Summary

तरल पदार्थ का निर्धारण करने के लिए फ्लोरोसेंट, चुंबकीय नैनोकणों की घूस-कीड़ों में ले क्षमताओं

Published: December 20, 2017
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Summary

द्रव-खिला कीड़ों छिद्रित सतहों से तरल पदार्थ के मिनट मात्रा प्राप्त करने की क्षमता है । इस प्रोटोकॉल एक विधि का वर्णन करने के लिए सीधे कीड़ों के लिए क्षमता का निर्धारण करने के लिए छिद्र से तरल पदार्थ निगलना फ्लोरोसेंट, चुंबकीय नैनोकणों के साथ समाधान खिला का उपयोग सतहों ।

Abstract

द्रव खिला कीड़ों तरल पदार्थ है, जो पूल, फिल्मों, या छोटे pores के लिए सीमित के रूप में पर्यावरण में मौजूद है की एक किस्म निगलना । तरल अधिग्रहण के अध्ययन mouthpart संरचना और समारोह संबंधों का आकलन करने की आवश्यकता; हालांकि, द्रव के ऊपर तंत्र संरचनात्मक वास्तुकला की टिप्पणियों से ऐतिहासिक रूप से आस्थगित कर रहे हैं, प्रयोगात्मक सबूतों के साथ कभी नहीं हमराह । यहां, हम तरल पदार्थ की छोटी मात्रा का उपयोग कर तितलियों (Lepidoptera) और मक्खियों (Diptera) के साथ द्रव की क्षमता का आकलन करने के लिए एक उपंयास विधि की रिपोर्ट । कीड़े एक 20% के साथ खिलाया सुक्रोज समाधान फ्लोरोसेंट के साथ मिश्रित कर रहे हैं, विशिष्ट ताकना आकार के फिल्टर कागज से चुंबकीय नैनोकणों । फसल (आंतरिक संरचना तरल पदार्थ के भंडारण के लिए इस्तेमाल किया) कीट से हटा दिया और एक फोकल माइक्रोस्कोप पर रखा जाता है । एक चुंबक फसल द्वारा लहराया है नैनोकणों की उपस्थिति है, जो संकेत अगर कीड़ों तरल पदार्थ निगलने में सक्षम है निर्धारित करने के लिए । इस पद्धति के लिए एक व्यापक खिला तंत्र (केशिका कार्रवाई और तरल पुल गठन) है कि संभावित Lepidoptera और Diptera के बीच साझा जब छिद्रित सतहों से खिला है प्रकट किया जाता है । इसके अलावा, इस विधि द्रव-खिला कीड़ों की एक किस्म के बीच भोजन तंत्र के अध्ययन के लिए इस्तेमाल किया जा सकता है, रोग संचरण और biomimetics में महत्वपूर्ण उन सहित, और संभावित अंय अध्ययनों कि नैनो या सूक्ष्म आकार नाली शामिल है जहां तरल परिवहन सत्यापन की आवश्यकता है ।

Introduction

कई कीट समूहों मुँह (सूंड) तरल पदार्थ पर खिलाने के लिए अनुकूलित किया है, ऐसे अमृत के रूप में, फल सड़, एसएपी प्रवाह (जैसे Diptera1, Lepidoptera2, Hymenoptera3), जाइलम (Hemiptera4), आंसू (Lepidoptera ), व रक्त (Phthiraptera, Siphonaptera, Diptera, Hemiptera, Lepidoptera). कीड़ों की क्षमता तरल पदार्थ पर फ़ीड करने के लिए पारिस्थितिकी तंत्र स्वास्थ्य (जैसे परागण10), रोग संचरण4,11,2,12, और अध्ययन के लिए प्रासंगिक है च्या अभिसरण विकास१३. खाद्य स्रोतों की व्यापक विविधता के बावजूद, कुछ तरल पदार्थ खिला कीड़ों के बीच एक विषय तरल पदार्थ है, जो सूक्ष्म या नैनो आकार की बूंदों, तरल फिल्मों, या छिद्रित सतहों को सीमित किया जा सकता है की छोटी मात्रा में प्राप्त करने की क्षमता है ।

द्रव-खिला कीड़ों की व्यापक विविधता को देखते हुए (सभी पशु प्रजातियों में से अधिक 20%14,15) और उनके भोजन के स्रोतों की एक किस्म पर फ़ीड करने की क्षमता, उनके खिला व्यवहार और द्रव को समझने-के लिए तंत्र है कई क्षेत्रों में महत्वपूर्ण है । कीट mouthpart कार्यशीलता, उदाहरण के लिए, biomimetic प्रौद्योगिकी के विकास में एक भूमिका निभाई है, उदा, microfluidic उपकरणों है कि ऐसे तरल पदार्थ की छोटी मात्रा के अधिग्रहण के रूप में कार्य कर सकते है उन लोगों के समान तरीकों का उपयोग कर कार्यरत द्वारा कीड़े16। तरल पदार्थ के ऊपर तंत्र के अध्ययन में एक बुनियादी समस्या है, तथापि, न केवल कैसे कीड़ों तरल पदार्थ पर फ़ीड का निर्धारण है, लेकिन प्रयोगात्मक सबूत है कि तंत्र का समर्थन प्राप्त । पूरी तरह से व्यवहार का उपयोग (जैसे, सूंड12,17के साथ जांच) के रूप में खिलाने के लिए एक संकेतक अपर्याप्त है क्योंकि यह तरल पदार्थ के सफल लेने की पुष्टि नहीं करता है, और न ही यह एक के लिए मार्ग निर्धारित करने का साधन प्रदान करता है कि तरल यात्रा के रूप में वे कीट से गुजारें । इसके अलावा, तरल पदार्थ की छोटी मात्रा के साथ प्रयोग प्रदर्शन बेहतर प्राकृतिक खिला परिदृश्यों का प्रतिनिधित्व करता है, जहां तरल पदार्थ एक सीमित संसाधन2,12हैं ।

X-रे चरण कंट्रास्ट इमेजिंग नरेश तितली (Danaus plexippus L) के साथ प्रयोग किया गया था कैसे तितलियों छिद्रित सतहों से तरल पदार्थ की छोटी मात्रा में12पर फ़ीड । संराट तितलियों सूंड के साथ cuticular अनुमानों (पृष्ठीय legulae) के बीच रिक्त स्थान के माध्यम से केशिका कार्रवाई का उपयोग करने के लिए तरल पदार्थ लाने के लिए भोजन नहर में छोटे pores । आने वाले तरल पदार्थ खाना नहर की दीवार पर एक फिल्म के रूप है कि बढ़ता है और पठार अस्थिरता12,18है, जो तो सिर में चूसने पंप की कार्रवाई के द्वारा तितली के पेट के लिए ले जाया जाता है द्वारा एक तरल पुल में गिर जाता है । हालांकि एक्स-रे चरण कंट्रास्ट इमेजिंग कीड़े के अंदर द्रव प्रवाह visualizing के लिए एक इष्टतम उपकरण है12,19,20,21, तकनीक आसानी से उपलब्ध नहीं है और एक अधिक सुविधाजनक विधि तरल पदार्थ को तेज करने और उन्हें निगलने के लिए एक कीट की क्षमता के तेजी से आकलन के लिए आवश्यक है ।

यह निर्धारित करने के लिए कि D. plexippus के लिए खिला तंत्र अन्य Lepidoptera पर लागू होता है और यह भी मक्खियों (Diptera) (दोनों समूहों को छिद्रित सतहों से तरल पदार्थ पर फ़ीड), Lehnert एट अल. 13 एक कीट की क्षमता को छिद्रित सतहों से तरल पदार्थ की छोटी मात्रा पर फ़ीड करने के लिए एक तकनीक लागू किया है, जो यहां विस्तार से बताया गया है । हालांकि यहां उल्लिखित प्रोटोकॉल अध्ययन के लिए है कि उपयोग गीला और असुरक्षित सतहों, कार्यप्रणाली अंय अध्ययनों के लिए बदला जा सकता है, इस तरह के पूल खिला तंत्र को संबोधित उन के रूप में । इसके अलावा, अनुप्रयोगों microfluidics और प्रेरित प्रौद्योगिकी सहित अन्य क्षेत्रों के लिए विस्तार ।

Protocol

1. कीट प्रजातियों, समाधान और खिला स्टेशन सेटअप की तैयारी नोट: गोभी तितलियों (Pieris rapae एल, Pieridae) प्रतिनिधि Lepidoptera की प्रजातियों के रूप में चुना जाता है क्योंकि वे द्रव के पिछले अध्ययनों में इस्तेमाल ?…

Representative Results

द्रव में पैटर्न के अध्ययन-तरल पदार्थ खिला कीड़ों के बीच क्षमताओं को खिलाने के लिए जब होता है के निर्धारण की आवश्यकता है । यहां उल्लिखित प्रोटोकॉल Lepidoptera और Diptera13के बीच सीमित ताकना आका?…

Discussion

कीट mouthpart कार्यक्षमता ऐतिहासिक रूप से सकल आकृति विज्ञान के अध्ययन से आस्थगित है (उदा, lepidopteran सूंड एक पीने के भूसे से संबंधित कार्यशीलता25,26); हालांकि, हाल के अध्ययनों कि प्रयोगात्मक ?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

यह काम नेशनल साइंस फाउंडेशन (NSF) ग्रांट नो के सहयोग से किया गया । IOS १३५४९५६. हम Dr. एंड्रयू डी वॉरेन (Lepidoptera और जैव विविधता, फ्लोरिडा प्राकृतिक इतिहास, फ्लोरिडा के विश्वविद्यालय के संग्रहालय के लिए McGuire केंद्र) को तितली छवियों का उपयोग करने की अनुमति के लिए धंयवाद ।

Materials

20% sucrose solution Domino Sugar Sugar needed to produce the sucrose solution with dH2O
Phosphate Buffered Saline (PBS) Sigma-Aldrich P5493 10X concentration diluted to 1X in dH2O for insect dissections
Single depression concave slide AmScope BS-C6 Slide is necessary for feeding stage setup
Filter paper EMD Millipore NY6004700 (60 µm) Nylon net filters and isopore filters needed to produce a porous surface for insect feeding
Filter paper EMD Millipore NY4104700 (41 µm) Nylon net filters and isopore filters needed to produce a porous surface for insect feeding
Filter paper EMD Millipore NY3004700 (30 µm) Nylon net filters and isopore filters needed to produce a porous surface for insect feeding
Filter paper EMD Millipore NY2004700 (20 µm) Nylon net filters and isopore filters needed to produce a porous surface for insect feeding
Filter paper EMD Millipore NY1104700 (11 µm) Nylon net filters and isopore filters needed to produce a porous surface for insect feeding
Filter paper EMD Millipore TCTP04700 (10 µm) Nylon net filters and isopore filters needed to produce a porous surface for insect feeding
Filter paper EMD Millipore TETP04700 (8 µm) Nylon net filters and isopore filters needed to produce a porous surface for insect feeding
Filter paper EMD Millipore TMTP04700 (5 µm) Nylon net filters and isopore filters needed to produce a porous surface for insect feeding
Filter paper EMD Millipore RTTP04700 (1 µm) Nylon net filters and isopore filters needed to produce a porous surface for insect feeding
Iris microdissecting scissors Carolina Biological Supply Company 623555 Scissors used for dissections
Insect pins (#1) Bioquip Products 1208B1 Pins used during dissections and feeding trials
Extra-fine point dissecting forceps Carolina Biological Supply Company 624684 Dissecting equipment
Leica M205 C Stereoscope Leica Microsystems M205 C Stereoscope used for dissections
Inverted confocal microscope Olympus IX81 Fluorescent microscope used to detect magnetic nanoparticles
Fisherbrand PTFE Disposable Stir Bar Fisherscientific S68067 Magnet used to detect nanoparticles
Kimtech Science Kimwipes Kimberly-Clark Professional 34155 Tissues used to secure insects during feeding trials
House fly (Musca domestica) pupae Mantisplace.com insects for experiments
Blue bottle fly (Calliphora vomitoria) pupae Mantisplace.com insects for experiments
Cabbage butterfly (Pieris rapae) larvae Carolina Biological Supply Company 144102 insects for experiments
Finnpipette F1  ThermoFisher Scientific 4641080N micropipette for dispensing liquids
Finntip 250 pipette tips ThermoFisher Scientific 9400250 micropipette tips
Microscope Glass cover slides (=coverslips) (24 x 24 mm) AmScope CS-S24-100 coverslips for viewing the insect's crop on confocal microscope

References

  1. Vijaysegaran, S., Walter, G. H., Drew, R. A. I. Mouthpart structure, feeding mechanisms, and natural food sources of adult Bactrocera (Diptera: Tephritidae). Ann Entomol Soc Am. 90, 184-201 (1997).
  2. Lehnert, M. S., Monaenkova, D., Andrukh, T., Beard, C. E., Adler, P. H., Kornev, K. G. Hydrophobic-hydrophilic dichotomy of the butterfly proboscis. J R Soc Interface. 10, 1-10 (2013).
  3. Zhao, J., Wu, J., Yan, S. Erection mechanism of glossal hairs during honeybee feeding. J Theor biol. 386, 62-68 (2015).
  4. Redak, R. A., Purcell, A. H., Lopes, J. R. S., Blua, M. J., Mizell, R. F., Andersen, P. C. The biology of xylem fluid-feeding insect vectors of Xylella fastidiosa and their relation to disease epidemiology. Ann. Review Entomol. 49, 243-270 (2004).
  5. Büttiker, W., Krenn, H. W., Putterill, J. F. The proboscis of eye-frequenting and piercing Lepidoptera (Insecta). Zoomorphology. 116, 77-83 (1996).
  6. Light, J. E., Smith, V. S., Allen, J. M., Durden, L. A., Reed, D. L. Evolutionary history of mammalian sucking lice (Phthiraptera: Anoplura). BMC Evol Biol. 10, (2010).
  7. Krenn, H. W., Aspock, H. Form, function and evolution of the mouthparts of blood-feeding Arthropoda. Arthropod Struct Dev. 41, 101-118 (2012).
  8. Lehnert, M. P., Pereira, R. M., Koehler, P. G., Walker, W., Lehnert, M. S. Control of Cimex lectularius using heat combined with dichlorvos resin strips. Med Vet Entomol. 25, 460-464 (2011).
  9. Zaspel, J. M., Kononenko, V. S., Goldstein, P. Z. Another blood feeder? Experimental feeding of a fruit-piercing moth species on human blood in the Primorye Territory of far eastern Russia (Lepidoptera: Noctuidae: Calpinae). J Insect Behav. 20, 437-451 (2007).
  10. Barth, F. G. . Insects and flowers: the biology of a partnership. , (1991).
  11. Foil, L. D., Adams, W. V., McManus, J. M., Issel, C. J. Bloodmeal residues on mouthparts of Tabanus fuscicostatus (Diptera: Tabanidae) and the potential for mechanical transmission of pathogens. J Med Entomol. 24, 613-616 (1987).
  12. Monaenkova, D., et al. Butterfly proboscis: combining a drinking straw with a nanosponge facilitated diversification of feeding habits. J R Soc Interface. 9, 720-726 (2012).
  13. Lehnert, M. S., et al. Mouthpart conduit sizes of fluid-feeding insects determine the ability to feed from pores. Proc. R. Soc. B. 284, (2017).
  14. Grimaldi, D., Engel, M. S. . Evolution of the insects. , (2005).
  15. Adler, P. H., Foottit, R. G. . Insect biodiversity: science and society. , (2009).
  16. Tsai, C. C., et al. Nanoporous artificial proboscis for probing minute amount of liquids. Nanoscale. 3, (2011).
  17. Krenn, H. W. Proboscis sensilla in Vanessa cardui (Nympahlidae, Lepidoptera): Functional morphology and significance of flower-probing. Zoomorphology. 118, 23-30 (1998).
  18. Plateau, J. A. F. Experimental and theoretical researches on the figures of equilibrium of liquid mass withdrawn from the action of gravity. (Transl). Annual Report of the Board Regents Smithsonian Institution. , 207-285 (1863).
  19. Socha, J. J., Westneat, M. W., Harrison, J. F., Waters, J. S., Lee, W. -. K. Real-time phase-contrast x-ray imaging: a new technique for the study of animal form and function. BMC Biol. 5, 6 (2007).
  20. Westneat, M. W., Socha, J. J., Lee, W. -. K. Advances in biological structure, function and physiology using synchrotron x-ray imaging. Annu Rev Physiol. 70, 119-142 (2008).
  21. Lee, W. -. K., Socha, J. J. Direct visualization of hemolymph flow in the heart of a grasshopper (Schistocerca americana). BMC Physiology. 9, 2 (2009).
  22. Lehnert, M. S., Mulvane, C. P., Brother, A. Mouthpart separation does not impede butterfly feeding. Arthropod Struct Dev. 43, 97-102 (2014).
  23. Lehnert, M. S., Beard, C. E., Gerard, P. D., Kornev, K. G., Adler, P. H. Structure of the lepidopteran proboscis in relation to feeding guild. J Morphol. 277, 167-182 (2016).
  24. Yan, H., Sung, B., Kim, M. -. H., Kim, C. A novel strategy for functionalizable photoluminescent magnetic nanoparticles. Mater. Res. Express. 1, 045032 (2014).
  25. Kingsolver, J. G., Daniel, T. L. On the mechanics and energetics of nectar feeding in butterflies. J Theor Biol. 76, 167-179 (1979).
  26. Krenn, H. W. Feeding mechanisms of adult Lepidoptera: Structure, function, and evolution of the mouthparts. Ann Rev Entomol. 55, 307-327 (2010).
  27. Tsai, C. -. C., Monaenkova, D., Beard, C. E., Adler, P. H., Kornev, K. G. Paradox of the drinking-straw model of the butterfly proboscis. J Exp Biol. 217, 2130-2138 (2014).
  28. Bauder, J. A. S., Handschuh, S., Metscher, B. D., Krenn, H. W. Functional morphology of the feeding apparatus and evolution of proboscis length in metalmark butterflies (Lepidoptera: Riodinidae). Biol J Linn Soc. 110, 291-304 (2013).
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Lehnert, M. S., Reiter, K. E., Bennett, A., Gerard, P. D., Wei, Q., Byler, M., Yan, H., Lee, W. The Ingestion of Fluorescent, Magnetic Nanoparticles for Determining Fluid-uptake Abilities in Insects. J. Vis. Exp. (130), e56619, doi:10.3791/56619 (2017).

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