الحفاظ على بعوض الزاعجة المصرية "البعوض مصابة" ولبخيه
Summary
هي أن يطلق سراحه البعوض بعوض الزاعجة المصرية المصابين ولبخيه إلى السكان الطبيعية لمنع انتقال سيتناقش. يصف لنا أساليب لخلفي عبد اللطيف-مصرية مع التهابات ولبخيه في المختبر للتجارب والإفراج عن الميدان، مع أخذ الاحتياطات اللازمة للتقليل من التكيف مع المختبر واختيار.
Abstract
ويجري استخدام البعوض بعوض الزاعجة المصرية المصابة تجريبيا مع ولبخيه في برامج السيطرة على انتشار سيتناقش مثل حمى الضنك وداء شيكونغونيا وزكى. ولبخيه-يمكن إطلاق البعوض في الحقل أما تقليل أحجام السكان عن طريق ماتينجس غير متوافقة أو تحويل السكان مع البعوض التي صهر لانتقال الفيروس. لهذه الاستراتيجيات أن تنجح، يجب أن يكون البعوض التي تطلق في الميدان من المختبر تنافسية مع البعوض الأصلي. ومع ذلك، يمكن أن يؤدي الحفاظ على البعوض في المختبر في الاستيلاد والانجراف الجينية ومختبر التكيف التي يمكن أن تقلل من لياقتهم البدنية في الميدان، وقد يتيه نتائج التجارب. لاختبار مدى ملاءمة مختلف الإصابات ولبخيه للنشر في الميدان، من الضروري الحفاظ على البعوض في بيئة مختبرية تحت التحكم عبر أجيال متعددة. يمكننا وصف بروتوكول بسيط للحفاظ على البعوض Ae-مصرية في المختبر، ومناسبة لكلا ولبخيه-البعوض المصاب والبرية من نوع. الأساليب تقليل التكيف المختبر وتنفيذ التهجين إلى زيادة أهمية التجارب في ميدان البعوض. بالإضافة إلى ذلك، يتم الاحتفاظ بالمستعمرات تحت الظروف المثلى لتعظيم لياقتهم للإطلاقات فتح الحقل.
Introduction
البعوض بعوض الزاعجة المصرية المسؤولة عن تحيل بعض سيتناقش الأكثر أهمية في العالم، بما في ذلك حمى الضنك، Zika وشيكونغونيا1. وأصبحت هذه الفيروسات تهديدا متزايداً للصحة العالمية بتوزيع واسع النطاق عبد اللطيف. الزاعجة المصرية في المناطق المدارية وتواصل توسيع2،،من34. أنثى الزاعجة المصرية عبد اللطيف. تفضيلي تتغذى على الدم البشري5 وهكذا تميل إلى العيش بالقرب من البشر، وبخاصة في المناطق الحضرية حيث السكان أكثر كثافة. من خلال هذا الارتباط الوثيق مع البشر أنها تكيفت أيضا تولد في الموائل الاصطناعية، بما في ذلك إطارات السيارات والأواني ومزاريب وخزانات المياه6،7. عبد اللطيف-مصرية أيضا سهولة التكيف مع بيئات المختبرات حيث أنها يمكن الحفاظ عليه دون أي متطلبات خاصة بعد يجري جمعها مباشرة من الميدان، وعلى عكس بعض الأنواع الأخرى في جنس بعوض 8، 9،10. سهولة الصيانة شهد لهم درس على نطاق واسع في المختبر في طائفة واسعة من المجالات، وتهدف في نهاية المطاف إلى السيطرة على البعوض الأمراض قد يحيل.
تقليديا، أربوفيرال التحكم تعتمد اعتماداً كبيرا على استخدام المبيدات الحشرية للحد من السكان البعوض. مع ذلك، هناك اهتمام متزايد في النهج حيث البعوض المعدل يتم تربيتها في المختبر وثم أطلق سراحه في السكان الطبيعية. البعوض المفرج عنهم قد معدلة وراثيا11،12،13، بيولوجيا14،15، عن طريق تشعيع16،17،العلاج الكيميائي18، أو بالجمع بين تقنيات19 قمع سكان البعوض أو استبدالها بالبعوض التي المقاوم للحرارة إلى انتقال أربوفيرال20.
ولبخيه هي البكتيريا التي تستخدم حاليا كعامل مكافحة البيولوجية سيتناقش. وأدخلت مؤخرا عدة سلالات ولبخيه في Ae. مصرية تجريبيا باستخدام microinjection الجنينية21،22،،من2324. هذه السلالات تقلل من قدرة سيتناقش نشر وتكرار في البعوضة، تتضاءل انتقال المحتملة23،25،،من2627،28 . ولبخيه العدوى تنتقل من الأم إلى ذرية، إلا أن بعض سلالات حمل العقم عند الذكور المصابين تتزاوج مع الإناث غير مصاب22. ولبخيه-ولذلك يمكن إطلاق الذكور المصابة بكميات كبيرة لقمع السكان البعوض الطبيعية، أظهرت مؤخرا في15،الأنواع الأخرى من بعوضة 29. بيد منذ ولبخيه تمنع أيضا انتقال أربوفيرال في Ae. مصرية، يمكن أيضا إصدار البعوض لاستبدال السكان الأصليين بناقلات الأكثر فقراً. عبد اللطيف-مصرية مصابة تجريبيا ولبخيه تصدر الآن في الميدان في العديد من البلدان باستخدام هذا النهج الأخير14،،من3031.
ولبخيه-استناداً إلى النهج للتحكم أربوفيرال تعتمد على فهم سليم للتفاعلات بين ولبخيهوالبعوض والبيئة. ولبخيه تحدث طبيعيا في طائفة واسعة من الحشرات، والسلالات أدخلت البعوض المتنوعة في تلك الآثار32. كما يتم عرض أنواع العدوى ولبخيه جديدة في Ae. مصرية24، من الضروري أن تميز كل سلالة لآثارها على اللياقة البدنية البعوض والاستنساخ والتدخل أربوفيرال ضمن مجموعة من الشروط. ولذلك مطلوب التجريب الدقيق في المختبر لتقييم إمكانات سلالات ولبخيه لتحقيق النجاح في هذا المجال.
يمكن أن تتطلب فتح الحقل إطلاقات عبد اللطيف-مصرية مع التهابات ولبخيه غالباً ما تربى الآلاف إلى عشرات آلاف البعوض كل منطقة الإفراج عن أن يكون كل أسبوع14،،من3031. ويمكن تحسين نجاح الإصدارات الأولية عن طريق الإفراج عن البعوض حجم كبير إلى أقصى حد ممكن على خصوبتها33 و34،نجاح التزاوج35. كما ينبغي أن يكون البعوض تتكيف مع الظروف أنهم سوف الخبرة في هذا المجال، تربية المختبر الطويلة الأجل ولكن قد يسبب تغييرات في السلوك، وعلم وظائف الأعضاء التي يمكن أن تؤثر في مجال أداء36،37، 38.
يمكننا وصف بروتوكول بسيط لتربية عبد اللطيف-مصرية في المختبر باستخدام المعدات الأساسية. هذا البروتوكول مناسبة لكل نوع البرية و ولبخيه-إصابة البعوض، هذه الأخيرة التي يمكن أن تتطلب اهتماما خاصا ببعض سلالات ولبخيه آثاراً كبيرة على البعوض تاريخ حياة الصفات39، 40-شروط تربية تجنب الاكتظاظ والتنافس على الغذاء لإنتاج البعوض بحجم متسقة، وهي حاسمة بالنسبة لناقلات اختصاص وتجارب اللياقة البدنية، ويضمن أن البعوض يتمتعون بصحة جيدة للإفراج عن الحقل41 . ونحن أيضا اتخاذ الاحتياطات اللازمة للتقليل من التكيف مختبر والاستيلاد بتقليل الضغوط انتقائية والتأكد من أن الجيل القادم هو أخذ عينات من تجمع كبير وعشوائي. ومع ذلك، مختبر البيئات تختلف اختلافاً واضحا من الأوضاع الميدانية، والصيانة على المدى الطويل في ظروف مريحة يمكن أن تقلل من اللياقة البدنية للبعوض عند الإفراج عنهم إلى الحقل37،42،43 . ولذلك نعبر الإناث من خطوط المختبر إلى ميدان جمع الذكور بصورة دورية، الناتج في المستعمرات التي تشبه وراثيا للمقارنات التجريبية والتي يتم تطويعها وفقا ل السكان الحقل الهدف39. الأساليب لا تتطلب أي معدات متخصصة ويمكن زيادتها إلى الخلفي عشرات الآلاف من الأفراد أسبوعيا للإطلاقات الحقل. البروتوكول أيضا أولويات اللياقة بدنية البعوض داخل وعبر الأجيال، واعتبار هام للحشرات المتجهة إلى إنشاء في السكان طبيعية. البروتوكول مناسبة لمعظم المختبرات التي تتطلب الحفاظ على عبد اللطيف-مصرية، خاصة بالنسبة للمقارنات التجريبية الهامة فيها نوعية متسقة للبعوض و relatability إلى الميدان.
Protocol
Representative Results
Discussion
يتبع البروتوكول المعروضة هنا لصيانة ولبخيه-ينبغي أن تكفل المصابة Ae. مصرية أن البعوض صحية نوعية متسقة يتم إنتاجها للتجارب وفتح مجال النشرات. خلافا للبروتوكولات الأخرى التي تعطي الأولوية لإنتاج كميات أسلحة من البعوض (انظر المرجع57)، الأساليب التي تركز على تحقيق الحد ا…
Disclosures
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
ونعترف ييب لين هنغ، كريس باتون وجونسون بيترينا ودويغ كلير لمساهمتها في تطوير أساليب عملنا والحفاظ على مستعمرة والمراجعين المجهول ثلاثة لاقتراحاتهم التي ساعدت على تحسين المخطوطة. ابحاثنا معتمد برنامج المنح والزمالات إلى آه من “الصحة الوطنية”، و “مجلس البحوث الطبية” وترجمة منحة من مؤسسة ويلكوم ترست. PAR الحكومة الأسترالية بحوث التدريب برنامج منحة.
Materials
| Wild type Aedes aegypti | Collected from field locations in Queensland, Australia, see Yeap and others39 for details | ||
| w Mel-infected Aedes aegypti | Provided by Monash University. Refer to Walker and others23 for information on the strain | ||
| w AlbB-infected Aedes aegypti | Provided by Monash University. Refer to Xi and others21 for information on the strain | ||
| w MelPop-infected Aedes aegypti | Provided by Monash University. Refer to McMeniman and others22 for information on the strain | ||
| Instant dried yeast | Lowan | Stimulates egg hatching. Found in general grocery stores. Other brands may be used | |
| 5 L plastic tub | Quadrant | Q110950 | Used for hatching and rearing larvae. Other products may be used |
| Fish Food (Tetramin Tropical Tablets) | Tetra | 16152 | Provided to larvae as a source of food. Web address: https://www.amazon.com/Tetra-16152-TetraMin-Tropical-10-93-Ounce/dp/B00025Z6SE |
| Plastic containers | Used for rearing larvae. Any plastic container above 500 mL should be suitable | ||
| Glass pipette | Used for transferring larvae and pupae between containers. Web address: https://www.aliexpress.com/item/10Pcs-Durable-Long-Glass-Experiment-Medical-Pipette-Dropper-Transfer-Pipette-Lab-Supplies-With-Red-Rubber-Cap/32704471109.html?spm=2114.40010308.4.2.py4Kez | ||
| Clicker counter | RS Pro | 710-5212 | Used to assist in the counting of larvae, pupae and eggs. Web address: http://au.rs-online.com/web/p/products/7105212/?grossPrice=Y |
| Rearing trays | Gratnells | Used for rearing larvae. Web address: http://www.gratnells.com | |
| Nylon mesh | Used to transfer larvae and pupae to containers of fresh water. Other brands may be used. Web address: https://www.spotlightstores.com/fabrics-yarn/specialty-apparel-fabrics/nettings-tulles/nylon-netting/p/BP80046941001-white | ||
| Cages | BugDorm | DP1000 | Houses adult mosquitoes. Alternative products may be used. Web address: http://bugdorm.megaview.com.tw/bugdorm-1-insect-rearing-cage-30x30x30-cm-pack-of-one-p-29.html |
| 35 mL plastic cup | Huhtamaki | AA272225 | Used to provide water or sucrose to adult mosquitoes. Other brands may be used |
| 35 mL plastic cup lid | Huhtamaki | GB030005 | Used to provide sucrose to adult mosquitoes. Other brands may be used |
| Cotton wool | Cutisoft | 71841-13 | Moist cotton wool is provided as a source of water to adults. Other brands may be used |
| White Sugar | Provided as a source of sugar to adult mosquitoes. Found in general grocery stores | ||
| Rope | M Recht Accessories | C323C/W | Used to provide sucrose solution to adults. Other brands may be used. Web address: https://mrecht.com.au/haberdashery/braids-cords-and-tapes/cords/plaited-cord/cotton/ |
| Plastic cup (large) | Used as an oviposition container. Any plastic cup that holds 100 mL of water should be suitable | ||
| Sandpaper | Norton Master Painters | CE015962 | Provided as an oviposition substrate. Alternative products may be used, but we use this brand because it is relatively odorless. Lighter colors are used for contrast with eggs. Web address: https://www.bolt.com.au/115mm-36m-master-painters-bulk-roll-p80-medium-p-9396.html |
| Filter paper | Whatman | 1001-150 | Used as an alternative oviposition substrate. Other brands may be used |
| Latex gloves | SemperGuard | Z560979 | Prevents mosquito bites on hands when blood feeding. Other brands may be used. Web address: http://www.sempermed.com/en/products/detail/semperguardR_latex_puderfrei_innercoated/ |
References
- Mayer, S. V., Tesh, R. B., Vasilakis, N. The emergence of arthropod-borne viral diseases: A global prospective on dengue, chikungunya and zika fevers. Acta Trop. 166, 155-163 (2017).
- Campbell, L. P., et al. Climate change influences on global distributions of dengue and chikungunya virus vectors. Philos Trans R Soc Lond B Biol Sci. 370 (1665), (2015).
- Kraemer, M. U., et al. The global distribution of the arbovirus vectors Aedes aegypti and Ae. albopictus. eLife. 4, (2015).
- Carvalho, B. M., Rangel, E. F., Vale, M. M. Evaluation of the impacts of climate change on disease vectors through ecological niche modelling. Bull Entomol Res. , 1-12 (2016).
- Scott, T. W., et al. Longitudinal studies of Aedes aegypti (Diptera: Culicidae) in Thailand and Puerto Rico: population dynamics. J Med Ent. 37 (1), 77-88 (2000).
- Cheong, W. Preferred Aedes aegypti larval habitats in urban areas. Bull World Health Organ. 36 (4), 586-589 (1967).
- Barker-Hudson, P., Jones, R., Kay, B. H. Categorization of domestic breeding habitats of Aedes aegypti (Diptera: Culicidae) in Northern Queensland, Australia. J Med Ent. 25 (3), 178-182 (1988).
- Watson, T. M., Marshall, K., Kay, B. H. Colonization and laboratory biology of Aedes notoscriptus from Brisbane, Australia. J Am Mosq Control Assoc. 16 (2), 138-142 (2000).
- Williges, E., et al. Laboratory colonization of Aedes japonicus japonicus. J Am Mosq Control Assoc. 24 (4), 591-593 (2008).
- Munstermann, L. E. . The Molecular Biology of Insect Disease Vectors. , 13-20 (1997).
- McDonald, P., Hausermann, W., Lorimer, N. Sterility introduced by release of genetically altered males to a domestic population of Aedes aegypti at the Kenya coast. Am J Trop Med Hyg. 26 (3), 553-561 (1977).
- Rai, K., Grover, K., Suguna, S. Genetic manipulation of Aedes aegypti: incorporation and maintenance of a genetic marker and a chromosomal translocation in natural populations. Bull World Health Organ. 48 (1), 49-56 (1973).
- Harris, A. F., et al. Field performance of engineered male mosquitoes. Nature Biotechnol. 29 (11), 1034-1037 (2011).
- Hoffmann, A. A., et al. Successful establishment of Wolbachia in Aedes populations to suppress dengue transmission. Nature. 476 (7361), 454-457 (2011).
- O’Connor, L., et al. Open release of male mosquitoes infected with a Wolbachia biopesticide: field performance and infection containment. PLoS Negl Trop Dis. 6 (11), e1797 (2012).
- Morlan, H. B. Field tests with sexually sterile males for control of Aedes aegypti. Mosquito news. 22 (3), 295-300 (1962).
- Grover, K. K., et al. Field experiments on the competitiveness of males carrying genetic control systems for Aedes aegypti. Entomol Exp Appl. 20 (1), 8-18 (1976).
- Seawright, J., Kaiser, P., Dame, D. Mating competitiveness of chemosterilized hybrid males of Aedes aegypti (L.) in field tests. Mosq News. 37 (4), 615-619 (1977).
- Zhang, D., Lees, R. S., Xi, Z., Gilles, J. R., Bourtzis, K. Combining the sterile insect technique with Wolbachia-based approaches: II- a safer approach to Aedes albopictus population suppression programmes, designed to minimize the consequences of inadvertent female release. PloS One. 10 (8), e0135194 (2015).
- McGraw, E. A., O’Neill, S. L. Beyond insecticides: new thinking on an ancient problem. Nature Rev Microbiol. 11 (3), 181-193 (2013).
- Xi, Z., Khoo, C. C., Dobson, S. L. Wolbachia establishment and invasion in an Aedes aegypti laboratory population. Science. 310 (5746), 326-328 (2005).
- McMeniman, C. J., et al. Stable introduction of a life-shortening Wolbachia infection into the mosquito Aedes aegypti. Science. 323 (5910), 141-144 (2009).
- Walker, T., et al. The wMel Wolbachia strain blocks dengue and invades caged Aedes aegypti populations. Nature. 476 (7361), 450-453 (2011).
- Joubert, D. A., et al. Establishment of a Wolbachia superinfection in Aedes aegypti mosquitoes as a ppotential approach for future resistance management. PLoS Pathog. 12 (2), e1005434 (2016).
- Ferguson, N. M., et al. Modeling the impact on virus transmission of Wolbachia-mediated blocking of dengue virus infection of Aedes aegypti. Sci Transl Med. 7 (279), 279ra237 (2015).
- Aliota, M. T., Peinado, S. A., Velez, I. D., Osorio, J. E. The wMel strain of Wolbachia Reduces Transmission of Zika virus by Aedes aegypti. Sci Rep. 6, 28792 (2016).
- van den Hurk, A. F., et al. Impact of Wolbachia on infection with chikungunya and yellow fever viruses in the mosquito vector Aedes aegypti. PLoS Negl Trop Dis. 6 (11), e1892 (2012).
- Moreira, L. A., et al. A Wolbachia symbiont in Aedes aegypti limits infection with dengue, Chikungunya, and Plasmodium. Cell. 139 (7), 1268-1278 (2009).
- Mains, J. W., Brelsfoard, C. L., Rose, R. I., Dobson, S. L. Female Adult Aedes albopictus Suppression by Wolbachia-Infected Male Mosquitoes. Sci Rep. 6, 33846 (2016).
- Nguyen, T. H., et al. Field evaluation of the establishment potential of wmelpop Wolbachia in Australia and Vietnam for dengue control. Parasit Vectors. 8, 563 (2015).
- Garcia Gde, A., Dos Santos, L. M., Villela, D. A., Maciel-de-Freitas, R. Using Wolbachia releases to estimate Aedes aegypti (Diptera: Culicidae) population size and survival. PloS One. 11 (8), e0160196 (2016).
- Hoffmann, A. A., Ross, P. A., Rašić, G. Wolbachia strains for disease control: ecological and evolutionary considerations. Evol Appl. 8 (8), 751-768 (2015).
- Briegel, H. Metabolic relationship between female body size, reserves, and fecundity of Aedes aegypti. J Insect Physiol. 36 (3), 165-172 (1990).
- Ponlawat, A., Harrington, L. C. Factors associated with male mating success of the dengue vector mosquito, Aedes aegypti. Am J Trop Med Hyg. 80 (3), 395-400 (2009).
- Segoli, M., Hoffmann, A. A., Lloyd, J., Omodei, G. J., Ritchie, S. A. The effect of virus-blocking Wolbachia on male competitiveness of the dengue vector mosquito, Aedes aegypti. PLoS Negl Trop Dis. 8 (12), e3294 (2014).
- Imam, H., Zarnigar, G., Sofi, A., Seikh, The basic rules and methods of mosquito rearing (Aedes aegypti). Trop Parasitol. 4 (1), 53-55 (2014).
- Spitzen, J., Takken, W. Malaria mosquito rearing-maintaining quality and quantity of laboratory-reared insects. Proc Neth Entomol Soc Meet. 16, 95-100 (2005).
- Lorenz, L., Beaty, B. J., Aitken, T. H. G., Wallis, G. P., Tabachnick, W. J. The effect of colonization upon Aedes aegypti susceptibility to oral infection with Yellow Fever virus. Am J Trop Med Hyg. 33 (4), 690-694 (1984).
- Yeap, H. L., et al. Dynamics of the "popcorn" Wolbachia infection in outbred Aedes aegypti informs prospects for mosquito vector control. Genetics. 187 (2), 583-595 (2011).
- Turley, A. P., Moreira, L. A., O’Neill, S. L., McGraw, E. A. Wolbachia infection reduces blood-feeding success in the dengue fever mosquito, Aedes aegypti. PLoS Negl Trop Dis. 3 (9), e516 (2009).
- Yeap, H. L., Endersby, N. M., Johnson, P. H., Ritchie, S. A., Hoffmann, A. A. Body size and wing shape measurements as quality indicators of Aedes aegypti mosquitoes destined for field release. Am J Trop Med Hyg. 89 (1), 78-92 (2013).
- Leftwich, P. T., Bolton, M., Chapman, T. Evolutionary biology and genetic techniques for insect control. Evol Appl. 9 (16), 212-230 (2016).
- Calkins, C., Parker, A. . Sterile Insect Technique. , 269-296 (2005).
- Tun-Lin, W., Burkot, T., Kay, B. Effects of temperature and larval diet on development rates and survival of the dengue vector Aedes aegypti in north Queensland, Australia. Med Vet Entomol. 14 (1), 31-37 (2000).
- Richardson, K., Hoffmann, A. A., Johnson, P., Ritchie, S., Kearney, M. R. Thermal sensitivity of Aedes aegypti from Australia: empirical data and prediction of effects on distribution. J Med Ent. 48 (4), 914-923 (2011).
- Richardson, K. M., Hoffmann, A. A., Johnson, P., Ritchie, S. R., Kearney, M. R. A replicated comparison of breeding-container suitability for the dengue vector Aedes aegypti in tropical and temperate Australia. Austral Ecol. 38 (2), 219-229 (2013).
- Ross, P. A., et al. Wolbachia infections in Aedes aegypti differ markedly in their response to cyclical heat stress. PLoS Pathog. 13 (1), e1006006 (2017).
- Gjullin, C., Hegarty, C., Bollen, W. The necessity of a low oxygen concentration for the hatching of Aedes mosquito eggs. J Cell Physiol. 17 (2), 193-202 (1941).
- Axford, J. K., Ross, P. A., Yeap, H. L., Callahan, A. G., Hoffmann, A. A. Fitness of wAlbB Wolbachia infection in Aedes aegypti: parameter estimates in an outcrossed background and potential for population invasion. Am J Trop Med Hyg. 94 (3), 507-516 (2016).
- Degner, E. C., Harrington, L. C. Polyandry depends on postmating time interval in the dengue vector Aedes aegypti. Am J Trop Med Hyg. 94 (4), 780-785 (2016).
- Bentley, M. D., Day, J. F. Chemical ecology and behavioral aspects of mosquito oviposition. Ann Rev Entomol. 34 (1), 401-421 (1989).
- Wong, J., Stoddard, S. T., Astete, H., Morrison, A. C., Scott, T. W. Oviposition site selection by the dengue vector Aedes aegypti and its implications for dengue control. PLoS Negl Trop Dis. 5 (4), e1015 (2011).
- Meola, R. The influence of temperature and humidity on embryonic longevity in Aedes aegypti. Ann Entomol Soc Am. 57 (4), 468-472 (1964).
- Faull, K. J., Williams, C. R. Intraspecific variation in desiccation survival time of Aedes aegypti (L.) mosquito eggs of Australian origin. J Vector Ecol. 40 (2), 292-300 (2015).
- McMeniman, C. J., O’Neill, S. L. A virulent Wolbachia infection decreases the viability of the dengue vector Aedes aegypti during periods of embryonic quiescence. PLoS Negl Trop Dis. 4 (7), e748 (2010).
- Ross, P. A., Endersby, N. M., Hoffmann, A. A. Costs of three Wolbachia infections on the survival of Aedes aegypti larvae under starvation conditions. PLoS Negl Trop Dis. 10 (1), e0004320 (2016).
- Carvalho, D. O., et al. Mass production of genetically modified Aedes aegypti for field releases in Brazil. J Vis Exp. (83), e3579 (2014).
- Benedict, M. The first releases of transgenic mosquitoes: an argument for the sterile insect technique. Trends Parasitol. 19 (8), 349-355 (2003).
- Lee, S. F., White, V. L., Weeks, A. R., Hoffmann, A. A., Endersby, N. M. High-throughput PCR assays to monitor Wolbachia infection in the dengue mosquito (Aedes aegypti) and Drosophila simulans. Appl Environ Microbiol. 78 (13), 4740-4743 (2012).
- Corbin, C., Heyworth, E. R., Ferrari, J., Hurst, G. D. Heritable symbionts in a world of varying temperature. Heredity. 118 (1), 10-20 (2017).
- Day, J. F., Edman, J. D. Mosquito engorgement on normally defensive hosts depends on host activity patterns. J Med Ent. 21 (6), 732-740 (1984).
- Gonzales, K. K., Hansen, I. A. Artificial diets for mosquitoes. Int J Environ Res Public Health. 13 (12), (2016).
- McMeniman, C. J., Hughes, G. L., O’Neill, S. L. A Wolbachia symbiont in Aedes aegypti disrupts mosquito egg development to a greater extent when mosquitoes feed on nonhuman versus human blood. J Med Ent. 48 (1), 76-84 (2011).
- Caragata, E. P., Rances, E., O’Neill, S. L., McGraw, E. A. Competition for amino acids between Wolbachia and the mosquito host, Aedes aegypti. Microb Ecol. 67 (1), 205-218 (2014).
- Suh, E., Fu, Y., Mercer, D. R., Dobson, S. L. Interaction of Wolbachia and bloodmeal type in artificially infected Aedes albopictus (Diptera: Culicidae). J Med Entomol. , (2016).
- Thangamani, S., Huang, J., Hart, C. E., Guzman, H., Tesh, R. B. Vertical transmission of Zika virus in Aedes aegypti mosquitoes. Am J Trop Med Hyg. 95 (5), 1169-1173 (2016).
