Summary

The Power of Enkelhet: Sea Urchin embryon som<em> In vivo</em> Utvecklings modeller för att studera komplexa cell till cellsignalering Network Interactions

Published: February 16, 2017
doi:

Summary

Denna video artikeln beskriver en enkel in vivo metod som kan användas för att systematiskt och effektivt karaktärisera komponenter i komplexa signaleringsvägar och regulatoriska nätverk i många ryggradslösa embryon.

Abstract

Remarkably few cell-to-cell signal transduction pathways are necessary during embryonic development to generate the large variety of cell types and tissues in the adult body form. Yet, each year more components of individual signaling pathways are discovered, and studies indicate that depending on the context there is significant cross-talk among most of these pathways. This complexity makes studying cell-to-cell signaling in any in vivo developmental model system a difficult task. In addition, efficient functional analyses are required to characterize molecules associated with signaling pathways identified from the large data sets generated by next generation differential screens. Here, we illustrate a straightforward method to efficiently identify components of signal transduction pathways governing cell fate and axis specification in sea urchin embryos. The genomic and morphological simplicity of embryos similar to those of the sea urchin make them powerful in vivo developmental models for understanding complex signaling interactions. The methodology described here can be used as a template for identifying novel signal transduction molecules in individual pathways as well as the interactions among the molecules in the various pathways in many other organisms.

Introduction

Genreglerande nät (GRNs) och signaltransduktionsvägar fastställa den rumsliga och tidsmässiga uttryck av gener under embryonal utveckling som används för att bygga det vuxna djuret kropp plan. Cell till cell signaltransduktionsvägar är viktiga komponenter i dessa regulatoriska nätverk, vilket ger det sätt på vilket celler kommunicerar. Dessa cellulära interaktioner etablera och förbättra uttrycket av regulatoriska och differentierings gener i och mellan de olika områdena under embryogenes 1, 2. Interaktioner mellan utsöndrade extracellulära modulatorer (ligander, antagonister), receptorer och co-receptorer kontrollera verksamheten i signaltransduktionsvägar. Ett sortiment av intracellulära molekyler omvandlar dessa ingångar leder till förändrad genexpression, division, och / eller formen av en cell. Medan många av de viktiga molekyler som används vid de extracellulära och intracellulära nivåer i de stora vägar ärkänd, är det en ofullständig kunskap beror till stor del på komplexiteten i enskilda signaleringsvägar. Dessutom har olika signalvägar samverkar ofta med varandra, antingen positivt eller negativt på den extracellulära, intracellulära och transkriptions nivåer 3, 4, 5, 6. Viktigt är de centrala delarna av signaltransduktionsvägar högkonserverade i alla flercelliga arter, och anmärkningsvärt, de flesta av de stora signalvägar utför ofta likartade utvecklingsfunktioner i många arter när man jämför organismer från närbesläktade provinsar i synnerhet 7, 8, 9, 10, 11.

Studien av signalering under utveckling är en svår uppgift i en organism, och därfinns flera stora utmaningar för att studera signalvägar i de flesta deuterostomer modeller (ryggradsdjur, ryggradslösa chordates, svalgsträngsdjur och tagghudingar): 1) I ryggradsdjur finns det ett stort antal möjliga ligand och receptor / co-modulator interaktioner, intracellulära överföringsmolekyler, samt potentiella interaktioner mellan olika signalvägar på grund av komplexiteten av genomet 12, 13, 14; 2) Den komplexa morfologi och morfogenetiska rörelser hos ryggradsdjur ofta göra det svårare att tolka funktionella interaktioner i och bland signaltransduktionsvägar; 3) Analyser i de flesta icke-Echinoderm ryggradslös deuterostomer modellarter begränsas av korta fönster gravidity med undantag för vissa manteldjursarter 15, 16.

Desjöborre embryot har få av de ovannämnda begränsningarna och erbjuder många unika egenskaper för att utföra en detaljerad analys av signaltransduktionsvägar in vivo. Dessa innefattar följande: 1) Den relativa enkelhet sjöborre genomet minskar signifikant antalet möjliga ligand, receptor / co-receptor och intracellulära transduktionen molekyl interaktioner 17; 2) De GRNs styr specifikation och mönstring av grodden lager och stora embryonala axlar är väl etablerade i sjöborre embryon, medhjälp i förståelsen av regelverket ramen för cell / område som tar emot signalerna 18, 19; 3) Många signaltransduktionsvägar kan studeras mellan tidiga klyvnings och gastrula steg när embryona består av ett enda lager epitel vars morfologi är lättare att analysera; 4) Molekylerna involverard i signalvägar i sjöborrar lätt manipuleras; 5) Många sjöborrar är gravid i 10 till 11 månader om året (t.ex. Strongylocentrotus purpuratus och lytechinus variegatus).

Här presenterar vi en metod för att systematiskt och effektivt karaktärisera komponenter av signalvägar som anger och mönster områden i sjöborre embryon för att illustrera de fördelar som flera ryggradslösa modellsystem erbjuder i studiet av komplexa molekylära mekanismer.

Protocol

1. hög genomströmning morfolino Design Strategy Identifiera en gen (er) av intresse (t.ex. kandidatgen tillvägagångssätt, cis-regulatoriska analys RNAseq och / eller proteomik differential skärmar). Använd iskt, transcriptomic och genuttryck data tillgängliga på ofta uppdaterade webbplatser (t.ex. SpBase http://www.echinobase.org 20 och S. purpuratus Genome Sök http: ///urchin.nidcr.nih.gov/blast/index .html) för att fastställa att Spati…

Representative Results

I sjöborre embryot har vi visat att 3 olika Wnt signalering grenar (Wnt / β-catenin, Wnt / JNK, och Wnt / PKC) 4, 25 samverkar för att bilda ett Wnt signaleringsnätet som styr anterior-posterior (AP) mönstring. En av de viktigaste konsekvenserna av dessa signaleringshändelser är att den ursprungliga brett uttryckt främre neuroectoderm (ANE) GRN blir begränsad till ett litet område runt den främre stolpen i början av g…

Discussion

Den metod som presenteras här är ett exempel som illustrerar kraften i att använda embryon med mindre iska och morfologiska komplexitet än ryggradsdjur att förstå signalering överföringsvägar och GRNs styr grundläggande mekanismer utvecklings .. Många labb använder liknande analyser under tidigt sjöborre utveckling dissekera signalvägar som är involverade i andra cell öde specifikation händelser (t.ex. Notch, Hedgehog, TGF β, och FGF signalering) 27, <sup cla…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We would like to thank Dr. Robert Angerer for his careful reading and editing of the manuscript. NIH R15HD088272-01 as well as the Office of Research and Development, and Department of Biological Sciences at Mississippi State University provided support for this project to RCR.

Materials

Translational-blocking morpholino and/or splice-blocking morpholino Gene Tools LLC Customized More information at www.gene-tools.com
Glycerol Invitrogen 15514-011
FITC (dextran fluorescein isothiocyanate) Invitrogen, Life Technologies D1821 Make 25mg/mL stock solution
Paraformaldehyde 16% solution EM Grade Electron Microscopy Sciences 15710
MOPS Sigma Aldrich M1254-250G
Tween-20 Sigma Aldrich 23336-0010
Formamide Sigma Aldrich 47671-1L-F
Yeast tRNA Invitrogen 15401-029
Normal Goat Serum Sigma Aldrich G9023-10mL
Alkaline Phosphatase-conjugated anti-digoxigenin antibody Roche 11 093 274 910
Tetramisole hydrochloride (levamisole) Sigma Aldrich L9756-5G
Tris Base UltraPure Research Products Internationall Corp 56-40-6
Sodium Chloride Fisher Scientific BP358-10
Magnesium chloride Sigma Aldrich 7786-30-3
BCIP (5-Bromo-4-Chloro-3-indolyl-phosphate Roche 11 383 221 001
4 Nitro blue tetrazolium chloride (NBT) Roche 11 383 213 001
Dimethyl Formamide Sigma Aldrich D4551-500mL
Potassium Chloride Sigma Aldrich P9541-5KG
Sodium Bicarbonate Sigma Aldrich S5761-500G
Magnesium Sulfate Sigma Aldrich M7506-2KG
Calcium Chloride Sigma Aldrich C1016-500G

References

  1. Erwin, D. H., Davidson, E. H. The evolution of hierarchical gene regulatory networks. Nature reviews. Genetics. 10, 141-148 (2009).
  2. Peter, I. S., Davidson, E. H. Evolution of gene regulatory networks controlling body plan development. Cell. 144, 970-985 (2011).
  3. Borggrefe, T., et al. The Notch intracellular domain integrates signals from Wnt, Hedgehog, TGFbeta/BMP and hypoxia pathways. Biochimica et biophysica acta. 1863, 303-313 (2016).
  4. Range, R. C., Angerer, R. C., Angerer, L. M. Integration of canonical and noncanonical Wnt signaling pathways patterns the neuroectoderm along the anterior-posterior axis of sea urchin embryos. PLoS Biol. 11, e1001467 (2013).
  5. Cleary, M. A., van Osch, G. J., Brama, P. A., Hellingman, C. A., Narcisi, R. FGF, TGFbeta and Wnt crosstalk: embryonic to in vitro cartilage development from mesenchymal stem cells. Journal of tissue engineering and regenerative medicine. 9, 332-342 (2015).
  6. Lapraz, F., et al. RTK and TGF-beta signaling pathways genes in the sea urchin genome. Dev Biol. 300, 132-152 (2006).
  7. Pires-daSilva, A., Sommer, R. J. The evolution of signalling pathways in animal development. Nature reviews. Genetics. 4, 39-49 (2003).
  8. Sethi, A. J., Wikramanayake, R. M., Angerer, R. C., Range, R. C., Angerer, L. M. Sequential signaling crosstalk regulates endomesoderm segregation in sea urchin embryos. Science. 335, 590-593 (2012).
  9. Range, R. Specification and positioning of the anterior neuroectoderm in deuterostome embryos. Genesis. 52, 222-234 (2014).
  10. Petersen, C. P., Reddien, P. W. Wnt signaling and the polarity of the primary body axis. Cell. 139, 1056-1068 (2009).
  11. Lapraz, F., Haillot, E., Lepage, T. A deuterostome origin of the Spemann organiser suggested by Nodal and ADMPs functions in Echinoderms. Nature communications. 6, 8434 (2015).
  12. Kikuchi, A., Yamamoto, H., Sato, A. Selective activation mechanisms of Wnt signaling pathways. Trends in cell biology. 19, 119-129 (2009).
  13. Hogan, B. L. Bone morphogenetic proteins: multifunctional regulators of vertebrate development. Genes Dev. 10, 1580-1594 (1996).
  14. Houart, C., et al. Establishment of the telencephalon during gastrulation by local antagonism of Wnt signaling. Neuron. 35, 255-265 (2002).
  15. Bertrand, S., Escriva, H. Evolutionary crossroads in developmental biology: amphioxus. Development. 138, 4819-4830 (2011).
  16. Rottinger, E., Lowe, C. J. Evolutionary crossroads in developmental biology: hemichordates. Development. 139, 2463-2475 (2012).
  17. Genome Sequencing Sea Urchin, C., et al. The genome of the sea urchin Strongylocentrotus purpuratus. Science. 314, 941-952 (2006).
  18. Ben-Tabou de-Leon, S., Su, Y. H., Lin, K. T., Li, E., Davidson, E. H. Gene regulatory control in the sea urchin aboral ectoderm: spatial initiation, signaling inputs, and cell fate lockdown. Dev Biol. 374, 245-254 (2013).
  19. Saudemont, A., et al. Ancestral regulatory circuits governing ectoderm patterning downstream of Nodal and BMP2/4 revealed by gene regulatory network analysis in an echinoderm. PLoS Genet. 6, e1001259 (2010).
  20. Cameron, R. A., Samanta, M., Yuan, A., He, D., Davidson, E. SpBase: the sea urchin genome database and web site. Nucleic Acids Res. 37, D750-D754 (2009).
  21. Stepicheva, N. A., Song, J. L. High throughput microinjections of sea urchin zygotes. Journal of visualized experiments : JoVE. , e50841 (2014).
  22. Cheers, M. S., Ettensohn, C. A. Rapid microinjection of fertilized eggs. Methods in cell biology. 74, 287-310 (2004).
  23. Arenas-Mena, C., Cameron, A. R., Davidson, E. H. Spatial expression of Hox cluster genes in the ontogeny of a sea urchin. Development. , 4631-4643 (2000).
  24. Sethi, A. J., Angerer, R. C., Angerer, L. M. Multicolor labeling in developmental gene regulatory network analysis. Methods in molecular biology. , 249-262 (2014).
  25. Wikramanayake, A. H., Huang, L., Klein, W. H. beta-Catenin is essential for patterning the maternally specified animal-vegetal axis in the sea urchin embryo. Proc Natl Acad Sci U S A. 95, 9343 (1998).
  26. Yaguchi, S., Yaguchi, J., Angerer, R. C., Angerer, L. M. A Wnt-FoxQ2-nodal pathway links primary and secondary axis specification in sea urchin embryos. Dev Cell. 14, 97-107 (2008).
  27. Molina, M. D., de Croze, N., Haillot, E., Lepage, T. Nodal: master and commander of the dorsal-ventral and left-right axes in the sea urchin embryo. Curr Opin Genet Dev. 23, 445-453 (2013).
  28. Range, R. C., Glenn, T. D., Miranda, E., McClay, D. R. LvNumb works synergistically with Notch signaling to specify non-skeletal mesoderm cells in the sea urchin embryo. Development. 135, 2445-2454 (2008).
  29. Range, R., et al. Cis-regulatory analysis of nodal and maternal control of dorsal-ventral axis formation by Univin, a TGF-beta related to Vg1. Development. 134, 3649-3664 (2007).
  30. Warner, J. F., Miranda, E. L., McClay, D. R. Contribution of hedgehog signaling to the establishment of left-right asymmetry in the sea urchin. Dev Biol. 411, 314-324 (2016).
  31. Rottinger, E., et al. FGF signals guide migration of mesenchymal cells, control skeletal morphogenesis [corrected] and regulate gastrulation during sea urchin development. Development. 135, 353-365 (2008).
  32. Warner, J. F., McCarthy, A. M., Morris, R. L., McClay, D. R. Hedgehog signaling requires motile cilia in the sea urchin. Mol Biol Evol. 31, 18-22 (2014).
  33. Technau, U., Steele, R. E. Evolutionary crossroads in developmental biology. Cnidaria. Development. 138, 1447-1458 (2011).
  34. Yaguchi, J., Takeda, N., Inaba, K., Yaguchi, S. Cooperative Wnt-Nodal Signals Regulate the Patterning of Anterior Neuroectoderm. PLoS Genet. 12, e1006001 (2016).
  35. Duboc, V., Rottinger, E., Besnardeau, L., Lepage, T. Nodal and BMP2/4 signaling organizes the oral-aboral axis of the sea urchin embryo. Dev Cell. 6, 397-410 (2004).
  36. Bradham, C. A., et al. Chordin is required for neural but not axial development in sea urchin embryos. Dev Biol. 328, 221-233 (2009).
  37. Su, Y. H. Gene regulatory networks for ectoderm specification in sea urchin embryos. Biochimica et biophysica acta. 1789, 261-267 (2009).
  38. Lin, C. Y., Su, Y. H. Genome editing in sea urchin embryos by using a CRISPR/Cas9 system. Dev Biol. 409, 420-428 (2016).
check_url/55113?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Range, R. C., Martinez-Bartolomé, M., Burr, S. D. The Power of Simplicity: Sea Urchin Embryos as in Vivo Developmental Models for Studying Complex Cell-to-cell Signaling Network Interactions. J. Vis. Exp. (120), e55113, doi:10.3791/55113 (2017).

View Video