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Article de méthode

Évaluation des propriétés anticoagulantes et anti-inflammatoires de cellules endothéliales à l’aide de la Culture cellulaire 3D et sang total Non-anticoagulant

8.2K vues

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DOI :

10.3791/56227

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5 septembre 2017

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Dans cet article

Résumé

Nous présentons un modèle in vitro qui permet l’étude et l’analyse de la coagulation dans le sang entier, de non anticoagulé. Anticoagulation dans le système dépend de l’effet anticoagulant naturel des cellules endothéliales saines et activation des cellules endothéliales se traduira par la coagulation.

Résumé

In vivo, les cellules endothéliales sont primordiales pour l’anticoagulation naturelle du sang circulant. Par conséquent, activation des cellules endothéliales entraîne la coagulation du sang. Ce phénomène est observé dans de nombreuses situations cliniques, comme la transplantation d’organes en présence d’anticorps d’anti-donneurs préformés, y compris la xénotransplantation, ainsi que dans la lésion d’ischémie/reperfusion. Afin de réduire l’expérimentation animale selon les 3R normes (remplacement, réduction et raffinement), in vitro modèles pour étudier l’effet des cellules endothéliales activation sur la coagulation du sang serait hautement souhaitable. Cependant, des systèmes de culture de cellules endothéliales à plat communs fournissent un rapport surface-volume 1-5 cm2 de l’endothélium par millilitre de sang, ce qui n’est pas suffisant pour traitement anticoagulant naturel, endothéliale induite. Mise en culture des cellules endothéliales avec des microporteurs perles peut accroître le ratio de surface-volume de 40 à 160 cm2/ml. Cet augmentation du rapport est suffisant pour assurer l’anticoagulation « naturelle » de sang, afin que l’utilisation des anticoagulants peut être évitée. Ici un in vitro avec des microporteurs système est décrit pour étudier les effets de la modification génétique de cellules endothéliales porcines sur la coagulation du sang entier, non anticoagulé. Dans l’essai décrit, principales cellules endothéliales aortiques porcines, soit type sauvage (WT) ou transgéniques pour humain CD46 thrombomoduline et ont été cultivées avec des microporteurs perles puis exposés au sang humain non-anticoagulé fraîchement tiré. Ce modèle permet la mesure et la quantification des cytokines comme activation marqueurs de complément et de la coagulation dans le plasma sanguin. En outre, l’imagerie de cellules endothéliales activées et des dépôts d’immunoglobulines, complément - et la coagulation des protéines sur les perles d’endothelialized ont été réalisées par microscopie confocale. Ce test permet également de tester des médicaments qui sont censés pour prévenir la coagulation et, par conséquent, activation des cellules endothéliales. Sur le dessus de son potentiel de réduire le nombre d’animaux utilisés pour de telles enquêtes, l’essai décrit est facile à réaliser et toujours reproductible.

Introduction

L’endothélium vasculaire est constitué d’une monocouche de cellules endothéliales (EC) qui bordent la lumière des vaisseaux sanguins. Dans un état physiologique, ce repos sont chargés de l’entretien d’un environnement anti-inflammatoire et un anticoagulant. 1 c’est médiée par l’expression d’anticoagulant et protéines anti-inflammatoires sur la surface de l’EC. Par exemple, activation de EC causée par l’ischémie/reperfusion blessures ou rejet vasculaire de (xeno-) transplantés entraîne une modification de la surface endothéliale d’un anticoagulant et anti-inflammatoires état pro-inflammatoire et Pro-coagulant organes État. 1

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Protocole

allemand Landrace porcs (type sauvage élevé dans une ferme locale et transgénique élevés à l’Institut de race d’animaux moléculaire et biotechnologie, Université Ludwig-Maximilian, Munich, Allemagne), pesant entre 30 kg à 40 kg, ont été utilisés dans Cette étude. Tous les animaux étaient logés dans des conditions normales, avec eau et nourriture ad lib. Toutes les expériences animales ont été effectuées conformément à la Loi sur les animaux au Royaume-Uni (procédures scientifiques) et le Guide de NIH pour les soins et Use of Laboratory Animals, ainsi que la Loi de la protection Suisse des animaux. Toutes les études sur l’animal respecte les directives d’arri....

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Résultats

Après 7-10 jours de culture placé dans le cône d’hélice (Figure 1), les cellules étaient confluentes, couvrant toute la surface des perles avec des microporteurs (Figure 2). Vérification de l’État confluency est une étape importante car une monocouche de non-confluent d’EC sur les microbilles entraînera une diminution marquée du temps de coagulation, compte tenu de l’avec des microporteurs surface des perles est fortement Pro-coa.......

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Discussion

Le modèle présenté ici est adapté pour la coagulation des études permettant l’analyse des différents aspects de la coagulation et de son interaction avec EC. 8 dans la recherche de la xénotransplantation, c’est un système utile pour tester les propriétés anticoagulantes de différents ECs porcins génétiquement modifiés après incubation avec le sang humain 9.

Les étapes plus critiques du protocole sont celles assurant la couverture cellulaire compl.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Remerciements

Cette étude a été financée par la Swiss National Science Foundation (FNS, Grant No. 320030_156193). Les auteurs remercient Dr Benoît Werlen pour fournir les perles avec des microporteurs de Biosilon. Nous remercions également le Prof. Hans Peter Kohler et Prof. André Haeberli d’aide à la mise en place du modèle de perle avec des microporteurs.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
PAECIsolé de l’aorte de porc dans notre laboratoire
Microcarrier beads (Biosilon)Thermo Fisher Scientific160-250
Collagen I, BovinGibcoA10644-01
DMEMGibco21885-025
Medium 199SigmaM7528
RPMIGibco32404-014
Tubes neutresSarstedt02.1726.001
Tubes en polypropylèneSimportT406-2A
Flacons d’agitationTecnomara
Agitateur biologiqueBrouwerMCS-104S
Rat anti CD31R& D SystemsMAB33871Dilution 1:100
Chèvre anti-rat IgG-Cy3Jackson Immuno Research112-166-003Dilution 1:500
Chèvre anti VE-cadhérineSanta Cruzsc-6458Dilution 1:100
Lapin anti vWFDAKOA0082Dilution 1:100
Dk anti Gt IgG &ndash ; Sondes moléculaires Alexa 488A11055Dilution 1:500
Chèvre anti Lapin - FITCSouthern Biotech4050-02Dilution 1:500
DAPISigma32670-25MG-FDilution 1 µ ; g/mL
0,05 % Trypsine-EDTAGibco25300-054
FBSGibco10270-106Concentration : 10 % dans un milieu de culture cellulaire
AdaptateurSarstedt14.1205
Microscope confocalCarl ZeissLSM 710
Logiciel d’analyse d’imagesImage JDisponible gratuitement sur : https://imagej.net
Supplément de milieu de croissance cellulaire endothélialeMixPromoCellC-392162 mL dans 500 mL de DMEM
Pénicilline Streptomycine Gibco15140-122Concentration : 1 % dans le milieu de culture cellulaire
L-GlutamineGibco25030-024Concentration : 1 % dans le milieu de culture cellulaire
Heparinun natricumDrossa Pharm AGConcentration du stock : 5000 U.I./ mL
Lames de chambreBioswisstec AG30108
CaCl2 x 2H2OMerck2382.0500
MgCl2 x6 H2OMerck1.5833.1000
Tween 20Axon Lab AG9005-64-5
Albumine sérique bovine (BSA)SigmaA7030
Médium de montage GlycergelDakoC0563

Références

  1. Rajendran, P., et al. The vascular endothelium and human diseases. Int. J. Biol. Sci. 9, 1057-1069 (2013).
  2. Rajwal, S., Richards, M., O'Meara, M. The use of recalcified citrated whole blood - a pragmatic approach for thromboelastography in children.

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Réimpressions et autorisations

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