Summary

Murine Short Axis Ventricular Heart Skiver til Electrophysiological Studies

Published: June 04, 2017
doi:

Summary

Her beskriver vi forberedelsen af ​​levedygtige ventrikulære skiver fra voksne mus og deres anvendelse til skarpe elektrode-actionpotentialer. Disse multicellulære præparater tilvejebringer en bevaret in vivo- lignende vævsstruktur, hvilket gør dem til en værdifuld model for elektrofysiologiske og farmakologiske undersøgelser in vitro .

Abstract

Murine-kardiomyocytter er blevet anvendt i vid udstrækning til in vitro- undersøgelser af hjertefysiologi og nye terapeutiske strategier. Imidlertid er multicellulære præparater af dissocierede cardiomyocytter ikke repræsentative for den komplekse in vivo struktur af cardiomyocytter, ikke-myocytter og ekstracellulær matrix, som påvirker både mekaniske og elektrofysiologiske egenskaber i hjertet. Her beskriver vi en teknik til at forberede levedygtige ventrikulære skiver af voksne mushjerter med en bevaret in vivo- lignende vævsstruktur og demonstrere deres egnethed til elektrofysiologiske optagelser. Efter udskæring af hjertet separeres ventrikler fra atrierne, perfusioneres med Ca2 + -fri opløsning indeholdende 2,3-butandionmonoxim og indlejret i en 4% lavmeltig agaroseblok. Blokken er anbragt på en mikrotome med et vibrerende blad, og vævsskiver med en tykkelse på 150-400 μm er forberedt og holder vibrationen friBladets klinge ved 60-70 Hz og flytter bladet fremad så langsomt som muligt. Tykkelsen af ​​skiverne afhænger af den videre anvendelse. Skiver opbevares i iskold Tyrode's opløsning med 0,9 mM Ca 2+ og 2,3-butandionmonoxim (BDM) i 30 minutter. Derefter overføres skiver til 37 ° C DMEM i 30 minutter for at vaske ud BDM. Skiver kan anvendes til elektrofysiologiske undersøgelser med skarpe elektroder eller mikroelektroder, til kraftmålinger til analyse af kontraktil funktion eller for at undersøge interaktionen mellem transplanterede stamcellerafledte cardiomyocytter og værtsvæv. Til skarpe elektrodeoptagelser placeres en skive i en 3 cm cellekulturskål på varmepladen af ​​et inverteret mikroskop. Skiven stimuleres med en unipolær elektrode, og intracellulære aktionspotentialer af cardiomyocytter inden for skiven registreres med en skarp glaselektrode.

Introduction

Tynde vævsskiver er blevet brugt ofte i grundforskningen, da Yamamot og Mcllwain i 1966 viste, at elektrisk aktivitet af hjerneskiver bevares in vitro 1 . Siden da er elektrofysiologiske og farmakologiske undersøgelser blevet udført på skiver fra hjerne 2 , lever 3 , lunge 4 og myokardvæv 5 , 6 , 7 . Første patch-clamp-optagelser i ventrikulære skiver fra neonatale rottehjerter blev beskrevet i 1990 8 , men denne teknik faldt i glemsel i nogen tid. Mere end et årti senere etablerede vores gruppe en ny metode til at forberede murine embryonale 9 , neonatal 10 og voksne 11 hjerte skiver. Disse levedygtige vævsskiver kan anvendes til akutte forsøg (voksen skiveS kan dyrkes i flere timer) eller kortsigtede kulturforsøg (embryonale og neonatale skiver kan dyrkes i nogle dage). Skiver viser in vivo som elektrofysiologiske karakteristika og en homogen excitationsudbredelse som vurderet ved skarpt elektrode-actionpotentiale og mikroelektrode-optagelser 11 . På grund af deres "todimensionelle" morfologi tillader de direkte adgang til optagelektroder til alle områder i ventriklen, hvilket gør dem til et interessant redskab til elektrofysiologiske undersøgelser og rejser nye forsøgsmuligheder i forhold til Langendorff-perfuserede hjerter. Lægemiddelrespons af skiverne til ionkanalblokkere som verapamil (L-type Ca 2+ -kanalblokker), lidokain (Na + -kanalblokker), 4-aminopyridin (ikke-spændingsafhængig K + -kanalblokker) og linopirdin (KCNQ K + -kanalblokker) 9 , 11 </suP> svarede til kendte effekter på dissocierede kardiomyocytter. Isometriske kraftmålinger afslørede et positivt kraftfrekvensforhold og anbefalede stærkt intakt kontraktil funktion 10 . Disse resultater viste, at murine ventrikulære skiver er egnede som en in vitro vævsmodel til fysiologiske og farmakologiske undersøgelser. Desuden har ventrikulære skiver af modtagers hjerter i kombination med skarpe elektrodeoptagelser vist sig at være et meget nyttigt redskab til karakterisering af elektrisk og mekanisk integration samt modning af transplanterede føtal 12 , 13 , 14 og stamceller afledte 15 cardiomyocytter.

Sammenfattende er ventrikulære skiver en værdifuld og veletableret multicellular vævsmodel og bør betragtes som komplementære til dissocierede cardiomyocytter og Langendorff-perfuserede hjerterI kardiovaskulær forskning med den største fordel ved at tilvejebringe en in vivo- lignende vævsstruktur (i modsætning til dissocierede celler) samt direkte adgang til måle teknologier som skarpe elektrodeoptagelser til alle områder i hjertet (i modsætning til hele hjertepræparater).

Protocol

Dyrehåndtering skal være i overensstemmelse med retningslinjerne fra det lokale dyrevelfærdsudvalg og til Europa-Parlamentets direktiv 2010/63 / EU. 1. Forbered løsninger Forbered Tyrode's opløsning uden Ca 2+ (sammensætning i mM): NaCl 136, KCl 5.4, NaH2P03 0,33, MgCl2 1, glucose 10, HEPES 5, 2,3-butandionmonoxim (BDM) 30. Juster pH til 7,4 Med NaOH ved 4 ° C. Klargør Tyrode's opløsning med Ca2 + (sammensætning i mM): NaCl 136, KC…

Representative Results

Myokardieinfarkt fører til et næsten uopretteligt tab af kardiomyocytter. Celleudskiftningsterapi ved anvendelse af stamcellerafledte cardiomyocytter til eksogen hjerteregenerering er en lovende terapeutisk tilgang. Elektrisk integration og modning af de transplanterede celler er afgørende for sikkerhed og effektivitet af celleudskiftningsterapi. For at vurdere integration og modning, transplanterede vi kardiomyocytter afle…

Discussion

Ventrikulære skiver muliggør elektrofysiologiske, farmakologiske og mekaniske undersøgelser med en bevaret in vivo- lignende vævsstruktur og direkte adgang til målteknologien til alle områder i hjertet. Fysiologiske virkningspotentiale egenskaber er blevet påvist i embryonale, neonatale og voksne skiver 9 , 10 , 11 . Skiveens vitalitet, bortset fra overfladelagene, der er direkte beskadiget af skæreproceduren, …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi anerkender den støtte, der ydes af workshoppen og dyreanlægget hos instituttet for neurofysiologi. Dette arbejde blev støttet af Walter und Marga Boll-Stiftung, Köln Fortune og Deutsche Stiftung für Herzforschung.

Materials

Leica VT 1000s Leica Microsystems, Wetzlar, Germany Microtome with vibrating blade.
Stainless Steel Blades Campden Instruments, Loughborough, England 7550-1-SS
Pasteur pipettes  Sigma-Aldrich, St. Louise, USA Z627992 
Fine brush, e.g. size 6 (4/32") VWR, International, Radnor, USA 149-2125
Preparation table self made
Molt for embedding ventricles in agarose self made
1 ml Syringe Becton, Dickinson;  Franklin Lakes, USA 300013
27Gx3/4“ Needles Braun, Melsungen, Germany 4657705
20G 11/2“ Needles 4657519
Small scissor WPI, Sarasota, USA 501263
Tweezers #5, 0.1 x 0.06 mm tip WPI, Sarasota, USA 500342
Oxygen gas (medical grade O2) Linde, Munich, Germany
Carbogen gas (95 % O2, 5 % CO2)  Linde, Munich, Germany
NaCL Sigma-Aldrich, St. Louise, USA 7647-14-5
KCL Sigma-Aldrich, St. Louise, USA 746436
CaCl2 Sigma-Aldrich, St. Louise, USA 746495
KH2PO4 Sigma-Aldrich, St. Louise, USA NIST200B 
HEPES Sigma-Aldrich, St. Louise, USA 51558
NaHCO3 Sigma-Aldrich, St. Louise, USA S5761 
D(+)-Glucose Sigma-Aldrich, St. Louise, USA G8270 
MgSO4 Sigma-Aldrich, St. Louise, USA M7506 
NaOH Sigma-Aldrich, St. Louise, USA S8045 
Cyanoacrylate glue  Henkel, Düsseldorf, Germany
Low-melt Agarose  Roth, Karlsruhe, Germany 6351.2
Heparin-sodium-25000 I.E./5mL Ratiopharm, Ulm, Germany
Dulbecco's Modified Eagle Medium  (DMEM), high glucose, GlutaMAX ThermoScientific, Waltham, USA 10566016
SEC-10LX Amplifier npi electronic GmbH, Tamm, Germany SEC-10LX
EPC 9 HEKA Elektronik GmbH, Lambrecht, Germany
Zeiss Axiovert 200 Zeiss, Oberkochen, Germany
 Low magnification Micromanipulator Narashige, Tokyo, Japan Nm-3
High magnification, three-axis micromanipulator Narashige, Tokyo, Japan MHW-3
Peristaltic perfusion pump Multi Channel Systems, Reutlingen, Germany PPS2
2-channel temperature controller Multi Channel Systems, Reutlingen, Germany TCO02
Square pulse stimulator Natus Europe GmbH, Planegg, Germany Grass SD9
Glass capillaries WPI, Sarasota, USA 1B150F-1

References

  1. Yamamoto, C., McIlwain, H. Electrical activities in thin sections from the mammalian brain maintained in chemically-defined media in vitro. J Neurochem. 13, 1333-1343 (1966).
  2. Colbert, C. M. Preparation of cortical brain slices for electrophysiological recording. Methods Mol Biol. 337, 117-125 (2006).
  3. Ad Graaf, I., Groothuis, G. M., Olinga, P. Precision-cut tissue slices as a tool to predict metabolism of novel drugs. Expert Opin Drug Metab Toxicol. 3, 879-898 (2007).
  4. Kim, Y. H., et al. Cardiopulmonary toxicity of peat wildfire particulate matter and the predictive utility of precision cut lung slices. Part Fibre Toxicol. 11, 29 (2014).
  5. Nembo, E. N., et al. In vitro chronotropic effects of Erythrina senegalensis DC (Fabaceae) aqueous extract on mouse heart slice and pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes. J Ethnopharmacol. 165, 163-172 (2015).
  6. Wang, K., et al. Cardiac tissue slices: preparation, handling, and successful optical mapping. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 308, H1112-H1125 (2015).
  7. Bussek, A., et al. Tissue slices from adult mammalian hearts as a model for pharmacological drug testing. Cell Physiol Biochem. 24, 527-536 (2009).
  8. Burnashev, N. A., Edwards, F. A., Verkhratsky, A. N. Patch-clamp recordings on rat cardiac muscle slices. Pflugers Arch. 417, 123-125 (1990).
  9. Pillekamp, F., et al. Establishment and characterization of a mouse embryonic heart slice preparation. Cell Physiol Biochem. 16, 127-132 (2005).
  10. Pillekamp, F., et al. Neonatal murine heart slices. A robust model to study ventricular isometric contractions. Cell Physiol Biochem. 20, 837-846 (2007).
  11. Halbach, M., et al. Ventricular slices of adult mouse hearts–a new multicellular in vitro model for electrophysiological studies. Cell Physiol Biochem. 18, 1-8 (2006).
  12. Halbach, M., et al. Electrophysiological maturation and integration of murine fetal cardiomyocytes after transplantation. Circ. Res. 101, 484-492 (2007).
  13. Halbach, M., et al. Time-course of the electrophysiological maturation and integration of transplanted cardiomyocytes. J. Mol. Cell Cardiol. 53, 401-408 (2012).
  14. Halbach, M., et al. Cell persistence and electrical integration of transplanted fetal cardiomyocytes from different developmental stages. Int. J. Cardiol. 171, e122-e124 (2014).
  15. Halbach, M., et al. Electrophysiological integration and action potential properties of transplanted cardiomyocytes derived from induced pluripotent stem cells. Cardiovasc. Res. 100, 432-440 (2013).
  16. Verrecchia, F., Herve, J. C. Reversible blockade of gap junctional communication by 2,3-butanedione monoxime in rat cardiac myocytes. Am J Physiol. 272, C875-C885 (1997).
  17. Watanabe, Y., et al. Inhibitory effect of 2,3-butanedione monoxime (BDM) on Na(+)/Ca(2+) exchange current in guinea-pig cardiac ventricular myocytes. Br J Pharmacol. 132, 1317-1325 (2001).
  18. Fleischmann, B. K., et al. Differential subunit composition of the G protein-activated inward-rectifier potassium channel during cardiac development. J Clin Invest. 114, 994-1001 (2004).
  19. Peinkofer, G., et al. From Early Embryonic to Adult Stage: Comparative Study of Action Potentials of Native and Pluripotent Stem Cell-Derived Cardiomyocytes. Stem Cells Dev. 25, 1397-1406 (2016).
check_url/55725?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Peinkofer, G., Hescheler, J., Halbach, M. Murine Short Axis Ventricular Heart Slices for Electrophysiological Studies. J. Vis. Exp. (124), e55725, doi:10.3791/55725 (2017).

View Video