Summary

Murine Short Axis Ventricular Heart Slices for elektrofysiologiske studier

Published: June 04, 2017
doi:

Summary

Her beskriver vi utarbeidelsen av levedyktige ventrikulære skiver fra voksne mus og deres bruk for skarpe elektrodevirkningspotensialopptak. Disse multicellulære preparatene gir en bevart in vivo- lignende vevstruktur, noe som gjør dem til en verdifull modell for elektrofysiologiske og farmakologiske studier in vitro .

Abstract

Murine kardiomyocytter har blitt omfattende brukt for in vitro studier av hjertefysiologi og nye terapeutiske strategier. Imidlertid er multikellulære preparater av dissocierte kardiomyocytter ikke representative for den komplekse in vivo strukturen av kardiomyocytter, ikke-myocytter og ekstracellulær matrise, som påvirker både mekaniske og elektrofysiologiske egenskaper av hjertet. Her beskriver vi en teknikk for å forberede levedyktige ventrikulære skiver av voksne mushjerter med en bevart in vivo- lignende vevstruktur og demonstrere deres egnethet til elektrofysiologiske opptak. Etter ekspisjon av hjertet, separeres ventrikler fra atriene, perfuseres med Ca2 + -fri oppløsning inneholdende 2,3-butandionmonoksy og innebygd i en 4% lavmeltig agaroseblokk. Blokken er plassert på en mikrotome med et vibrerende blad, og vevskiver med en tykkelse på 150-400 μm er forberedt og holder vibrasjonen friBladets vinkel ved 60-70 Hz og flytter bladet fremover så sakte som mulig. Tykkelsen på skivene avhenger av den videre applikasjonen. Skiver lagres i iskald Tyrode-løsning med 0,9 mM Ca 2+ og 2,3-butandionmonoksim (BDM) i 30 minutter. Etterpå overføres skiver til 37 ° C DMEM i 30 minutter for å vaske ut BDM. Skiver kan brukes til elektrofysiologiske studier med skarpe elektroder eller mikroelektroder, for kraftmålinger for å analysere kontraktil funksjon eller for å undersøke samspillet mellom transplanterte stamceller-avledede kardiomyocytter og vertsvev. For skarpe elektrodeopptak, plasseres et stykke i en 3 cm cellekulturrett på oppvarmingsplaten av et invertert mikroskop. Skiven stimuleres med en unipolar elektrode, og intracellulære virkningspotensialer av kardiomyocytter i skiven registreres med en skarp glasselektrode.

Introduction

Tynne vevstykker har blitt brukt ofte i grunnvitenskap siden Yamamot og Mcllwain viste i 1966 at elektrisk aktivitet av hjerneskiver beholdes in vitro 1 . Siden da har elektrofysiologiske og farmakologiske studier blitt utført på skiver fra hjerne 2 , lever 3 , lunge 4 og myokardialt vev 5 , 6 , 7 . Første patch-clamp opptak i ventrikulære skiver fra neonatal rotte hjerter ble beskrevet i 1990 8 , men denne teknikken falt i glemsel i noen tid. Mer enn ett tiår senere etablerte vår gruppe en ny metode for å forberede murine embryonale 9 , neonatal 10 og voksne 11 hjerte skiver. Disse levedyktige vevskiver kan brukes til akutte eksperimenter (voksen skiveS kan dyrkes i flere timer) eller kortsiktige kulturforsøk (embryonale og neonatale skiver kan dyrkes i noen dager). Skiver viser in vivo som elektrofysiologiske karakteristika og et homogent eksitasjonsspred som vurderes ved skarpt elektrodevirkningspotensiale og mikroelektrodopptak 11 . På grunn av deres "todimensjonale" morfologi tillater de direkte innspillingselektroder til alle områder i ventrikkelen, noe som gjør dem til et interessant verktøy for elektrofysiologiske undersøkelser og gir nye eksperimentelle muligheter i forhold til Langendorff-perfuserte hele hjerter. Legemiddelrespons av skivene til ionkanalblokkere som verapamil (L-type Ca 2+ -kanalblokker), lidokain (Na + -kanalblokkering), 4-aminopyridin (ikke-spenningsavhengig K + -kanalblokker) og linopirdin (KCNQ K + -kanalblokker) 9 , 11 </suP> korresponderte med kjente effekter på dissocierte kardiomyocytter. Isometriske kraftmålinger avslørte et positivt kraftfrekvensforhold og sterkt foreslått intakt kontraktil funksjon 10 . Disse funnene viste at murine ventrikulære skiver er egnet som en in vitro vevsmodell for fysiologiske og farmakologiske studier. Videre har ventrikulære skiver av mottakerhjerter i kombinasjon med skarpe elektrodeopptak vist seg å være et svært nyttig verktøy for å karakterisere elektrisk og mekanisk integrasjon, i tillegg til modning av transplanterte føtal 12 , 13 , 14 og stamceller-avledede 15 kardiomyocytter.

Sammendrag er ventrikulære skiver en verdifull og veletablert multicellular vevsmodell, og bør betraktes som komplementære til dissocierte kardiomyocytter og Langendorff-perfuserte hjerterI kardiovaskulær forskning, med den største fordelen ved å gi en in vivo- lignende vevsstruktur (i motsetning til dissocierte celler) samt direkte tilgang til målteknologier som skarpe elektrodeopptak til alle hjerteområder (i motsetning til hele hjertepreparater).

Protocol

Dyrehåndtering skal være i samsvar med retningslinjene fra det lokale dyrevelferdsutvalget og til Europa-Parlamentets direktiv 2010/63 / EU. 1. Forbered løsninger Klargjør Tyrodes løsning uten Ca 2+ (sammensetning i mM): NaCl 136, KCl 5.4, NaH 2 PO 4 0,33, MgCl 2 1, glukose 10, HEPES 5, 2,3-butandionmonoksim (BDM) 30. Juster pH til 7,4 Med NaOH ved 4 ° C. Klargjør Tyrodes løsning med Ca 2+ (sammensetning i mM…

Representative Results

Myokardinfarkt fører til et nesten uopprettelig tap av kardiomyocytter. Celleutskiftningsterapi ved hjelp av stamceller-avledede kardiomyocytter for eksogen hjerteregenerering er en lovende terapeutisk tilnærming. Elektrisk integrasjon og modning av de transplanterte cellene er avgjørende for sikkerhet og effektivitet av celleutskiftningsterapi. For å vurdere integrasjon og modning, transplanterte vi kardiomyocytter avlede…

Discussion

Ventrikulære skiver muliggjør elektrofysiologiske, farmakologiske og mekaniske studier med en bevaret in vivo- lignende vevstruktur og direkte tilgang til målteknologi til alle hjerteområder. Fysiologiske virkningspotensialegenskaper har blitt påvist i embryonale, neonatale og voksne skiver 9 , 10 , 11 . Skivens vitalitet, unntatt overflatelagene som er direkte skadet av skåret, har blitt bekreftet av vitalitetsf…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi anerkjenner støtten fra verkstedene og dyreanlegget ved instituttet for neurofysiologi. Dette arbeidet ble støttet av Walter und Marga Boll-Stiftung, Köln Fortune og Deutsche Stiftung für Herzforschung.

Materials

Leica VT 1000s Leica Microsystems, Wetzlar, Germany Microtome with vibrating blade.
Stainless Steel Blades Campden Instruments, Loughborough, England 7550-1-SS
Pasteur pipettes  Sigma-Aldrich, St. Louise, USA Z627992 
Fine brush, e.g. size 6 (4/32") VWR, International, Radnor, USA 149-2125
Preparation table self made
Molt for embedding ventricles in agarose self made
1 ml Syringe Becton, Dickinson;  Franklin Lakes, USA 300013
27Gx3/4“ Needles Braun, Melsungen, Germany 4657705
20G 11/2“ Needles 4657519
Small scissor WPI, Sarasota, USA 501263
Tweezers #5, 0.1 x 0.06 mm tip WPI, Sarasota, USA 500342
Oxygen gas (medical grade O2) Linde, Munich, Germany
Carbogen gas (95 % O2, 5 % CO2)  Linde, Munich, Germany
NaCL Sigma-Aldrich, St. Louise, USA 7647-14-5
KCL Sigma-Aldrich, St. Louise, USA 746436
CaCl2 Sigma-Aldrich, St. Louise, USA 746495
KH2PO4 Sigma-Aldrich, St. Louise, USA NIST200B 
HEPES Sigma-Aldrich, St. Louise, USA 51558
NaHCO3 Sigma-Aldrich, St. Louise, USA S5761 
D(+)-Glucose Sigma-Aldrich, St. Louise, USA G8270 
MgSO4 Sigma-Aldrich, St. Louise, USA M7506 
NaOH Sigma-Aldrich, St. Louise, USA S8045 
Cyanoacrylate glue  Henkel, Düsseldorf, Germany
Low-melt Agarose  Roth, Karlsruhe, Germany 6351.2
Heparin-sodium-25000 I.E./5mL Ratiopharm, Ulm, Germany
Dulbecco's Modified Eagle Medium  (DMEM), high glucose, GlutaMAX ThermoScientific, Waltham, USA 10566016
SEC-10LX Amplifier npi electronic GmbH, Tamm, Germany SEC-10LX
EPC 9 HEKA Elektronik GmbH, Lambrecht, Germany
Zeiss Axiovert 200 Zeiss, Oberkochen, Germany
 Low magnification Micromanipulator Narashige, Tokyo, Japan Nm-3
High magnification, three-axis micromanipulator Narashige, Tokyo, Japan MHW-3
Peristaltic perfusion pump Multi Channel Systems, Reutlingen, Germany PPS2
2-channel temperature controller Multi Channel Systems, Reutlingen, Germany TCO02
Square pulse stimulator Natus Europe GmbH, Planegg, Germany Grass SD9
Glass capillaries WPI, Sarasota, USA 1B150F-1

References

  1. Yamamoto, C., McIlwain, H. Electrical activities in thin sections from the mammalian brain maintained in chemically-defined media in vitro. J Neurochem. 13, 1333-1343 (1966).
  2. Colbert, C. M. Preparation of cortical brain slices for electrophysiological recording. Methods Mol Biol. 337, 117-125 (2006).
  3. Ad Graaf, I., Groothuis, G. M., Olinga, P. Precision-cut tissue slices as a tool to predict metabolism of novel drugs. Expert Opin Drug Metab Toxicol. 3, 879-898 (2007).
  4. Kim, Y. H., et al. Cardiopulmonary toxicity of peat wildfire particulate matter and the predictive utility of precision cut lung slices. Part Fibre Toxicol. 11, 29 (2014).
  5. Nembo, E. N., et al. In vitro chronotropic effects of Erythrina senegalensis DC (Fabaceae) aqueous extract on mouse heart slice and pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes. J Ethnopharmacol. 165, 163-172 (2015).
  6. Wang, K., et al. Cardiac tissue slices: preparation, handling, and successful optical mapping. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 308, H1112-H1125 (2015).
  7. Bussek, A., et al. Tissue slices from adult mammalian hearts as a model for pharmacological drug testing. Cell Physiol Biochem. 24, 527-536 (2009).
  8. Burnashev, N. A., Edwards, F. A., Verkhratsky, A. N. Patch-clamp recordings on rat cardiac muscle slices. Pflugers Arch. 417, 123-125 (1990).
  9. Pillekamp, F., et al. Establishment and characterization of a mouse embryonic heart slice preparation. Cell Physiol Biochem. 16, 127-132 (2005).
  10. Pillekamp, F., et al. Neonatal murine heart slices. A robust model to study ventricular isometric contractions. Cell Physiol Biochem. 20, 837-846 (2007).
  11. Halbach, M., et al. Ventricular slices of adult mouse hearts–a new multicellular in vitro model for electrophysiological studies. Cell Physiol Biochem. 18, 1-8 (2006).
  12. Halbach, M., et al. Electrophysiological maturation and integration of murine fetal cardiomyocytes after transplantation. Circ. Res. 101, 484-492 (2007).
  13. Halbach, M., et al. Time-course of the electrophysiological maturation and integration of transplanted cardiomyocytes. J. Mol. Cell Cardiol. 53, 401-408 (2012).
  14. Halbach, M., et al. Cell persistence and electrical integration of transplanted fetal cardiomyocytes from different developmental stages. Int. J. Cardiol. 171, e122-e124 (2014).
  15. Halbach, M., et al. Electrophysiological integration and action potential properties of transplanted cardiomyocytes derived from induced pluripotent stem cells. Cardiovasc. Res. 100, 432-440 (2013).
  16. Verrecchia, F., Herve, J. C. Reversible blockade of gap junctional communication by 2,3-butanedione monoxime in rat cardiac myocytes. Am J Physiol. 272, C875-C885 (1997).
  17. Watanabe, Y., et al. Inhibitory effect of 2,3-butanedione monoxime (BDM) on Na(+)/Ca(2+) exchange current in guinea-pig cardiac ventricular myocytes. Br J Pharmacol. 132, 1317-1325 (2001).
  18. Fleischmann, B. K., et al. Differential subunit composition of the G protein-activated inward-rectifier potassium channel during cardiac development. J Clin Invest. 114, 994-1001 (2004).
  19. Peinkofer, G., et al. From Early Embryonic to Adult Stage: Comparative Study of Action Potentials of Native and Pluripotent Stem Cell-Derived Cardiomyocytes. Stem Cells Dev. 25, 1397-1406 (2016).
check_url/55725?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Peinkofer, G., Hescheler, J., Halbach, M. Murine Short Axis Ventricular Heart Slices for Electrophysiological Studies. J. Vis. Exp. (124), e55725, doi:10.3791/55725 (2017).

View Video