En behändig metod för extraktion och analys med vätskekromatografi högtrycks av katekolamin signalsubstanser och deras metaboliter
Summary
Vi presenterar en bekväm fasta fasen extraktion kopplad till högtrycks vätskekromatografi (HPLC) med elektrokemisk detektion (ECD) för samtidig bestämning av tre Mao signalsubstanser och två av deras metaboliter i spädbarn urin. Vi identifierar också metaboliten MHPG som en potentiell biomarkör för tidig diagnos av hjärnskador för spädbarn.
Abstract
Utvinning och analys av katekolamin signalsubstanser i biologiska vätskor är av stor betydelse vid bedömningen av nervsystemets funktion och sjukdomar, men deras exakta mätningar är fortfarande en utmaning. Många protokoll har beskrivits för signalsubstansen mätning av en mängd olika instrument, inklusive högtrycks vätskekromatografi (HPLC). Men det finns brister, såsom komplicerad operation eller svårt att identifiera flera mål, som inte kan undvikas, och för närvarande dominerande analys tekniken är fortfarande HPLC tillsammans med känsliga elektrokemiska eller fluorimetriskt upptäckt, tack vare dess höga känslighet och bra selektivitet. Här, beskrivs ett detaljerat protokoll för förbehandling och detektion av katekolaminer med högtryck vätskekromatografi med elektrokemisk detektion (HPLC-ECD) i verkliga urinprov av spädbarn, genom att använda electrospun sammansatta nanofibrer består av Polymera crown eter med polystyren som adsorbent, även känd som metoden packade-fiber fast fas utvinning (PFSPE). Vi visar hur urin prover kan vara lätt precleaned av en nanofiber-packade solid phase-kolonn, och hur analyter i provet kan berikas snabbt, desorberats och upptäcks på en ECD-system. PFSPE förenklar förbehandling förfarandena för biologiska prover, vilket möjliggör minskad tid, kostnader och minskning av förlust av mål.
Övergripande, detta arbete illustrerar en enkel och bekväm protokoll för fasta fasen extraktion kopplad till en HPLC-ECD system för samtidig bestämning av tre Mao signalsubstanser (noradrenalin (NE), epinefrin (E), dopamin (DA)) och två av deras metaboliter (3-metoxi-4-hydroxyphenylglycol (MHPG) och 3,4-dihydroxi-fenylättiksyra (DOPAC)) i spädbarn urin. Etablerade protokollet användes för att bedöma skillnaderna av urin katekolaminer och deras metaboliter mellan högrisk spädbarn med perinatal hjärnskada och friska kontroller. Jämförande analysen visade en signifikant skillnad i urin MHPG mellan de två grupperna, som visar att katekolamin metaboliterna kan vara en viktig kandidat markör för tidig diagnos av fall risk för hjärnskador hos spädbarn.
Introduction
Katekolamin signalsubstanser och metaboliten innehållet i kroppsvätskor kan påverka neurala funktion och påverka balansen staters svar-till-stimulans till en stor grad1. Abnormiteter kan orsaka en mängd sjukdomar, såsom pheochromacytoma, ganglioneuroma, neuroblastom och neurologiska1,2. Utvinning och bestämning av katekolaminer i kroppsvätskor är meningsfullt att diagnos av de relevanta sjukdomarna. Dock katekolaminer i biologiska prover finns i låga koncentrationer och oxideras lätt. Dessutom är de mycket svåra att eluera på grund av den stora mängden störningar i medium3. Samtidiga detektion av katekolaminer i biologiska vätskor är således fortfarande en utmaning.
Det har förekommit recensioner visar att urin katekolaminer kan vara ett mått på stress, och att deras nivåer är viktiga biologiska markörer svara till taktil stimulering bearbetning i nyfödda5. Enligt forskning, alla spädbarn som utsatts för tidig incidenter är i riskzonen för hjärnan skada4,5,6, och skada kan orsaka onormal frisättning av katekolaminer och relaterade frågor med vätskorna. Det finns avancerade magnetresonans tekniker som kan upptäcka hjärnskador i tidigare faser7,8. Men, inom de första 48 h, en onormal neurodevelopmental process kommer att orsaka permanent hjärnskada som inte kommer att tydligt i medicinska bilder11. Förutom de instrument hög kostnad och knappa resurserna, tillsammans med andra faktorer, gör det omöjligt för alla neonatala enheter att få tillgång till dessa specialiserade neuro-imaging tekniker. Men användningen av en lätt åtkomlig och praktiska biomarkör (såsom katekolaminer och deras metaboliter) kunde övervinna dessa brister och screening av en biomarkör i mänskliga vätskor kan hjälpa i tidig diagnos av hjärnskada och leda till snabb identifiering av nyfödda barn som behöver neuroprotektion9. Katekolaminer i urin kan vara ett enkelt och självklart index, tack vare det direkta sambandet mellan beloppet av dem släpptes in i vätskor och neuroactivity funktion.
Bland biologiska vätskor, cerebrospinalvätska (CSF) och plasmaprover är inte lätt att få via befintliga traumatisk förfaranden, och det är också mycket svårt att bli av störningar på grund av proteinklister och andra orenheter, leder till en besvärlig och tidskrävande samplingsprocessen som är olämplig för upprepad upptäckt. Även för barn är det nästan omöjligt att få proverna i en traumatisk mode. Därför urin provtagning är bättre än andra former av provtagning, eftersom det är icke-invasiv, lätt att använda, och kan göras flera gånger. Urinprov är riklig och lätt att lagra och Visa stora fördelar över andra former av biologiska prover.
De viktigaste metoderna att kvantifiera katekolaminer i biologiska vätskor inkluderar radioenzymic analyser10, enzymkopplad immun-sorbent analyser11, voltametri12 och termisk lins spektrometri13. Men det finns brister, såsom komplicerade operationer och svårt att identifiera flera mål. Idag är dominerande analys teknik högpresterande vätskekromatografi (HPLC)14, tillsammans med känsliga elektrokemiska15 eller fluorimetriskt upptäckt16, på grund av dess höga känslighet och bra selektivitet. Med tandem mass spectrometry teknik, såsom vätskekromatografi/masspektrometri (LC/MS) och liquid chromatography/mass spectrometry/masspektrometri (LC/MS/MS), analys och kvantifiering av signalsubstanser kan nå hög noggrannhet och specificitet17,18. MS tekniken kräver dock dyra instrumentering samt väsentligen kvalificerad arbetskraft, vilket gör metoden svårt att tillämpas allmänt i de flesta konventionella laboratorier. HPLC-ECD system utrustas vanligen mest konventionella och kliniska laboratorier, och har således blivit ett vanligt och bra val för forskargrupper att använda för kemisk bestämning, men de kräver provet införs i systemet för att vara rena och av Hur provtagningsutrustningen skall volym19. Det är således av stor betydelse att rena och kondensera provet före analys. Den klassiska metoden för reningssteg är vätska-vätska utvinning14,15,20 och off-line fasta fasen extraktion, inklusive aktiverad aluminiumoxid kolumn21,22 och diphenylborate (DPBA) komplexering23,24,25,26.
Myeongho Lee et al. har använt polymer harts kemiskt modifierade med crown eter som adsorbenten till selektivt extraktet katekolaminer från mänsklig urin sedan 200727. Också i 2006, Haibo han et al. visat en lättköpt syntes strategi för boronate affinitet utvinning sorbent byutilizing en functionalizable nanomagnetic polyedriska Oligomera silsesquioxane (POSS) baserat nanomagnetic komposit, och tillämpa det till ett berikande av katekolaminer i mänsklig urin (noradrenalin, adrenalin och isoprenalin)28. De drog också fördel av nanomaterialen att fullfölja arbetet, med en teknik som kallas nano-electrospinning och bildar det polymer fibrösa materialet i nanoskala. Electrospinning processen kan justera diametern, morfologi och rumslig justering av produkten genom att kontrollera arbetsspänning och ändra innehållet i den snurrande lösningen tillsammans med andra parametrar29. Jämfört med konventionella SPE patronen, electrospun nanofibrer är mycket lämpliga att extrahera och berika mål analyter från en komplex matris, eftersom de är utrustade med hög yta-området-till-volym nyckeltal att adsorbera analyter med hög effektivitet, och uppvisa mer lättkontrollerad kemiska ytegenskaper, möjliggör praktisk fastsättning av föreningarna som mål. Dessa egenskaper gör dem bra val för SPE adsorbents, vilket avsevärt minskar den fasta fasen och desorption lösningsmedel belopp30,31,32,33. För katekolaminer i urinprover användes electrospun nanofibrer består av apolymeric crown eter med polystyren (PCE-PS) till selektivt extraktet tre katekolaminer (NE, E och DA)34. Papperet anges att selektiv crown eter adsorberat målen i NE, E och DA, som var baserad på dess rätta geometri för bindande katekolaminer via bilda vätebindningar. Resultaten visas material crown eter effektivt, ta bort andra störande föreningar som ingår i biologiska prover. Inspirerad av detta betänkande, en roman metod utvecklades för selektiv extraktion av katekolaminer genom användning av electrospun sammansatta nanofibrer består av PCE-PS.
I detta papper rapporterats metoden tidigare34 var förbättrade och anställda inte bara för att framgångsrikt analysera E, NE, och DA, men också deras metaboliter, MHPG och DOPAC, i urinen. Vi utforskar också nya möjligheter för mekanismen av adsorptionsprocessen. Metoden visar tillfredsställande utvinning effektivitet och selektivitet för de fem analyterna, och metoden var verifierade i analysen av urin från högriskområden spädbarn med perinatal hjärnskada och friska kontroller.
Protocol
Representative Results
Discussion
Den föreslagna PFSPE-metoden i detta dokument kan vara betydande och meningsfull med avseende på dess snabbhet, enkelhet och bekvämlighet. De adsorbents används i protokollet är electrospun nanofibrer, som har hög yta området till volym nyckeltal, och adsorbera analyter med hög verkningsgrad. Förfarandet bara behöver några milligram nanofiber och en liten volym av eluant lösningsmedel, och kräver inte en avdunstning steg att koncentrera analyter. Här har vi presenterat en detaljerad översikt av en HPLC-ECD…
Disclosures
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
Denna studie stöddes av National Science Foundation Kina (No.81172720, nr 81673230), sociala utveckling forskning Program av Jiangsu provinsen vetenskap och teknik Institutionen (No. BE2016741), vetenskap & teknikprojekt av Kina allmänna administrationen av Quality Supervision, Inspection and Quarantine (2015QK055), programmet öppna projekt i centrala laboratorium på barns utveckling och lärande vetenskap av undervisningsministeriet, Southeast universitet (CDLS-2016-04). Vi erkänner uppriktigt Yuan låt och Ping Liu som hjälpt oss prover samling.
Materials
| 200 µL pipette tip | column to contain nanofibers | ||
| PCE-PS nanofibers | material for PFSPE extraction | ||
| steel rod (about 0.5 mm diameter) | fill the nanofibres into the column | ||
| gastight plastic syringe (5 ml) | compress solution into the end of the tip | ||
| methanol | Sinopharm Chemical ReagentCo., Ltd | 67-56-1 | |
| diphenylborinic acid 2-aminoethyl ester(DPBA) | Sigma-Aldrich.Inc | A-106408 | complex reagent |
| norepinephrine(NE) | Sigma-Aldrich.Inc | A-9512 | analyte |
| 3-Methoxy-4-hydroxyphenylglycol(MHPG) | Sigma-Aldrich.Inc | H1377 | analyte |
| epinephrine(E) | Sigma-Aldrich.Inc | 100154-200503 | analyte |
| 3, 4-Dihydroxyphenylacetic acid(DOPAC) | Sigma-Aldrich.Inc | D-9128 | analyte |
| dopamine(DA) | Sigma-Aldrich.Inc | H-8502 | analyte |
| 3, 4-dihydroxybenzylamine hydrobromide(DHBA) | Sigma-Aldrich.Inc | 858781 | interior label |
| acetonitrile | Sigma-Aldrich.Inc | 75-05-8 | eluriant and mobile phase |
| phosphoric acid | Sinopharm Chemical ReagentCo., Ltd | 7664-38-2 | eluriant |
| uric acid | Sinopharm Chemical ReagentCo., Ltd | 69-93-2 | artifical urine |
| creatinine | Sinopharm Chemical ReagentCo., Ltd | 60-27-5 | artifical urine |
| trisodium citrate | Sinopharm Chemical ReagentCo., Ltd | 6132-04-3 | artifical urine |
| KCl | Sinopharm Chemical ReagentCo., Ltd | 7447-40-7 | artifical urine |
| NH4Cl | Sinopharm Chemical ReagentCo., Ltd | 12125-02-9 | artifical urine |
| NaHCO3 | Sinopharm Chemical ReagentCo., Ltd | SWC0140326 | artifical urine |
| C2Na2O4 | Sinopharm Chemical ReagentCo., Ltd | 62-76-0 | artifical urine |
| NaSO4 | Sinopharm Chemical ReagentCo., Ltd | 7757-82-6 | artifical urine |
| disodium hydrogen phosphate | Sinopharm Chemical ReagentCo., Ltd | 10039-32-4 | artifical urine |
| urea | Sinopharm Chemical ReagentCo., Ltd | 57-13-6 | artifical urine |
| NaCl | Sinopharm Chemical ReagentCo., Ltd | 7647-14-5 | artifical urine |
| MgSO4.7H2O | Sinopharm Chemical ReagentCo., Ltd | 10034-99-8 | artifical urine |
| CaCl2 | Sinopharm Chemical ReagentCo., Ltd | 10035-04-8 | artifical urine |
| HCl | Sinopharm Chemical ReagentCo., Ltd | 7647-01-0 | artifical urine |
| citric acid | Sinopharm Chemical ReagentCo., Ltd | 77-92-9 | artifical urine and mobile phase |
| EDTA disodium salt | Sinopharm Chemical ReagentCo., Ltd | 34124-14-6 | mobile phase |
| monometallic sodium orthophosphate | Sinopharm Chemical ReagentCo., Ltd | 7558-80-7 | artifical urine and mobile phase |
| 1-heptanesulfonic acid sodium salt | Sinopharm Chemical ReagentCo., Ltd | 22767-50-6 | mobile phase |
| sodium hydroxide | Sinopharm Chemical ReagentCo., Ltd | 1310-73-2 | mobile phase |
| phenylboronic acid column(PBA column) | Aglilent | 12102018 | PBA extraction |
| Inertsil® ODS-3 5 µm 4.6×150 mm column | Dikma | 5020-06731 | HPLC column for seperation |
| SHIMADZU SIL-20AC prominence AUTO SAMPLER | Shimadzu Corporation, Japan | SIL-20AC | auto injection for eluriant |
| SHIMADZU LC-20AD High Performance Liquid Chromatography | Shimadzu Corporation, Japan | LC-20AD | HPLC pump |
| SHIMADZU L-ECD-60A electrochemical detector | Shimadzu Corporation, Japan | L-ECD-60A | detector for the analytes |
| ASAP 2020 Accelerated Surface Area and Porosimetry System | Micromeritics, USA | surface and porosity analyzer |
References
- Elhwuegi, A. S. Central monoamines and their role in major depression. Prog. Neuropsychopharmacol. Biol. Psychiatry. 28, 435-451 (2004).
- Da, C. F., Ngoabdalla, S., Houzel, J. C., Rehen, S. K. Murine model for Parkinsons disease: From 6-OH dopamine lesion to behavioral test. J. Vis. Exp. (35), e1376 (2010).
- Varley, H., Gowenlock, A. H. The clinical chemistry of monoamines. Brit. Med. J. 2, 1330 (1963).
- Wang, X., Rousset, C. I., Hagberg, H., Mallard, C. Lipopolysaccharide-induced inflammation and perinatal brain injury. Semin. Fetal. Neonatal. Med. 11, 343-353 (2006).
- Inder, T. E., Volpe, J. J. Mechanisms of perinatal brain injury. Semin. Neonatol. 5, 3-16 (2000).
- Miller, S. P., Ferriero, D. M. From selective vulnerability to connectivity: Insights from newborn brain imaging. Trends. Neurosci. 32, 496-505 (2009).
- Barkovich, A. J., et al. Proton MR spectroscopy for the evaluation of brain injury in asphyxiated, term neonates. Am. J. Neuroradiol. 20, 1399-1405 (1999).
- Liauw, L., van Wezel-Meijler, G., Veen, S., van Buchem, M. A., van der Grond, J. Do apparent diffusion coefficient measurements predict outcome in children with neonatal hypoxic-ischemic encephalopathy?. Am. J. Neuroradiol. 30, 264-270 (2009).
- Varsami, M., et al. Inflammation and oxidative stress biomarkers in neonatal brain hypoxia and prediction of adverse neurological outcome: A review. J. Pediatr. Neonat. Individual. Med. 2, e020203 (2013).
- Cooper, R. L., Walker, R. F. Microradioenzymic assays for the measurement of catecholamines and serotonin. Methods. Enzymol. 103, 483-493 (1983).
- Murphy, J. F. The development of enzyme linked immunosorbent assays (ELISA) for the catecholamines adrenaline and noradrenaline. J. Immunol. Methods. 154, 89-98 (1992).
- Jones, S. R., Mickelson, G. E., Collins, L. B., Kawagoe, K. T., Wightman, R. M. Interference by pH and Ca2+ ions during measurements of catecholamine release in slices of rat amygdala with fast-scan cyclic voltammetry. J. Neurosci. Methods. 52, 1-10 (1994).
- Sanchismallols, J. M., Villanuevacamañas, R. M., Ramisramos, G. Determination of unconjugated catecholamine in urine as dopamine by thermal lens spectrometry. Analyst. 117, 1367-1371 (1992).
- Lan, C., Liu, W. Determination of catecholamines by HPLC-ECD in urine. Medical Laboratory Science and Clinics. , (2007).
- Tsunoda, M., Aoyama, C., Ota, S., Tamura, T., Funatsu, T. Extraction of catecholamines from urine using a monolithic silica disk-packed spin column and high-performance liquid chromatography-electrochemical detection. Anal. Methods. 3, 582-585 (2011).
- Bartolini, B., et al. Determination of monoamine oxidase activity by HPLC with fluorimetric detection. Neurobiology (Bp). 7, 109-121 (1999).
- Dunand, M., Gubian, D., Stauffer, M., Abid, K., Grouzmann, E. High throughput and sensitive quantitation of plasma catecholamines by ultraperformance liquid chromatography tandem mass spectrometryusing a solid phase microwell extraction plate. Anal. Chem. 85, 3539-3544 (2013).
- He, H., Carballo-Jane, E., Tong, X., Cohen, L. H. Measurement of catecholamines in rat and mini-pig plasma and urine by liquid chromatography-tandem mass spectrometry coupled with solid phase extraction. J. Chromatogr. B. 997, 154-161 (2015).
- Simon, N., Young, P. How to increase serotonin in the human brain without drugs. J. Psychiatry. Neurosci. 32, 394-399 (2007).
- Grossi, G., et al. Improvements in automated analysis of catecholamine and related metabolites in biological samples by column-switching high-performance liquid chromatography. J. Chromatogr. A. 541, 273-284 (1991).
- Iwamot, T., Yoshiura, M., Iriyama, K. Liquid chromatographic identification of urinary catecholamine metabolites adsorbed on alumina. J. Liq. Chromatogr. R. T. 10, 1217-1235 (1987).
- Maycock, P. F., Frayn, K. N. Use of alumina columns to prepare plasma samples for liquid-chromatographic determination of catecholamines. Clin. Chem. 33, 286-287 (1987).
- Grossi, G., Bargossi, A., Lippi, A., Battistoni, R. A fully automated catecholamines analyzer based on cartridge extraction and HPLC separation. Chromatographia. 24, 842-846 (1987).
- Rondelli, I., et al. New method for the resolution of the enantiomers of 5,6-dihydroxy-2-methyl-aminotetralin by selective derivatization and HPLC analysis: Application to biological fluids. Chirality. 8, 381-389 (1996).
- Kumar, A., Hart, J. P., McCalley, D. V. Determination of catecholamines in urine using hydrophilic interaction chromatography with electrochemical detection. J. Chromatogr. A. 1218, 3854-3861 (2011).
- Sabbioni, C., et al. Simultaneous liquid chromatographic analysis of catecholamines and 4-hydroxy-3-methoxyphenylethylene glycol in human plasma: Comparison of amperometric and coulometric detection. J. Chromatogr. A. 1032, 65-71 (2004).
- Lee, M., et al. Selective solid-phase extraction of catecholamines by the chemically modified polymeric adsorbents with crown ether. J. Chromatogr. A. 1160, 340-344 (2007).
- He, H., et al. Facile synthesis of a boronate affinity sorbent from mesoporous nanomagnetic polyhedral oligomeric silsesquioxanes composite and its application for enrichment of catecholamines in human urine. Anal. Chim. Acta. 944, 1-13 (2016).
- Subbiah, T., Bhat, G. S., Tock, R. W., Parameswaran, S., Ramkumar, S. S. Electrospinning of nanofibers. J. Appl. Polym. Sci. 96, 557-569 (2005).
- Hu, W. Y., et al. Packed-fiber solid-phase extraction coupled with high performance liquid chromatography-tandem mass spectrometry for determination of diethylstilbestrol, hexestrol, and diedestrol residues in milk. J. Chromatogr. B. 957, 7-13 (2014).
- Liu, Z., Kang, X., Fang, F. Solid phase extraction with electrospun nanofibers for determination of retinol and α-tocopherol in plasma. Microchim. Acta. 168, 59-64 (2010).
- Qi, D., Kang, X., Chen, L., Zhang, Y., Wei, H., Gu, Z. Electrospun polymer nanofibers as a solid-phase extraction sorbent for the determination of trace pollutants in environmental water. Anal. Bioanal. Chem. 390, 929-938 (2008).
- Kang, X. J., Chen, L. Q., Zhang, Y. Y., Liu, Y. W., Gu, Z. Z. Performance of electrospun nanofibers for SPE of drugs from aqueous solutions. J. Sep. Sci. 31, 3272-3278 (2008).
- Chen, L. Q., Wang, Y., Qu, J. S., Deng, J. J., Kang, X. J. Selective extraction of catecholamines by packed fiber solid-phase using composite nanofibers composing of polymeric crown ether with polystyrene. Biomed. Chromatogr. 29, 103-109 (2015).
- Chen, L. Q., Zhu, X. H., Shen, J., Zhang, W. Q. Selective solid-phase extraction of catecholamines from plasma using nanofibers doped with crown ether and their quantitation by HPLC with electrochemical detection. Anal. Bioanal. Chem. 408, 4987-4994 (2016).
- Hu, H., Zhang, Y., Zhang, Y., Huang, X., Yuan, D. Preparation of a new sorbent based on boronate affinity monolith and evaluation of its extraction performance for nitrogen-containing pollutants. J. Chromatogr. A. 1342, 8-15 (2014).
- Chen, J., et al. Sensitive determination of four camptothecins bysolid-phase microextraction-HPLC based on a boronic acid contained polymer monolithic layer. Anal. Chim. Acta. 879, 41-47 (2015).
- Li, D., Chen, Y., Liu, Z. Boronate affinity materials for separation and molecular recognition: structure, properties and applications. Chem. Soc. Rev. 44, 8097-8123 (2015).
- Yan, J., Springsteen, G., Deeter, S., Wang, B. The relationship among pKa, pH, and binding constants in the interactions between boronic acids and diols: It is not as simple as it appears. Tetrahedron. 60, 11205-11209 (2004).
- Reuster, T., Rilke, O., Oehler, J. High correlation between salivary MHPG and CSF MHPG. Psychopharmacology. 162, 415-418 (2002).
- Beckmann, H., Goodwin, F. K. Urinary MHPG in subgroups of depressed patients and normal controls. Neuropsychobiology. 6, 91-100 (1980).
- Mitoma, M., et al. Stress at work alters serum brain-derived neurotrophic factor (BDNF) levels and plasma 3-methoxy-4-hydroxyphenylglycol (MHPG) levels in healthy volunteers: BDNF and MHPG as possible biological markers of mental stress?. Prog. Neuropsychopharmacol. Biol. Psychiatry. 32, 679-685 (2008).
- Ressler, K. J., Nemeroff, C. B. Role of Norepinephrine in the Pathophysiology and Treatment of Mood Disorders. Biol. Psychiatry. 46, 1219-1233 (1999).
- Alonso-Spilsbury, M., et al. Perinatal asphyxia pathophysiology in pig and human: A review. Anim. Reprod. Sci. 90, 1-30 (2005).
- Shalak, L., Perlman, J. M. Hypoxic-ischemic brain injury in the term infant: Current concepts. Early. Hum. Dev. 80, 125-141 (2004).
- Maas, J. W., Leckman, J. F. relationships between central nervous system noradrenergic function and plasma and urinary MHPG and other norepinephrine metabolites. MHPG: Basic Mechanisms and Psychopathology. , 33-43 (1983).
- Maas, J. W. Relationships between central nervous system noradrenergic function and plasma and urinary concentrations of norepinephrine metabolites. Adv. Biochem. Psychopharmacol. 39, 45-55 (1984).
- Peyrin, L., Pequignot, J. M., Chauplannaz, G., Laurent, B., Aimard, G. Sulfate and glucuronide conjugates of 3-methoxy-4-hydroxyphenylglycol (MHPG) in urine of depressed patients: Central and peripheral influences. J. Neural. Transm. 63, 255-269 (1985).
- Peyrin, L. Urinary MHPG sulfate as a marker of central norepinephrine metabolism: A commentary. J. Neural. Transm. 80, 51-65 (1990).
