Summary

Enzymatisk Cascade reaktioner för syntesen av kirala Amino alkoholer från L-lysin

Published: February 16, 2018
doi:

Summary

Kirala amino alkoholer är mångsidig molekyler för användning som ställningar i organisk syntes. Start från L-lysin, vi syntetisera amino alkoholer av en enzymatisk cascade reaktion att kombinera diastereoselective C-H oxidation katalyseras av dioxygenas följt av klyvning av den karboxylsyra biexponentiellt av motsvarande hydroxyl aminosyran av en dekarboxylas.

Abstract

Amino alkoholer är mångsidig föreningar med ett brett spektrum av applikationer. Exempelvis har de använts som kiral ställningar i organisk syntes. Sin syntes av konventionella organisk kemi kräver ofta tråkiga flerstegs syntes processer, med svårt kontroll av stereokemiska utfallet. Vi presenterar ett protokoll till enzymatiskt syntetisera amino alkoholer start från den lättillgängliga L-lysin i 48 h. Detta protokoll kombinerar två kemiska reaktioner som är mycket svåra att genomföra av konventionella organisk syntes. I första steget, regio- och diastereoselective oxidation av en oaktiverade C-H bond lysin katalyseras sidokedjan av en dioxygenas; en andra regio- och diastereoselective oxidation katalyseras av en regiodivergent-dioxygenas kan leda till bildandet av de 1,2-dioler. I det sista steget, är karboxylsyror gruppen av alfa aminosyran klyvs av en pyridoxal-fosfat (PLP) dekarboxylas (DC). Detta decarboxylative steg påverkar bara alfa kolet av aminosyran, behålla hydroxi-substituerade stereogenic centrum i beta, gamma ställning. De resulterande amino alkoholerna är därför optiskt berikad. Protokollet tillämpades till semipreparative-skala syntesen av fyra amino alkoholer. Övervakning av reaktionerna genomfördes av högtrycksvätskekromatografi (HPLC) efter derivatisering av 1-fluoro-2,4-dinitrobensen. Okomplicerad rening genom fasta fasen extraktion (SPE) ges de amino alkoholerna med utmärkt avkastning (93% till > 95%).

Introduction

Trots de fördelar som erbjuds av biocatalysis, fortfarande integrationen av biokatalytiska stegen i syntetiska vägar eller totala biokatalytiska vägar mestadels begränsade enzymatisk kinetiska resolutioner. Dessa linjer har använts som ett första steg i asymmetrisk chemo-enzymatisk syntes, men biocatalysis erbjuder många fler möjligheter i funktionell grupp omvandlingar med hög stereoselectivity1,2,3 . Dessutom som biokatalytiska reaktioner genomförs under liknande förhållanden, är det därför möjligt att utföra cascade reaktioner i en one-pot mode4,5.

Kirala amino alkoholer är mångsidig molekyler för användning som assistenter eller ställningar i organisk syntes6. Den amino alkohol biexponentiellt hittas ofta i sekundära metaboliter och aktiva farmaceutiska substanser (API). Primära β-amino alkoholer är lätt tillgängliga från de motsvarande α-amino syrorna av konventionell kemisk syntes, men tillgång till kirala γ-amino alkoholer eller sekundära amino alkoholer kräver ofta tråkiga syntetiska vägar tillsammans med känsliga kontroll av stereokemi7,8,9,10. På grund av dess höga stereoselectivity föreskriva biocatalysis en överlägsen syntetiska rutt till dessa kirala byggstenar11,12,13,14.

Vi har tidigare rapporterat syntesen av mono – och di-hydroxy-L-lysines genom diastereoselective enzymatisk hydroxylering katalyseras av dioxygenases av järn (II) / α-ketoacid-beroende cyklooxygenas familj (αKAO) (figur 1)15. I synnerhet start från L-lysin, den KDO1-dioxygenas katalyserar bildandet av (3S) – hydroxi derivat (1), medan de (4R) – derivat (2) som bildas genom reaktion med KDO2 dioxygenas. Successiva regiodivergent hydroxylations av KDO1 och KDO2 leda till bildandet av (3R, 4R) – dihydroxi – L-lysin (3) i optiskt ren form. Dock hindrar intervallet begränsad substrat för dessa enzymer sin stora användning inom kemisk syntes, särskilt i hydroxylering av enkla aminer, eftersom en karboxylsyra biexponentiellt i α-placera av den amino gruppen är grundläggande för aktivitet16.

Figure 1
Figur 1: biokatalytiska konverteringar av L-lysin. Omvandling till (S3) – hydroxy – L-lysin (1) katalyseras av KDO1 dioxygenas; (4R) – hydroxy – L-lysin (2) katalyseras av KDO2 dioxygenas; och (3R, 4R) – dihydroxi – L-lysin (3) av cascade reaktion katalyseras successivt av KDO1 och KDO2 dioxygenases. Klicka här för att se en större version av denna siffra.

Decarboxylation är en vanlig reaktion i metabolism17. I synnerhet aminosyra DCs (EG 4.1.1) är fritt från kofaktor (pyruvoyl-beroende) eller PLP-beroende enzymer, och katalyserar omvandlingen av aminosyror till de motsvarande polyaminer i bakterier och högre organismer18,19 , 20 , 21 , 22. den mono – dihydroxi föreningar (figur 3) 47, 1011 motsvarar hydroxylerade cadaverine, den diamine erhålls genom decarboxylation av L-lysin. Cadaverine är en viktig byggsten för den kemiska industrin, särskilt det är en komponent av polyamid och polyuretan polymerer. Därför biobaserade produktionen av denna diamine från förnybara resurser har uppmärksammats som ett alternativ till oljebaserade rutten och olika mikroorganismer har konstruerats för detta ändamål. I dessa metaboliska vägar är lysin DC (LDC) det nyckel-enzymet. LDC är en PLP-beroende enzymet tillhör den alanin racemas (AR) strukturella familjära23. PLP-beroende DCs (PLP-DCs) är kända för att vara mycket substrat-specifika. Dock några enzymer äger förmåga att lätt promiskuitet, att vara aktiv mot både L-ornitin och L-lysin aminosyror, som exempelvis LDC från Selenomonas rumirantium (LDCSrum), som har liknande kinetiska konstanter för lysin och ornitin decarboxylation24,25. Detta utökade substrat specificitet gör detta enzym en bra kandidat för decarboxylation av mono – och di-hydroxy-L-lysin. Dessutom, för att hitta DCs aktiva mot hydroxyl derivat av lysin, granskat vi genomisk samband med de gener som kodar αKAO enzymer. Faktiskt i prokaryota genom är de gener som kodar enzymer involverade i samma biosyntetisk väg generellt Co lokaliserade i gen kluster. KDO2 (från Chitinophaga pinensis) genen hittades Co lokaliserade med en gen som kodar för förmodad PLP-DC (figur 2). Däremot har ingen gen kodning för DC hittats vid analys av genomisk ramen för den KDO1-dioxygenas. PLP-DC proteinet från C. pinensis (DCCpin) valdes därför som en lovande kandidat att katalysera steget decarboxylation av cascade reaktionen.

Figure 2
Figur 2: genomisk sammanhang av KDO2 gen i C. pinensis. Klicka här för att se en större version av denna siffra.

Därför har vi utformat enzymatisk cascade reaktioner som involverar dioxygenases och DCs att uppnå syntesen av alifatiska kirala β – och γ-amino alkoholer från aminosyror (figur 3). Som tidigare rapporterats introducerar C-H oxidation katalyseras av αKAO hydroxi-substituerade stereogenic centrum med total diastereoselectivity; den Cβ/γ kiralitet bevaras i decarboxylative steg, som bara påverkar Cα kolet av aminosyra biexponentiellt16.

Figure 3
Figur 3: retrosyntetisk analys. (A) retrosyntes av β – och γ-amino alkoholer (R) – 1,5 – diaminopentan-2-ol (4) från (5R) – hydroxy – L-lysin, och (S) – 1,5 – diaminopentan-2-ol (5) och 1,5-diaminopentan-3-ol (6) från L-lysin. (B) retrosyntes av β, γ- och β, δ-amino dioler (2S, 3S) – 1,5 – diaminopentane-2,3-diol (10) och (R, 4S2) – 1,5 – diaminopentane-2,4-diol (11) start från (5R)- hydroxy-L-lysin, och (2R, 3R) – 1,5 – diaminopentane-2,3-diol (7) start från L-lysin. Klicka här för att se en större version av denna siffra.

Start från L-lysin och dess (5R)-hydroxi derivat, rapporterar vi häri en två/tre steg, en kruka, enzymatisk förfarande att kombinera dioxygenases och PLP-DCs att få målet amino alkoholer. Tidigare syntes på laboratorieskala av målet molekylerna, metoden utvecklades vid den analytiska skalan att justera de reaktion villkor, t.ex., enzym halterna, krävs för att tillåta full konvertering av utgångsmaterial; Vi presenterar detta förfarande också.

Protocol

1. enzympreparat Express och rena proteiner som tidigare beskrivits26.Obs: Rekombinanta proteiner erhölls med följande slutliga koncentrationer: αKAO från Catenulispora acidiphila, UniProtKB-ID: C7QJ42 (KDO1), 1,35 mg/mL; ΑKAO från C. pinensis, UniProtKB-ID: C7PLM6 (KDO2), 2.29 mg/mL; PLP-DCs från S. rumirantium, UniProtKB-ID: O50657 (LDCSrum), cell gratis extrahera med totala enzym 12.44 mg/ml; PLP-DC från C. pinensis, UniProtKB…

Representative Results

Vi har tidigare rapporterat syntesen av mono – och di-hydroxy-L-lysines genom diastereoselective enzymatisk hydroxylering katalyseras av dioxygenases av järn (II) / αKAO familj (figur 1)16. För att optimera protokollet av hela kaskader presenteras här, som kombinerar ett eller två hydroxylering steg katalyseras av en αKAO följt av ett decarboxylation steg katalyseras av en PLP-DC, justerades reaktionsbetingelser för att uppfyll…

Discussion

Kirala amino alkoholer och derivat har ett brett utbud av applikationer, från kirala extraanställda för organisk syntes till farmaceutisk behandling. Flerstegssyntes för att producera amino alkoholer av konventionella organisk syntes är många, men kanske inte alltid är effektiv på grund av tråkiga skydd/deprotection steg tillsammans med en känslig kontroll av stereokemi16. En biokatalytiska tillvägagångssätt som doserar med skydd/deprotection steg och är oftast mycket stereoselektiv …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Författarna vill tacka Véronique de Berardinis för fruktbar diskussion och Alain Perret, Christine Pellé och Peggy Sirvain för teknisk support.

Materials

HEPES Sigma Aldrich H3375
L-lysine hydrochloride Sigma Aldrich L5626
(5S)-hydroxy-L-lysine Sigma Aldrich GPS NONH Out sourcing
α-ketoglutaric acid Sigma Aldrich 75892
Sodium ascorbate Sigma Aldrich A7631
Ammonium Iron(II) sulfate hexahydrate Acros 201370250
Pyridoxal phosphate (PLP) Sigma Aldrich 82870
3,4-dimercaptobutane-1,2-diol (DTT) Sigma Aldrich D0632
1-fluoro-2,4-dinitrobenzene (DNFB) Sigma Aldrich D1529
Ethanol VWR 20825.290
Sodium hydrogen carbonate Sigma Aldrich 71631
HCl 37% Sigma Aldrich 435570
HCl 0.1M Fluka 35335
Acetonitrile HiPerSolv CHROMANORM for LC-MS VWR 83640.320
2,2,2-trifluoroacetic acid VWR 153112E
Ammonia 28% VWR 21182.294
Methanol HiPerSolv CHROMANORM for LC-MS VWR 83638.32
Formic acid Acros 270480010
Phosphoric acid 85% Acros 201145000
Deuterium oxide Acros 320,710,075
NaOH Sigma Aldrich S5881
C18 HPLC column Phenomenex 00F-4601-Y0
Accela UHPLC System ThermoFisher Scientific
Accela PDA detector ThermoFisher Scientific
4mm syringe filters – 0,22µm – PVDF Merck SLGVR04NL
Single-use tuberculin syringe with ml graduation, Luer tip VWR HSWA5010.200V0
Cation exchange resin 100-200 mesh Sigma Aldrich 217506
Mixed mode cation-exchange solid-phase extraction cartridge 6 mL Waters 186000776
Extraction manifold Waters WAT200609
Rotary evaporator Büchi 531-0103
Lyophilizer alpha 1-2 LDplus Christ L083302
Micropipette 20 µL Eppendorf 3121000031
Micropipette 100 µL Eppendorf 3121000074
Micropipette 500 µL Eppendorf 3121000112
Micropipette 1000 µL Eppendorf 3121000120
300 MHz spectrometer Bruker
2 mL microtube CLEARLine CL20.002.0500
50 mL conical-bottom centrifuge tube Fischer Scientific 05-539-8
25 mL round-bottom flask 14/23 Fischer Scientific 10353331
100 mL round-bottom flask 29/32 Fischer Scientific 11786183
250 mL round-bottom flask 29/32 Fischer Scientific 11786183
250 mL erlenmeyer flask Fischerbrand 15496143

References

  1. Nestl, B. M., Hammer, S. C., Nebel, B. A., Hauer, B. New Generation of Biocatalysts for Organic Synthesis. Ang. Chem. Int. Ed. 53 (12), 3070-3095 (2014).
  2. Reetz, M. T. Biocatalysis in Organic Chemistry and Biotechnology: Past, Present, and Future. J. Am. Chem. Soc. 135 (34), 12480-12496 (2013).
  3. Turner, N. J., O’Reilly, E. Biocatalytic retrosynthesis. Nat. Chem. Biol. 9 (5), 285-288 (2013).
  4. Oroz-Guinea, I., Garcia-Junceda, E. Enzyme catalysed tandem reactions. Curr. Opin. Chem. Biol. 17 (2), 236-249 (2013).
  5. Ricca, E., Brucher, B., Schrittwieser, J. H. Multi-Enzymatic Cascade Reactions: Overview and Perspectives. Adv. Syn. Catal. 353 (13), 2239-2262 (2011).
  6. Ager, D. J., Prakash, I., Schaad, D. R. 1,2-Amino Alcohols and Their Heterocyclic Derivatives as Chiral Auxiliaries in Asymmetric Synthesis. Chem. Rev. 96 (2), 835-876 (1996).
  7. Abiko, A., Masamune, S. An improved, convenient procedure for reduction of amino acids to aminoalcohols: Use of NaBH4-H2SO4. Tet. Lett. 33 (38), 5517-5518 (1992).
  8. McKennon, M. J., Meyers, A. I., Drauz, K., Schwarm, M. A convenient reduction of amino acids and their derivatives. J. Org. Chem. 58 (13), 3568-3571 (1993).
  9. Singh, P., Samanta, K., Das, S. K., Panda, G. Amino acid chirons: a tool for asymmetric synthesis of heterocycles. Org. Biomol. Chem. 12 (33), 6297-6339 (2014).
  10. Colomer, I., et al. Aminomethylhydroxylation of alkenes: Exploitation in the synthesis of scaffolds for small molecule libraries. Bioorg. Med. Chem. 23 (11), 2736-2740 (2015).
  11. Steinreiber, J., et al. Synthesis of Aromatic 1,2-Amino Alcohols Utilizing a Bienzymatic Dynamic Kinetic Asymmetric Transformation. Adv. Syn. Catal. 349 (8-9), 1379-1386 (2007).
  12. Steinreiber, J., et al. Overcoming Thermodynamic and Kinetic Limitations of Aldolase-Catalyzed Reactions by Applying Multienzymatic Dynamic Kinetic Asymmetric Transformations. Ang. Chem. Int. Ed. 46 (10), 1624-1626 (2007).
  13. Kohls, H., et al. Selective Access to All Four Diastereomers of a 1,3-Amino Alcohol by Combination of a Keto Reductase- and an Amine Transaminase-Catalysed Reaction. Adv. Syn. Catal. 357 (8), 1808-1814 (2015).
  14. Sehl, T., Maugeri, Z., Rother, D. Multi-step synthesis strategies towards 1,2-amino alcohols with special emphasis on phenylpropanolamines. J. Mol. Cat. B: Enzymatic. 114, 65-71 (2015).
  15. Martinez, S., Hausinger, R. P. Catalytic Mechanisms of Fe(II)- and 2-Oxoglutarate-dependent Oxygenases. J. Biol. Chem. 290 (34), 20702-20711 (2015).
  16. Baud, D., et al. Synthesis of Mono‐and Dihydroxylated Amino Acids with New α‐Ketoglutarate‐Dependent Dioxygenases: Biocatalytic Oxidation of C-H Bonds. ChemCatChem. , (2014).
  17. Suzuki, H., Kurihara, S., Kusano, T., Suzuki, H. Ch. 4. Polyamines. 4, 47-59 (2015).
  18. Kind, S., Wittmann, C. Bio-based production of the platform chemical 1,5-diaminopentane. Appl. Microbiol. Biotechnol. 91 (5), 1287-1296 (2011).
  19. Schneider, J., Wendisch, V. F. Biotechnological production of polyamines by bacteria: recent achievements and future perspectives. Appl. Microbiol. Biotechnol. 91 (1), 17-30 (2011).
  20. Qian, Z. -. G., Xia, X. -. X., Lee, S. Y. Metabolic engineering of Escherichia coli for the production of cadaverine: A five carbon diamine. Biotechnol. Bioeng. 108 (1), 93-103 (2011).
  21. Shin, J. H., Lee, S. Y. Metabolic engineering of microorganisms for the production of L-arginine and its derivatives. Microb. Cell. Fact. 13, (2014).
  22. Nguyen, A., Schneider, J., Reddy, G., Wendisch, V. Fermentative Production of the Diamine Putrescine: System Metabolic Engineering of Corynebacterium Glutamicum. Metabolites. 5 (2), 211 (2015).
  23. Kidron, H., Repo, S., Johnson, M. S., Salminen, T. A. Functional Classification of Amino Acid Decarboxylases from the Alanine Racemase Structural Family by Phylogenetic Studies. Mol. Biol. Evol. 24 (1), 79-89 (2007).
  24. Takatsuka, Y., Onoda, M., Sugiyama, T., Muramoto, K., Tomita, T., Kamio, Y. Novel Characteristics of Selenomonas ruminantium Lysine Decarboxylase Capable of Decarboxylating Both L-Lysine and L-Ornithine. Biosci. Biotechnol. Biochem. 63 (6), 1063-1069 (1999).
  25. Takatsuka, Y., Tomita, T., Kamio, Y. Identification of the Amino Acid Residues Conferring Substrate Specificity upon Selenomonas ruminantium Lysine Decarboxylase. Biosci. Biotechnol. Biochem. 63 (10), 1843-1846 (1999).
  26. Baud, D., et al. Biocatalytic Approaches towards the Synthesis of Chiral Amino Alcohols from Lysine: Cascade Reactions Combining alpha-Keto Acid Oxygenase Hydroxylation with Pyridoxal Phosphate- Dependent Decarboxylation. Adv. Syn. Catal. 359 (9), 1563-1569 (2017).
  27. Ilisz, I., Berkecz, R., Peter, A. Application of chiral derivatizing agents in the high-performance liquid chromatographic separation of amino acid enantiomers: a review. J. Pharm. Biomed. Anal. 47 (1), 1-15 (2008).
  28. . Organic Chemistry. Nuclear Magnetic Resonance (NMR) Spectroscopy Available from: https://www.jove.com/science-education/5680/nuclear-magnetic-resonance-nmr-spectroscopy (2017)
  29. Hibi, M., Ogawa, J. Characteristics and biotechnology applications of aliphatic amino acid hydroxylases belonging to the Fe(II)/alpha-ketoglutarate-dependent dioxygenase superfamily. Appl. Microbiol. Biotechnol. 98 (9), 3869-3876 (2014).
  30. Hüttel, W. Biocatalytic Production of Chemical Building Blocks in Technical Scale with α-Ketoglutarate-Dependent Dioxygenases. Chem. Ing. Tec. 85 (6), 809-817 (2013).
  31. Kourist, R., Guterl, J. -. K., Miyamoto, K., Sieber, V. Enzymatic Decarboxylation-An Emerging Reaction for Chemicals Production from Renewable Resources. ChemCatChem. 6 (3), 689-701 (2014).
  32. Lee, J., Michael, A. J., Martynowski, D., Goldsmith, E. J., Phillips, M. A. Phylogenetic diversity and the structural basis of substrate specificity in the beta/alpha-barrel fold basic amino acid decarboxylases. J. Biol. Chem. 282 (37), 27115-27125 (2007).
  33. Porter, J. L., Rusli, R. A., Ollis, D. L. Directed Evolution of Enzymes for Industrial Biocatalysis. ChemBiochem. 17 (3), 197-203 (2016).
check_url/56926?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Fossey-Jouenne, A., Vergne-Vaxelaire, C., Zaparucha, A. Enzymatic Cascade Reactions for the Synthesis of Chiral Amino Alcohols from L-lysine. J. Vis. Exp. (132), e56926, doi:10.3791/56926 (2018).

View Video