sander, J. D., Joung, J. K. CRISPR-Cas systems for editing, regulating and targeting genomes. Nat Biotechnol. 32 (4), 347-355 (2014).
  20. Tulis, D. A. Rat carotid artery balloon injury model. Methods Mol Med. 139, 1-30 (2007).
  21. Zhang, W., Trebak, M. Vascular balloon injury and intraluminal administration in rat carotid artery. J Vis Exp. (94), (2014).
  22. Tae, H. J., et al. Vessel ultrasound sonographic assessment of soluble receptor for advanced glycation end products efficacy in a rat balloon injury model. Curr Ther Res Clin Exp. 76, 110-115 (2014).
  23. Tae, H. J., et al. Chronic treatment with a broad-spectrum metalloproteinase inhibitor, doxycycline, prevents the development of spontaneous aortic lesions in a mouse model of vascular Ehlers-Danlos syndrome. J Pharmacol Exp Ther. 343 (1), 246-251 (2012).
  24. Sakaguchi, T., et al. Central role of RAGE-dependent neointimal expansion in arterial restenosis. J Clin Invest. 111 (7), 959-972 (2003).
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Petrasheskaya, N., Tae, H., Ahmet, I., Talan, M. I., Lakatta, E. G., Lin, L. A Rat Carotid Balloon Injury Model to Test Anti-vascular Remodeling Therapeutics. J. Vis. Exp. (115), e53777, doi:10.3791/53777 (2016).

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