Summary

Forberedelse af Keratin hydrolysat fra kylling fjer og dens anvendelse i kosmetik

Published: November 27, 2017
doi:

Summary

Målet med protokollen er at forberede keratin hydrolysat fra kylling fjer ved alkaline-enzymatisk hydrolyse og teste, om tilføjelse af keratin hydrolysat i en kosmetik salve base forbedrer hudens barriere funktion (hvilket øger hydrering og faldende transepidermal vandtab). Tests er udført på mænd og kvinde frivillige.

Abstract

Keratin hydrolysater (KHs) er etableret standardkomponenter i hår kosmetik. Forstå de fugtgivende effekt på KH er fordelagtige for hudpleje kosmetik. Målene for protokollen er: (1) at behandle kylling fjer i KH ved alkaline-enzymatisk hydrolyse og rense det ved dialyse, og (2) hen til overhøre selv tilføje KH i en salve base (OB) øger hydrering af huden og forbedrer hudens barriere funktion ved faldende transepidermal vandtab (TEWL). Under alkaline-enzymatisk hydrolyse inkuberes fjer først ved en højere temperatur i et alkalisk miljø og derefter under milde betingelser, hydrolyseres med proteolytiske enzym. Løsning af KH er dialysebehandling, vakuum tørres og formales til et fint pulver. Kosmetiske formuleringer bestående af olie i vand emulsion (O/W) der indeholder 2, er 4 og 6 vægtprocent af KH (baseret på vægten af OB) forberedt. Test de fugtgivende egenskaber for KH er udført på 10 mænd og 10 kvinder med gang intervaller af 1, 2, 3, 4, 24 og 48 h. testet formuleringer er spredt på affedtede volar underarmen websteder. Huden hydrering af stratum corneum (SC) vurderes ved at måle kapacitans af huden, som er en af de mest verdensomspændende anvendte og enkle metoder. TEWL er baseret på at måle mængden af vandet transporteres pr. et afgrænset område og periode fra huden. Begge metoder er fuldstændig ikke-invasiv. KH gør for en fremragende okklusiv; afhængigt af tilsætning af KH i OB bringer det en 30% reduktion i TEWL efter ansøgning. KH også fungerer som en fugtighedsbevarende middel, da det binder vand fra de lavere lag af epidermis til SC; ved optimal KH tilføjelsen i OB opstår op til 19% stigning i hydrering i mænd og 22% stigning i kvinder.

Introduction

Slagterier, fødevareindustrien og garvning industri producere årligt enorme mængder af solid keratin biprodukter-uld, fjer, børster, klove, kløer, horn og lignende. Ifølge seneste statistiske data er den samlede levende vægt af høns, kalkuner, ænder og andre slagtede fjerkræ i USA 62,5 milliarder pund pr. år1; i EU er det ca. 28,7 milliarder pund om året. I betragtning af at fjer gøre op til 8,5% af den samlede fjerkræ vægt, producerer USA alene årligt ca. 5,3 milliarder pounds af affald fjer2.

Keratin er et protein, udstiller høj kemisk resistens, fordi det er stærkt krydsbundet med disulfidbroer, at gengive dens forarbejdning vanskeligt. At opnå opløselige produkter kræver holde cross-links og eventuelt gennemføre hydrolyse af peptidbindinger3. Spaltning af disulfidbroer kan fortsætte gennem en reaktion af thiol anion efter følgende mønster4,5:

Set + – SbSc-↔ – Sb + – SenSc

Med en meget høj pH-niveau vises hydrolyse af disulfidbroer også, efter mønster6

-SS + OH → – S + – SOH

Under milde forhold (pH ca. 8) sted selv sulfitolysis finder efter følgende mønster:

-SS – + HSO3 → – SH + -SSO3

Den mest økonomiske måde nedværdigende keratin er mikrobiel nedbrydning, som er karakteriseret ved mild reaktionsbetingelser under forarbejdning og høj opdeling effektivitet (ca. 90%)7,8. Keratinases er produceret af visse bakterier isoleret fra jord og keratin affald9. Mikrobielle keratinases hydrolyserer stive og stærkt krydsbundet keratin strukturer10 og den resulterende KH forberedt er rig på opløselige proteiner, uden tab i essentielle aminosyrer opdaget i det11.

For at indarbejde en protein i kosmetiske præparater (f.eks., emulsioner, cremer og geler), sikre kravet om at at sådanne proteiner er opløseligt i vand, de givne systemer er gennemsigtige, og at re sammenlægning af peptider er undgået grund hydrofobe interaktioner. En fælles praksis er derfor at anvende hydrolysater af proteiner, som hydrolyseret kollagen, elastin og keratin. Når du tilføjer hydrolysater i kosmetiske emulsioner, taget skridt til at sikre, at hydrolysat først opløses i vand. I nogle tilfælde er det ønskeligt, at protein (eller hydrolysat) er opløseligt i alkohol eller andre organiske opløsningsmidler12.

KH er normalt kendetegnet i shampoo, balsam, cremer og nærende serum for hår, samt mascaras, neglelak og eye make-up agenter. KH effekter erklæret normalt omfatter danner en beskyttende film, udglatning hår eller negle struktur, øget plasticitet og udseende af de behandlede formation, regulering af sammenhængen i produkter, og at fremme dannelsen af skum13 , 14. det fremgår også, at KH nedsætter overfladespænding, dermed tilskud i kosmetik kan lette reduktion i mængden af emulgator tilføjet for at stabilisere cremer. KH begrænse virkningerne af irritation udløst af rengøringsmidler (overfladeaktive stoffer) til hud, øjne og hår, hvorved nogen potentielle bivirkninger af rengøringsmidler på væv (f.eks, dehydrering af huden, hårdhed og nedsat barriere funktion af hud). Den høje buffer kapacitet af hydrolysater også udnyttes til at stabilisere pH af kosmetik; peptider af kortere længde har en større Bufferkapacitet virkning15,16. Selvom KHs har blive etableret som standard komponenter i hår og negle kosmetik samt ved at blive udnyttet i produkter til hudpleje, undersøgelser af fugtgivende virkningerne af KH ikke vises i moderne litteratur.

Alkaline-enzymatisk teknologi er blevet udviklet til forarbejdning keratin biprodukter til KH og aktive test er i processen om virkningerne af en række kosmetiske additiver17,18,19,20 , 21 , 22. fordelen, at to-trins alkaline-enzymatisk hydrolyse ved hjælp af mikrobielle proteaser for kylling fjer opnår høj effektivitet mild reaktion betingelser og kvaliteten af KH er meget høj i modsætning til hydrolyse ansat i stærke syrer eller baser. I den første fase inkuberes fjer ved en højere temperatur i et alkalisk miljø, som delvist forstyrrer keratin struktur og svulmer fjer; efter justering af pH, er fjer hydrolyseret med et proteolytisk enzym milde betingelser i anden fase. Den dialyzed KH besidder et højt indhold af proteiner.

Anvendelsen af metoden beskrevet her forarbejdning fjerkræfjer til en KH gennem alkaline-enzymatisk hydrolyse og teste effekten af fugtgivende egenskaber af KH anvendes til O/W kosmetiske emulsion. De fugtgivende egenskaber er undersøgt af medvirkende ikke-invasive metoder i vivo. De hyppigste metoder til måling hud hydrering og barriere funktion af SC omfatter måling af elektriske egenskaber af huden (konduktans eller kapacitans). Forskellige metoder for at undersøge SC hydrering omfatter nær infrarød multispektrale at forestille sig metode (NIM), Kernemagnetisk resonans-spektroskopi, optisk kohærens tomografi eller forbigående termotransfer23. Barriere funktion af SC korrelerer til TEWL SC og det er målt ved ventileret kammer metode, unventilated kammer metode og åben kammer metode24.

Egenskaber af model formuleringer bestemmes ved hjælp af Multi sonde adapter MPA 5 med tre typer af sonder. Den først én, corneometer CM 825 foranstaltninger hud hydrering ved at vurdere ændringerne i den elektriske kapacitet på hudens overflade; den måling kondensator viser ændringer i kapacitans af hudens overflade i corneometric enheder. Corneometer giver kun en relativ vurdering af huden hydrering25. For TEWL, der den anden sonde, tewameter TM 300, bruges til måling tæthed farveforløb af vand fordampning (i en åben kammer instrument baseret på Fick’s diffusion lov) fra huden indirekte af de to par af følere (temperatur og relativ fugtighed) angiver mængden vand der transporteres pr. et afgrænset område og periode (g/m2h). Denne metode kan registrere selv de mindste forstyrrelser af hud barriere funktion26. Hud pH-værdien er en indikator for barriere og anti-mikrobielle funktion af SC27. Surhedsgraden i huden kappen blev målt af en (tredje) hud PH 905 probe tilsluttet MPA 5 station. Denne specialdesignet sonden består af en flad top glas elektrode til fuld hudkontakt, tilsluttet et voltmeter. Systemet måler potentielle ændringer som følge af aktiviteten af hydrogen kationer omkring den meget tynde lag af halvfaste former målt på toppen af sonden. Ændringer i spænding vises som pH28.

Vi præsenterer forsøg opdelt i tre dele: (1) forberedelse af KH fra kylling fjer af to-trins alkaline-enzymatisk hydrolyse og dets rensning af dialyse (at fjerne salte og lav-Molekylær fraktioner), (2) udarbejdelse af kosmetiske formuleringer, der indeholder 2, 4 og 6% KH, og (3) test egenskaberne for KH ved at måle hud hydrering, TEWL, og hud pH. Test blev udført på 10 kvinder med en gennemsnitlig alder af 27,2 år og 10 mænd med en gennemsnitlig alder af 26,2 år. Metoden til udvælgelse af frivillige og selve testen blev gennemført i overensstemmelse med internationale etiske principper for bio-medicinske forskning udnytte forsøgspersoner29; alle personer, der gav deres informeret samtykke forud for optagelse i undersøgelsen. Før testning påbegyndt, frivillige blev bedt om at udfylde et spørgeskema om deres sundhedsstatus. De frivillige er forpligtet til at undgå at anvende et kosmetisk produkt til forsøgssteder og omkringliggende områder i løbet af 24 timer forud for og under testperioden; Derudover var de kun tilladt korte aften vasker med rindende vand.

Protocol

Volontører rekrutteret blandt ansatte og studerende på vores Universitet. Metoden til udvælgelse blev gennemført i henhold til “International etiske retningslinjer for biomedicinsk forskning af forsøgspersoner. Rådet for internationale organisationer af Medical Sciences, Geneve (2002).” KH er en fælles kosmetisk ingrediens bruges i hårpleje produkter (shampoo, Crimper, etc.) og dermed der ikke kræves godkendelse fra de institutionelle review board. 1. proces kylling fjer i KH<…

Representative Results

KH tilberedt efter procedure præsenteres her (Se figur 2) er gul i farven, let opløseligt i vand med højt proteinindhold (uorganiske legemer repræsenterer < 2,0%); pH-værdien på 1,0% opløsning af KH er 5.3, og opfylder kravene til kosmetik-grade hydrolysater. KH udbytte fra råvarer til 50 g er ca. 30%. Molekylvægt distribution af KH var bestemt af SDS-PAGE og er vist i figur 3. <p class="jove_content" fo:keep-togethe…

Discussion

Fordelen ved alkaline-enzymatisk hydrolyse er, at det kan blive ændret efter fremtidige anvendelser af KH. For eksempel, i hårpleje kosmetik applikationer, hvor en let brunlig farve af et produkt ikke er en hindring, kan en højere temperatur i hydrolyse anvendes fører til et højere udbytte af KH. Derudover den længere behandlingstid i begge faser af proceduren for teknologiske væsentligt påvirker den overordnede proces effektivitet – udbytte af KH stiger til 85%.

Resultater for hydre…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denne artikel blev skrevet med støtte til projektet IGA/FT/2017/007 af Tomas Bata University i Zlin.

Materials

Material or chemicals
LIPEX 100T Novozymes LJP30020 Lipex – enzyme produced by submerged fermentation of a genetically-modified microorganism, activity 100 KLU/g
Savinase Ultra 16L Novozymes PXN40001 Savinase – enzyme produced by submerged fermentation of a genetically-modified microorganism, activity 16 KNPU-S/g
Potassium hydroxide, KOH Sigma-Aldrich 302510289 Potassium hydroxide, KOH, 97,0 %, Mr 56,11
Phosphoric acid solution, H3PO4 Sigma-Aldrich W290017 Phosphoric acid solution, H3PO4, 85 wt. % concentration in water, Mr 98,00
Sodium chloride physiological solution Sigma-Aldrich 52455 Tablets of BioUltra NaCl physiological solution; 1 tablet in 1000 mL of water yields 0.9 % NaCl
Sodium hydroxide, NaOH Penta s.r.o. 40216 Sodium hydroxide, NaOH, 97,0 %, Mr 40,00
AmiFarm (Cremor base-A) Fagron 608425 Hydrophilic oil in water (O/W) cream base; the composition: aqua, paraffin, paraffin liquid, cetearyl alkohol, Laureth 4, sodium hydroxide, carbomer, methylparaben, propylparaben.
Name Company Catalog Number Comments
Equipment
IKA EUROSTAR POWER control-visc stirrers IKA-labortechnik Z404020 Digital laboratory stirrer, for tasks up to the high viscosity range, 230V, 1/cs
IKA Propeller stirrer, 3-bladed IKA-labortechnik R 1381 Propeller stirrer, 3-bladed, stirrer Ø: 45 mm, shaft Ø: 8 mm, shaft length: 350 mm
Dialysis tubing closures Sigma-Aldrich Z371017-10EA Dialysis tubing closures, red, size 110 mm
Dialysis tubing cellulose membrane Sigma-Aldrich D9402-100FT Dialysis tubing cellulose membrane, average flat width 76 mm (3.0 in.)
DOMO Pot with stailess, LCD DOMO Elektronic DO42325PC Preserving boiler stainless steel, 2000 W, 27-L container (diameter 37 cm, height 30 cm), temperature control 30-100 ° C, operation LCD display
Hettich zentrifugen Universal 32 Gemini bv 2770 GS1R Mid bench centrifuge, speed 18000 rpm
LT 3 shaking device Fischer Scientific 6470.0002 Orbital shaking device
KERN 440-47N Kern 440-47N Laboratory balance
KERN 770 Kern 770 -N Laboratory analytical balance
VENTICELL 222 – Komfort BMT, MMM Group C 131749 Drying oven, temperature control 30-100 ° C, air circulation control
Vacucell 55 – EVO BMT, MMM Group B 050328 Vacuum drying oven, temperature control 30-100 ° C
PULVERISETTE 19 Fritsch 19.1030.00 Universal cutting mill, rotor with V-cutting edges and fixed knives
Multi Probe Adapter System MPA 5 Courage & Kazaka Electronic 10225237 MPA 5 Station – equipment for measurement hydratation, TEWL and pH
Skin pH-meter PH 905 probe Courage & Kazaka Electronic Probe to specifically measure the pH on the skin surface or the scalp
Corneometer CM 825 probe Courage & Kazaka Electronic Probe to determine the hydration level of the skin surface (Stratum corneum).
Tewameter TM 300 Courage & Kazaka Electronic Probe for the assessment of the transepidermal water loss (TEWL)
Heidolph RZR 2020 Heidolph 13-225-007-03-1 Overhead stirrer, mechanical speed setting and stepless transmission; speed range 40-2000 rpm
Heidolph mechanical stirrer BR 10 Heidolph Z336688-1EA Blade impeller crossed stirrer
Fagor FS 12 Fagor BTT-138 Laboratory refrigerator with freezer space
WTW bench pH/mV meter WTW Z313165 High-performance bench pH and pH/conductivity meters for routine and high precision laboratory measurements in research or quality control laboratories
Container RPC Superfos 13-L plastic bucket, diameter 26 cm, height 26 cm
Name Company Catalog Number Comments
Software
Microsoft Office 2010 Microsoft
C+K software Courage and Khazaka Electronic GmbH MPA 5 station operating software

References

  1. United States Department of Agriculture – National Agricultural Statistics Services. . Poultry Slaughter, 2016 Summary. , (2016).
  2. McGovern, V. Recycling poultry feathers: more bang for the cluck. Environ.Health Perspect. 108 (8), A336-A339 (2000).
  3. Gousterova, A., et al. Degradation of keratin and collagen containing wastes by newly isolated thermoactinomycetes or by alkaline hydrolysis. Lett. Appl. Microbiol. 40 (5), 335-340 (2005).
  4. Yamauchi, K., Yamauchi, A., Kusunoki, T., Khoda, A., Konishi, Y. Preparation of stable aqueous solution of keratins, and physiochemical and biodegradational properties of films. Biomed. Mater. Res. 31 (4), 439-444 (1996).
  5. Schrooyen, P. M. M., Dijkstra, P. J., Oberthur, R. C., Bantjes, A., Feijen, J. Partially carboxymethylated feather keratins. 2. Thermal and mechanical properties of films. J. Agric. Food Chem. 49 (1), 221-230 (2001).
  6. Mark, H. F., Gaylord, N. G., Bikales, N. M. . Encyclopedia of Polymer Science Technology: vol. 8: Keratin to Modacrylic Fibers. , (1968).
  7. Bertsch, A., Cello, N. A biotechnological process for treatment and recycling poultry feathers as a feed ingredient. Bioresour. Technol. 96 (15), 1703-1708 (2005).
  8. Grazziotin, A., Pimentel, F. A., de Jong, E. V., Brandelli, A. Nutritional improvement of feather protein by treatment with microbial keratinase. Animal Feed Sci. Technol. 126 (1-2), 135-144 (2006).
  9. Brandelli, A. Bacterial keratinases: useful enzymes for bioprocessing agroindustrial wastes and beyond. Food Bioprocess Technol. 1 (2), 105-116 (2008).
  10. Gusta, R., Ramnani, P. Microbial keratinases and their prospective applications: an overview. Appl.Microbiol. Biotechnol. 70 (1), 21-33 (2006).
  11. Vasileva-Tonkova, E., Gousterova, A., Neshev, G. Ecologically safe method for improved feather wastes biodegradation. International Biodeterior & Biodegradation. 63 (8), 1008-1012 (2009).
  12. Lodén, M., Barel, A. O., Paye, M., Maibach, H. I. Hydrating Substance. Handbook of Cosmetic Science and Technology. , 107-119 (2009).
  13. Teglia, A., Secchi, G., Goddard, E. D., Gruber, J. V. Chapter 9: Proteins in Cosmetics. Principles of Polymer Science and Technology in Cosmetics and Personal Care. , (1999).
  14. Magdassi, S. Delivery systems in cosmetics. Colloids and Surfaces A: Physicochem. Engin. Aspects. 123-124, 671-679 (1997).
  15. Dahms, G., Jung, A. Method for producing a protein hydrolysate. U.S. Patent. , (2014).
  16. Pons, R., Carrera, I., Erra, P., Kunieda, G., Solans, C. Novel preparation methods for highly concentrated water-in-oil emulsions. Colloids and Surfaces A: Physicochem. Engin. Aspects. 91 (3), 259-266 (1994).
  17. Mokrejs, P., Hrncirik, J., Janacova, D., Svoboda, P. Processing of keratin waste of meat industry. Asian J. Chem. 24 (4), 1489-1494 (2012).
  18. Mokrejs, P., Svoboda, P., Hrncirik, J. Processing poultry feathers into keratin hydrolysate through alkaline-enzymatic hydrolysis. Waste Manage. Res. 29 (3), 260-267 (2011).
  19. Mokrejs, P., Krejci, O., Svoboda, P. Producing keratin hydrolysates from sheep wool. Orient. J. Chem. 27 (4), 1303-1309 (2011).
  20. Mokrejs, P., Krejci, O., Svoboda, P., Vasek, V. Modeling technological conditions for breakdown of waste sheep wool. Rasayan J. Chem. 4 (4), 728-735 (2011).
  21. Polaskova, J., Pavlackova, J., Vltavska, P., Mokrejs, P., Janis, R. Moisturizing effect of topical cosmetic products applied to dry skin. J. Cosmet. Sci. 64 (5), 329-340 (2013).
  22. Polaskova, J., Pavlackova, J., Egner, P. Effect of vehicle on the performance of active moisturizing substances. Skin Res. Technol. 21 (4), 403-412 (2015).
  23. Verdier-Sévrain, S., Bonté, F. Skin hydration: a review on its molecular mechanisms. J. Cosmet. Dermatol. 6 (2), 75-82 (2007).
  24. Darlenski, R., Sassning, S., Tsankov, N., Fluhr, J. W. Non-invasive in vivo methods for investigation of the skin barrier physical properties. Eur. J. Pharm. Biopharm. 72 (2), 295-303 (2009).
  25. Berardesca, E. EEMCO guidance for assessment of stratum corneum hydration: electrical methods. Skin Res. Technol. 3 (2), 126-132 (1997).
  26. Rogiers, V. EEMCO guidance for the assessment of transepidermal water loss in cosmetic sciences. Skin Pharmacol. Appl. Skin Physiol. 14 (2), 117-128 (2001).
  27. Ali, S. M., Yosipovitch, G. Skin pH: from basic science to basic skin care. Acta Derm. Venereol. 93 (3), 261-267 (2013).
  28. Agache, P., Humbert, P. . Measuring the Skin. , (2004).
  29. Council for International Organizations of Medical Sciences. . International Ethical Guidelines for Biomedical Research Involving Human Subjects. , (2002).
  30. Ruland, J. K. Transdermal permeability and skin accumulation of amino acids. Int. J. Pharm. 72 (2), 149-155 (1991).
  31. Draelos, Z. D. Therapeutic moisturizers. Dermatol. Clin. 18 (4), 597-607 (2000).
  32. Courage and Khazaka Electronic GmbH, Technical Charges. . Information and Operating Instructions for the Multi probe Adapter MPA and its Probe. , (2013).

Play Video

Cite This Article
Mokrejš, P., Huťťa, M., Pavlačková, J., Egner, P. Preparation of Keratin Hydrolysate from Chicken Feathers and Its Application in Cosmetics. J. Vis. Exp. (129), e56254, doi:10.3791/56254 (2017).

View Video