Summary

ग्लूकोमा उत्प्रेरण एक के ि<em> Vivo</em> चूहे मॉडल और साबुत माउंट रेटिना तैयारी

Published: March 12, 2016
doi:

Summary

Glaucoma is characterized by damage to retinal ganglion cells. Inducing glaucoma in animal models can provide insight into the study of this disease. Here, we outline a procedure that induces loss of RGCs in an in vivo rat model and demonstrates the preparation of whole-mount retinas for analysis.

Abstract

मोतियाबिंद रेटिना नाड़ीग्रन्थि कोशिकाओं (RGCs) केंद्रीय तंत्रिका तंत्र को प्रभावित करने की एक बीमारी है। RGC ऑप्टिक तंत्रिका को बनाने एक्सोन दृश्य धारणा के लिए मस्तिष्क को दृश्य इनपुट ले। RGCs और उनके एक्सोन को नुकसान दृष्टि हानि और / या अंधापन की ओर जाता है। हालांकि मोतियाबिंद के विशिष्ट कारण अज्ञात है, रोग के लिए प्राथमिक जोखिम कारक एक ऊंचा intraocular दबाव है। पशु मॉडल में ग्लूकोमा उत्प्रेरण प्रक्रियाओं RGC मौत की व्यवस्था का अध्ययन शोधकर्ताओं के लिए एक महत्वपूर्ण उपकरण हैं। इस तरह की जानकारी के लिए प्रभावी उपचार है कि न्यूरोप्रोटेक्टिव दृष्टि हानि की रोकथाम में सहायता कर सकता है के विकास के लिए नेतृत्व कर सकते हैं। एक विवो चूहे मॉडल की स्थिति में जहां 2 एम अतितनावी खारा के 50 μl अधिश्वेतपटल सम्बन्धी शिरापरक जाल में इंजेक्ट किया जाता है, जैसे – इस पत्र में प्रोटोकॉल मोतियाबिंद उत्प्रेरण की एक विधि का वर्णन है। जहाजों की blanching सफल इंजेक्शन इंगित करता है। यह प्रक्रिया मोतियाबिंद अनुकरण करने के लिए RGCs की हानि का कारण बनता है। एक महीने के बादइंजेक्शन, जानवरों की बलि दी जाती है और आंखों को हटा रहे हैं। इसके बाद, कॉर्निया, लेंस, और कांच का एक eyecup बनाने के लिए निकाल रहे हैं। रेटिना तो आँख के पीछे से खुली और कैक्टस सुइयों का उपयोग Sylgard व्यंजन पर टिकी है। इस बिंदु पर, रेटिना में न्यूरॉन्स के विश्लेषण के लिए कलंकित किया जा सकता। इस प्रयोगशाला के परिणाम से पता चलता है कि RGCs के लगभग 25% की प्रक्रिया एक महीने के भीतर खो रहे हैं जब आंतरिक नियंत्रण की तुलना में। यह प्रक्रिया एक विवो चूहे मोतियाबिंद मॉडल में रेटिना नाड़ीग्रन्थि सेल मौत के मात्रात्मक विश्लेषण के लिए अनुमति देता है।

Introduction

ग्लूकोमा विशेष रूप से, रेटिना नाड़ीग्रन्थि कोशिकाओं 1-2 रेटिना में न्यूरॉन्स को प्रभावित करने, नेत्र रोगों का एक समूह है। इन कोशिकाओं के एक्सोन ऑप्टिक मस्तिष्क जहां दृष्टि में माना जाता है के लिए दृश्य जानकारी ले जाने तंत्रिका बनने के लिए एकाग्र। RGCs और उनके एक्सोन को नुकसान इसलिए दृश्य दोष का कारण बनता है।

प्राथमिक मोतियाबिंद विकारों के साथ जुड़े विशेषताओं RGC अध: पतन और मौत, वृद्धि हुई intraocular दबाव (आईओपी), और ऑप्टिक डिस्क cupping और शोष हैं। इन सुविधाओं के दृश्य क्षेत्र हानि या पूर्ण, अपरिवर्तनीय अंधापन हो। वर्तमान में, मोतियाबिंद दुनिया भर में 70 लाख लोगों को 3 में अंधापन का कारण है। जैसे, यह दुनिया का अंधापन 4 का तीसरा सबसे बड़ा कारण है।

मोतियाबिंद में RGC मौत की सटीक व्यवस्था अज्ञात है। अधिक से अधिक शोध रहस्य अनलॉक करने के लिए किया गया है। यह जाना जाता है, तथापि, कि मोतियाबिंद के प्राथमिक जोखिम कारक वृद्धि रहा हैजलीय हास्य (एएच) आँखों के पूर्वकाल कक्ष में की अनियमित परिसंचरण के कारण n intraocular दबाव। एएच आंख की avascular पूर्वकाल कक्ष में रक्त के लिए एक पारदर्शी और रंगहीन स्थानापन्न के रूप में कार्य करता है। यह आसपास की कोशिकाओं का पोषण होता है, चयापचय की प्रक्रिया से स्रावित अपशिष्ट उत्पादों को हटा, न्यूरोट्रांसमीटर परिवहन, और रोग राज्यों 1 के दौरान ड्रग्स और आंख के भीतर भड़काऊ कोशिकाओं के संचलन परमिट।

जलीय हास्य संचलन के रखरखाव सिलिअरी शरीर और घरनदार meshwork शामिल है। जलीय हास्य सिलिअरी शरीर द्वारा निर्मित है। यह तो पूर्वकाल कक्ष में बहती नेत्र ऊतक के समग्र स्वास्थ्य को बनाए रखने के लिए। 75 – जब तरल पदार्थ सिलिअरी मांसपेशियों में स्पंजी ऊतक के तीन परतों के माध्यम से फ़िल्टर किया जाता है जलीय हास्य बहिर्वाह के 80% के लिए सक्रिय रूप से गैर-रंगदार सिलिअरी उपकला के माध्यम से स्रावित होता है। घरनदार meshwork के माध्यम से और Schlemm की नहर जो कार्रवाई के माध्यम से तरल पदार्थ बाहर निकालता हैरक्त प्रणाली 5 व्याप्ति शेष 20 में एँ – बहिर्वाह के 25% घरनदार meshwork नजरअंदाज और निष्क्रिय uveo-scleral मार्ग के माध्यम से ultrafiltration और प्रसार द्वारा स्रावित होता है। इस मार्ग में intraocular दबाव 1 की अपेक्षाकृत स्वतंत्र होने के लिए प्रकट होता है।

जलीय हास्य उत्पादन और बहिर्वाह संतुलन से बाहर हैं, आंख के भीतर दबाव बनाता है। कहा गया है, intraocular दबाव में इस वृद्धि के मोतियाबिंद के विकास में प्राथमिक जोखिम कारक है। इस तरह के दबाव आंख के पीछे रेटिना में न्यूरॉन्स की जटिल परतों के लिए नुकसान का कारण बनता है। ऑप्टिक तंत्रिका के रेटिना नाड़ीग्रन्थि सेल एक्सोन मस्तिष्क को नुकसान नहीं रह सटीक दृश्य जानकारी प्राप्त करने के लिए कारण बनता है। नतीजतन, दृष्टि की धारणा को खो दिया है और पूरा अंधापन हो सकता है।

तिथि करने के लिए, वहाँ मोतियाबिंद के लिए कोई इलाज नहीं है। विभिन्न उपचार विधियों मौजूद है कि मुख्य रूप से intraocular दबाव को कम करना है। इन सामयिक शामिलऐसे beta1 एड्रीनर्जिक रिसेप्टर ब्लॉकर्स, या सामयिक प्रोस्टाग्लैंडीन analogues के रूप में दवा वर्गों। बीटा ब्लॉकर्स जलीय हास्य 7 के उत्पादन को कम करके intraocular दबाव को कम। Prostaglandins जलीय हास्य 8-14 का बहिर्वाह में वृद्धि से IOP कम करने के लिए कार्य करते हैं। अल्फा एड्रीनर्जिक एगोनिस्ट और कार्बोनिक anhydrase अवरोधकों को भी उपचार के तरीके के रूप में माध्यमिक किया जाता है। अल्फा एड्रीनर्जिक एगोनिस्ट uveoscleral मार्ग के माध्यम से 15-17 बहिर्वाह वृद्धि हुई है। कार्बोनिक anhydrase अवरोधकों एंजाइमी निषेध 18 से आह का उत्पादन कम। बहुत अधिक आक्रामक प्रक्रियाओं भी मोतियाबिंद के इलाज के लिए इस्तेमाल किया जा रहा है। लेजर trabeculoplasty जलीय हास्य 19 का बहिर्वाह बढ़ाने के लिए प्रयोग किया जाता है। एक अन्य शल्य चिकित्सा, trabeculectomy कहा जाता है, फिल्टर करने के लिए एएच जब पारंपरिक trabecular मार्ग 20-21 अवरुद्ध है एक वैकल्पिक जल निकासी साइट बनाता है।

इन उपचार के विकल्प eff ज्ञात किया गया हैectively IOP कम। हालांकि, मोतियाबिंद रोगियों का 40% तक अधिक पूर्ण चिकित्सकीय तरीके की आवश्यकता दर्शाते सामान्य IOP स्तरों इसके अतिरिक्त दिखा। 22,23, रेटिना नाड़ीग्रन्थि सेल मौत मोतियाबिंद में देखा अपरिवर्तनीय है एक बार यह शुरू होता है और वर्तमान उपचार रोग की प्रगति को रोक नहीं है 24-28। यह प्रभावी न्यूरोप्रोटेक्टिव चिकित्सा कि न्यूरॉन्स को खुद के अस्तित्व के लक्ष्य के लिए आवश्यकता पर प्रकाश डाला गया है। मोतियाबिंद मॉडल का विकास इस विकास के लिए महत्वपूर्ण है।

इस अध्ययन में हम एक संशोधित प्रक्रिया के मूल मॉरिसन 29 द्वारा उल्लिखित का उपयोग कर वयस्क लांग इवांस चूहों में मोतियाबिंद की तरह प्रभाव उत्प्रेरण की एक विधि प्रदर्शन कर रहे हैं। इस प्रक्रिया में, अधिश्वेतपटल सम्बन्धी शिरापरक जाल में 2 एम अतितनावी खारा के इंजेक्शन ऊतक scarring द्वारा मोतियाबिंद जैसी स्थिति लाती घरनदार meshwork intraocular दबाव में वृद्धि हुई है और w RGCs का एक महत्वपूर्ण नुकसान के लिए अग्रणी में जलीय हास्य बहिर्वाह कम करने के लिएप्रक्रिया 30-31 के एक माह के Ithin। ऐसे में यहाँ वर्णित एक के रूप में मोतियाबिंद उत्प्रेरण प्रक्रियाओं, मोतियाबिंद के उपचार में नए घटनाक्रम का ताला खोलने के लिए महत्वपूर्ण हो सकता है।

Protocol

पशु विषयों का उपयोग कर सभी प्रक्रियाओं पश्चिमी मिशिगन विश्वविद्यालय में पशु की देखभाल और उपयोग समिति (IACUC) के संस्थान के मानकों के अनुसार किया गया है। 1. पशु इस अध्ययन में उम्र के 3 महीने का …

Representative Results

यह खंड तंत्र घटकों और प्रक्रिया एक विवो चूहे मोतियाबिंद मॉडल में मोतियाबिंद जैसी स्थितियों को प्रेरित किया जाता दिखाता है। हम व्यक्तिगत उपकरण और उपकरणों एक अतितनावी खारा इंजेक्शन जो…

Discussion

इस प्रोटोकॉल एक विवो चूहे मॉडल में मोतियाबिंद जैसी स्थिति उत्प्रेरण की एक विधि का वर्णन है। यह प्रक्रिया घरनदार meshwork 29, 32। निशान ऊतक विकास जलीय हास्य का बहिर्वाह जो पूर्वकाल कक्ष में दबाव बढ़ता occ…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

C. Linn is supported by an NIH grant (NIH NEI EY022795).

Materials

Xylazine hydrochloride, Minimum 99% Sigma, Life Science X1251-1G
Ketamine hydrochloride injection, USP, 100mg/mL  Putney, Inc NDC 26637-411-01 10 mL bottle
Acepromazine Maleate, 10mg/mL Phoenix Pharmaceutical, Inc NDC 57319-447-04, 670008L-03-0408 50 mL bottle
Serum bottle, 10 mL VWR 16171319 Borosilicate glass
1 mL insulin syringe  VWR BD329410 28 gauge needle 
Sodium chloride Sigma  S7653 2 M Solution 
Microelectrode Puller  Narishige Group PP-830
Heavy Polished Standard and Thin Walled Borosilicate Tubing  Sutter Instruments B150-86-10HP without filament, 0.86 mm
Microfil syringe needle for filling micropipettes World Precision Instruments, Inc MF28G
18 gauge Luer-Lock needle Fisher Scientific 1130421 Syringe needle
Flexible Polyethylene Tubing Fisher Scientific 22046941 0.034 inch diameter, approximately 10 inches 
Proparacaine Hydrochloride Opthalmic Solution, USP, 0.5% Akorn, Inc NDC 17478-263-12 15 mL  sterile bottle 
Curved Scissors Fine Science Tools 14061-11
Microscope Leica  StereoZoom 4
Hemostat Clamp  Fine Science Tools 1310912 curved edge
Triple Antibiotic Ointment  Fisher Scientific NC0664481
Scalpel handle Fine Science Tools  10004-13
Scalpel blade # 11 Fine Science Tools  10011-00
60 mm x 15 mm Disposable Petri Dish VWR 351007
Phosphate Buffered Saline 10x Concentrate Sigma, Life Science  P7059-1L 1x dilution 
Spring Scissors Fine Science Tools  15009-08
Forceps (2), Dumont # 5 Fine Science Tools 11251-30
3 mL Transfer Pipets, polyethylene, non sterile BD Biosciences 357524 or 52947-948 1 and 2 mL graduations
35 mm x 10 mm Easy Grip Petri Dish  BD Biosciences 351008
Sylgard 184 VWR 102092-312
Cactus Needles N/A N/A
Paraformaldehyde EMD Millipore  PX0055-3 or 818715.0100 Made into a 4% solution 
Triton X-100 Sigma  T9284-100 mL Made into both a 1% and 0.1% solution 
Fetal Bovine Serum  Atlanta Biological S11150 500 ml
Purified Mouse Anti-Rat CD90/mouse CD90.1 BD Pharmingen Cat 554892 1:300 dilution 
Alexa Fluor 594 goat anti-mouse  Life Technologies  A11005 1:300 dilution 
Microscope Slides Corning  2948-75×25
Glycerol  Sigma  G5516-100 mL  50% glycerol to 50% PBS, by weight 
Coverglass  Corning  2975-225 Thickness 1 22 x 50 mm 
Confocal Microscope Nikon  C2 Eclipse Ti

References

  1. Goel, M., Picciani, R. G., Lee, R. K., Bhattacharya, S. K. Aqueous Humor Dynamics: A Review. Open Ophthalmol. J. 4, 52-59 (2010).
  2. Thylefors, B., Negrel, A. D. The global impact of glaucoma. Bull. World Health Organ. 72 (3), 323-326 (1994).
  3. Thylefors, B., Negrel, A. D., Pararajasegaram, R., Dadzie, K. Y. Global data on blindness. Bull. World Health Organ. 73 (1), 115-121 (1995).
  4. Roodhooft, J. M. Leading causes of blindness worldwide. Bull Soc. Belge. Ophtalmol. 283, 19-25 (2002).
  5. Sacca, S., Pulliero, A., Izzotti, A. The Dysfunction of the Trabecular Meshwork During Glaucoma Course. J. Cell. Physiol. 230 (3), 510-525 (2014).
  6. McKinnon, S. J., Goldberg, L. D., Peeple, P., Walt, J. G., Bramley, T. J. Current Management of Glaucoma and the Need for Complete Therapy. Am. J. Manag. Care. 14 (1 Suppl), S20-S27 (2008).
  7. Lee, D. A., Higginbotham, E. J. Glaucoma and its treatment: a review. Am. J. Health Syst. Pharm. 62, 691-699 (2005).
  8. Brandt, J. D., Vandenburgh, A. M., Chen, K., Whitcup, S. M. Bimatoprost Study Group. Comparison of once- or twice-daily bimatoprost with twice-daily timolol in patients with elevated IOP: a 3-month clinical trial. Ophthalmology. 108, 1023-1031 (2001).
  9. Camras, C. B. Comparison of latanoprost and timolol in patients with ocular hypertension and glaucoma: a six-month masked, multicenter trial in the United States. The United States Latanoprost Study Group. Ophthalmology. 103, 138-147 (1996).
  10. Netland, P. A., et al. Travoprost compared with latanoprost and timolol in patients with open-angle glaucoma or ocular hypertension. Am. J. Ophthalmol. 132, 472-484 (2001).
  11. Sherwood, M., Brandt, J. Bimatoprost Study Groups 1 and 2. Six-month comparison of bimatoprost once-daily and twice-daily with timolol twice-daily in patients with elevated intraocular pressure. Surv. Ophthalmol. 45 (Suppl 4), S361-S368 (2001).
  12. Watson, P., Stjernschantz, J. A six-month, randomized, double-masked study comparing latanoprost with timolol in open-angle glaucoma and ocular hypertension. The Latanoprost Study Group. Ophthalmology. 103, 126-137 (1996).
  13. Hedman, K., Alm, A., Gross, R. L. Pooled-data analysis of three randomized double-masked, six-month studies comparing intraocular pressure-reducing effects of latanoprost and timolol in patients with ocular hypertension. J. Glaucoma. 12 (6), 463-465 (2003).
  14. Schumer, R. A., Podos, S. M. The nerve of glaucoma!. Arch. Ophthalmol. 112, 37-44 (1994).
  15. Tsai, J. C., Chang, H. W. Comparison of the effects of brimonidine 0.2% and timolol 0.5% on retinal nerve fiber layer thickness in ocular hypertensive patients: a prospective, unmasked study. J. Ocul. Pharmacol. Ther. 21 (6), 475-482 (2005).
  16. Wilhelm, B., Ludtke, H., Wilhelm, H. The BRAION Study Group. Efficacy and tolerability of 0.2% brimonidine tartrate for the treatment of acute non-arteritic anterior ischemic optic neuropathy (NAION): a 3-month, double-masked, randomised, placebo-controlled trial. Graefes Arch. Clin. Exp. Ophthalmol. 244, 551-558 (2006).
  17. Fazzone, H. E., Kupersmith, M. J., Leibmann, J. Does topical brimonidine tartrate help NAION?. Br. J. Ophthalmol. 87, 1193-1194 (2003).
  18. Harris, A., Arend, O., Kagemann, L., Garrett, M., Chung, H. S., Martin, B. Dorzolamide, visual function and ocular hemodynamics in normal-tension glaucoma. J. Ocul. Pharmacol. Ther. 15, 189-197 (1999).
  19. Leahy, K. E., White, A. J. Selective laser trabeculoplasty: current perspectives. Clin. Ophthalmol. 11 (9), 833-841 (2015).
  20. Nesaratnam, N., Sarkies, N., Martin, K. R., Shahid, H. Pre-operative intraocular pressure does not influence outcome of trabeculectomy surgery: a retrospective cohort study. BMC Ophthalmol. 15 (1), 17 (2015).
  21. Cairns, J. E. Trabeculectomy. Preliminary report of a new method. Am. J. Ophthalmol. 66 (4), 673-679 (1968).
  22. Cheng, J. W., Cai, J. P., Wei, R. L. Meta-analysis of medical intervention for normal tension glaucoma. Ophthalomology. 116 (7), 1243-1249 (2009).
  23. Dielmans, I., Vingerling, J. R., Wolfs, R. C. W., Hofman, A., Grobbee, D. E., deJong, P. T. V. M. The prevalence of primary open-angle glaucoma in a population based study in The Netherlands: the Rotterdam Study. Ophthalmology. 101, 1851-1855 (1994).
  24. Lichter, P. R., et al. Interim clinical outcomes in the Collaborative Initial Glaucoma Treatment Study comparing initial treatment randomized to medications or surgery. Ophthalmology. 108 (11), 1943-1953 (2001).
  25. Heijl, A., et al. Reduction of intraocular pressure and glaucoma progression: results from the Early Manifest Glaucoma Trial. Arch. Ophthalmol. 120 (10), 1268-1279 (2002).
  26. Kass, M. A., et al. The Ocular Hypertension Treatment Study: a randomized trial determines that topical ocular hypotensive medication delays or prevents the onset of primary open-angle glaucoma. Arch. Ophthalmol. 120 (6), 701-713 (2002).
  27. Beidoe, G., Mousa, S. A. Current primary open-angle glaucoma treatments and future directions. Clin. Ophthalmol. 6, 1699-1707 (2012).
  28. Jeong, J. H., Park, K. H., Jeoung, J. W., Kim, D. M. Preperimetric normal tension glaucoma study: long-term clinical course and effect of therapeutic lowering of intraocular pressure. Acta. Ophthalmol. 92 (3), e185-e193 (2014).
  29. Morrison, J. C., Moore, C. G., Deppmeier, L. M., Gold, B. G., Meshul, C. K., Johnson, E. C. A Rat Model of Chronic Pressure-Induced Optic Nerve Damage. Exp. Eye Res. 64 (1), 85-96 (1997).
  30. Morrison, J. C., Johnson, E., Cepurna, W. O. Rat Models for Glaucoma Research. Prog. Brain Res. 173, 285-301 (2008).
  31. Iwamoto, K., Birkholz, P., Schipper, A., Mata, D., Linn, D. M., Linn, C. L. A Nicotinic Acetylcholine Receptor Agonist Prevents Loss of Retinal Ganglion Cells in a Glaucoma Model. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 55 (2), 1078-1087 (2014).
  32. Morrison, J. C., Fraunfelder, F. W., Milne, S. T., Moore, C. G. Limbal Microvasculature of the Rat Eye. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 36 (3), 751-756 (1995).
  33. McKinnon, S. J., Schlamp, C. L., Nickells, R. W. Mouse Models of Retinal Ganglion Cell Death and Glaucoma. Exp. Eye Res. 88 (4), 816-824 (2009).
  34. Maass, A., et al. Assessment of Rat and Mouse RGC Apoptosis Imaging in Vivo with Different Scanning Laser Ophthalmoscopes. Curr. Eye Res. 32 (10), 851-861 (2007).
  35. Li, Y., Schlamp, C. L., Nickells, R. W. Experimental induction of retinal ganglion cell death in adult mice. Investig. Ophthalmol. Vis. Sci. 40 (5), 1004-1008 (1999).
  36. Gross, R. L., et al. A mouse model of elevated intraocular pressure: retina and optic nerve findings. Trans. Am. Ophthalmol. Soc. 101, 163-171 (2003).
  37. Cenni, M. C., Bonfanti, L., Martinou, J. C., Ratto, G. M., Strettoi, E., Maffei, L. Long-term survival of retinal ganglion cells following optic nerve section in adult bcl-2 transgenic mice. Eur. J. Neurosci. 8 (8), 1735-1745 (1996).
  38. Templeton, J. P., Geisert, E. E. A practical approach to optic nerve crush in the mouse. Mol. Vis. 18, 2147-2152 (2012).
  39. Schlamp, C. L., Johnson, E. C., Li, Y., Morrison, J. C., Nickells, R. W. Changes in Thy1 gene expression associated with damaged retinal ganglion cells. Mol. Vis. 7, 192-201 (2001).
  40. Libby, R. T., et al. Susceptibility to neurodegeneration in a glaucoma is modified by Bax gene dosage. PLoS Genet. 1, 17-26 (2005).
  41. Yang, Z., et al. Changes in gene expression in experimental glaucoma and optic nerve transection: the equilibrium between protective and detrimental mechanisms. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 48 (12), 5539-5548 (2007).
  42. Huang, W., Fileta, J., Guo, Y., Grosskreutz, C. L. Downregulation of Thy1 in retinal ganglion cells in experimental glaucoma. Curr. Eye Res. 31 (3), 265-271 (2006).
  43. Smedowski, A., Pietrucha-Dutczak, M., Kaarniranta, K., Lewin-Kowalik, J. A rat experimental model of glaucoma incorporating rapid-onset elevation of intraocular pressure. Sci. Rep. 4, 1-11 (2014).
  44. Cone, F. E., Gelman, S. E., Son, J. L., Pease, M. E., Quigley, H. A. Differential susceptibility to experimental glaucoma among 3 mouse strains using bead and viscoelastic injection. Exp. Eye Res. 91 (3), 415-424 (2010).
  45. Pease, M. E., Cone, F. E., Gelman, S., Son, J. L., Quigley, H. A. Calibration of the TonoLab tonometer in mice with spontaneous or experimental glaucoma. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 52 (2), 858-864 (2011).
  46. Cone, F. E., et al. The effects of anesthesia, mouse strain and age on intraocular pressure and an improved murine model of experimental glaucoma. Exp. Eye Res. 99, 27-35 (2012).
  47. Frankfort, B. J., et al. Elevated intraocular pressure causes inner retinal dysfunction before cell loss in a mouse model of experimental glaucoma. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 54 (1), 762-770 (2013).
  48. Sappington, R. M., Carlson, B. J., Crish, S. D., Calkins, D. J. The microbead occlusion model: a paradigm for induced ocular hypertension in rats and mice. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 51 (1), 207-216 (2010).
  49. Kalesnykas, G., et al. Retinal ganglion cell morphology after optic nerve crush and experimental glaucoma. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 53 (7), 3847-3857 (2012).
  50. Cone-Kimball, E., et al. Scleral structural alterations associated with chronic experimental intraocular pressure elevation in mice. Mol. Vis. 19, 2023-2039 (2013).
  51. Samsel, P. A., Kisiswa, L., Erichsen, J. T., Cross, S. D., Morgan, J. E. A novel method for the induction of experimental glaucoma using magnetic microspheres. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 52 (3), 1671-1675 (2011).
  52. WoldeMussie, E., Ruiz, G., Wijono, M., Wheeler, L. A. Neuroprotection of retinal ganglion cells by brimonidine in rats with laser-induced chronic ocular hypertension. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 42 (12), 2849-2855 (2001).
  53. Garcia-Valenzuela, E., Shareef, S., Walsh, J., Sharma, S. C. Programmed cell death of retinal ganglion cells during experimental glaucoma. Exp. Eye Res. 61 (1), 33-44 (1995).
  54. Aihara, M., Lindsey, J. D., Weinreb, R. N. Experimental mouse ocular hypertension: establishment of the model. Investig. Ophthalmol. Vis. Sci. 44 (10), 4314-4320 (2003).
  55. Ji, J., et al. Effects of elevated intraocular pressure on mouse retinal ganglion cells. Vision Res. 45 (2), 169-179 (2005).
  56. Flammer, J., et al. The eye and the heart. Eur. Heart J. 34 (17), 1270-1278 (2013).
  57. Gugleta, K., et al. Association between risk factors and glaucomatous damage in untreated primary open-angle glaucoma. J. Glaucoma. 22 (6), 501-505 (2013).
  58. Mozaffarieh, M., Flammer, J. New insights in the pathogenesis and treatment of normal tension glaucoma. Curr. Opin. Pharmacol. 13 (1), 43-49 (2013).
check_url/53831?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Gossman, C. A., Linn, D. M., Linn, C. Glaucoma-inducing Procedure in an In Vivo Rat Model and Whole-mount Retina Preparation. J. Vis. Exp. (109), e53831, doi:10.3791/53831 (2016).

View Video