Summary

Tillverkning av tunga extracellulära Matrix och beredning av tungan skivepitelcancer In Vitro

Published: June 20, 2018
doi:

Summary

Här visas en metod för beredning av tungan extracellulärmatrix (TEM) med effektiv decellularization. TEM kan användas som funktionella ställningar för återuppbyggnaden av en tunga skivepitelcancer (TSCC) modell statiska eller rörs kultur villkor.

Abstract

För att konstruera en effektiv och realistisk modell för tunga skivepitelcancer cell carcinoma (TSCC) in vitro-, skapades metoderna att producera cell-lösa tungan extracellulär matrix (TEM) som ger funktionella ställningar för TSCC konstruktion. TEM ger en in vitro- nisch för celltillväxt, differentiering och cellmigration. Mikrostrukturer native extracellulär matrix (ECM) och biokemiska kompositioner kvar i cell-lösa matrisen ger vävnadsspecifika nischer för att förankra celler. Tillverkning av TEM kan realiseras av deoxyribonuclease (DNase) matsmältning tillsammans med en allvarlig av organiska eller oorganiska förbehandling. Detta protokoll är lätt att använda och säkerställer hög verkningsgrad för decellularization. TEM visade gynnsamma cytocompatibility för TSCC celler under statiska eller rörs odlingsbetingelser, som möjliggör byggandet av TSCC modellen. En self-made bioreaktor användes också för ihållande rörs villkoret för cellodling. Rekonstruerade TSCC använder TEM visade de kännetecken och egenskaper som liknar kliniska TSCC histopatologi, vilket tyder på en potential i TSCC forskning.

Introduction

Tungan har olika viktiga funktioner, såsom deglutition, artikulation och provsmakning. Således, nedsatt tungan har stor inverkan på patienternas livskvalitet1. Den vanligaste malignitet i munhålan är tungan skivepitelcancer (TSCC), vilket inträffar vanligtvis hos människor som dricker alkohol eller röker tobak2.

Under de senaste åren har små framsteg uppnåtts i grundforskning på TSCC. Bristen på effektiv in vitro- forskning modeller förblir en av de största problemen. Således visar den extracellulär matrixen (ECM) sig vara en möjlig lösning. Eftersom ECM är ett komplext nätverk ramen består av mycket organiserade matrix komponenter, skulle byggnadsställning material med en ECM-liknande struktur och sammansättning vara behöriga för cancerforskning. Cell-lösa ECM kan perfekt ge nischen för cellerna från samma ursprung i vitro, som visar sig vara den mest betydande fördelen med ECM.

ECM kan behållas med cellulära komponenter tas bort från vävnader genom den decellularization som använder tvättmedel och enzymer. Olika ECM komponenter, inklusive kollagen, Fibronektin och laminin i cell-lösa matris ger en native-vävnad-liknande närmiljön för odlade celler, främja den överlevnad, proliferation och differentiering av celler3. Immunogeniciteten för transplantation kan dessutom reduceras till en minimal nivå med avsaknad av cellulära komponenter i ECM.

Hittills, har framställningsmetoder för cell-lösa ECM prövats i olika vävnader och organ, såsom hjärta4,5,6,7, lever8,9,10 ,11, lung12,13,14,15,16,17och njure18,19 , 20. men ingen relevant forskning har hittas på liknande arbete i tungan till bäst av vår kunskap.

I denna studie var cell-lösa tungan extracellulär matrix (TEM) tillverkade både effektivt och billigt av en rad fysiska, kemiska och enzymatisk behandling. Sedan användes TEM att recapitulate TSCC i vitro, visar en lämplig simulering för TSCC beteende och utveckling. TEM har god biokompatibilitet samt förmågan att vägleda cellerna till vävnadsspecifika nisch, vilket indikerar att TEM kan ha stor potential i TSCC forskning3. I protokollet visas här ger ett val för forskare som studerar patogenesen eller kliniska behandlingar av TSCC.

Protocol

Alla djur arbete utfördes enligt lagen om djurskydd, institutionella riktlinjer och godkänts av institutionella djur vård och användning kommittén, Sun Yat-sen University. 1. beredning av TEM Kör möss genom cervikal dislokation och ta bort tungor med sterila kirurgiska sax och pincett. Fördjupa tungor i 75% etanol för 3 min och sedan sätta varje tungan i en 1,5 mL Eppendorf (EP) rör med 1 mL av 10 mM steril fosfat buffrad lösning (PBS).Obs: Koncentrationen a…

Representative Results

Detta protokoll för beredning av TEM visar sig vara effektiva och lämpliga. TEM visade perfekt decellularization jämfört med modersmål vävnader. Effekten av decellularization bekräftades av hematoxylin-eosin (han) färgning (figur 1A-B). Han färgning resultat visade fullständig försvinnandet av nukleär färgning i TEM (figur 1B). Dessutom visade DNA innehåll kvantifiering från tidiga…

Discussion

Ett väl etablerat protokoll för cell-lösa ECM fabrication bör behålla infödda ECM sammansättning medan du tar bort cellulära komponenter i vävnader nästan fullständigt21. Trots för närvarande rapporterade decellularization protokoll som kräver perfusion via kärlsystemet att ta cellulära material av konvektiv transport, antogs mekaniska agitation här, känd som en traditionell enkel och billig metod22 , 23 , <sup…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Författarna erkänner stöd av forskningsanslag från National Natural Science Foundation Kina (31371390), programmet för staten High-Tech utvecklingsprojektet (2014AA020702) och programmet för Guangdong vetenskap och teknik (2016B030231001).

Materials

C57-BL/6J mice Sun Yat-sen University Laboratory Animal Center
Ethanol Guangzhou Chemical Reagent Factory HB15-GR-2.5L
Sodium chloride Sangon Biotech A501218
Potassium chloride Sangon Biotech A100395
Dibasic Sodium Phosphate Guangzhou Chemical Reagent Factory BE14-GR-500G
Potassium Phosphate Monobasic  Sangon Biotech A501211
1.5 mL EP tube Axygen MCT-150-A
Ultra-low temperature freezer  Thermo Fisher Scientific
3.5 cm cell culture dish Thermo Fisher Scientific 153066
6 cm cell culture dish Greiner 628160
Triton X-100 Sigma-Aldrich V900502
Calcium chloride Sigma-Aldrich 746495
Magnesium chloride Sigma-Aldrich 449164
DNase Sigma-Aldrich D5025
Magnesium sulphate Sangon Biotech A601988
Glucose Sigma-Aldrich 158968
Sodium bicarbonate Sigma-Aldrich S5761
Ampicillin Sigma-Aldrich A9393
Kanamycin Sigma-Aldrich PHR1487
Surgical suture Shanghai Jinhuan
250 mL wide-mouth bottle SHUNIU 1407
Magnetic stirrer AS ONE 1-4602-32
CO2 incubator SHEL LAB SCO5A
10 mL syringe Hunan Pingan
50 mL centrifuge tube Greiner 227270
Cal27 cell Chinese Academy of Science, Shanghai Cell Bank Tongue squamous cell carcinoma cell line
U2OS cell Chinese Academy of Science, Shanghai Cell Bank Human osteosarcoma cell line
DMEM/F12 Sigma-Aldrich D0547
Sodium pyruvate Sigma-Aldrich P5280
Hepes free acid BBI A600264
FBS Hyclone SH30084.03
4 °C fridge Haier
Water purifier ELGA
Hemocytometer BLAU 717805

References

  1. Elfring, T., Boliek, C. A., Winget, M., Paulsen, C., Seikaly, H., Rieger, J. M. The relationship between lingual and hypoglossal nerve function and quality of life in head and neck cancer. J. Oral Rehabil. 41, 133-140 (2014).
  2. Patel, S. C., et al. Increasing incidence of oral tongue squamous cell carcinoma in young white women, Age 18 to 44 Years. J. Clin. Oncol. 29, 1488-1494 (2011).
  3. Zhao, L., Huang, L., Yu, S., Zheng, J., Wang, H., Zhang, Y. Decellularized tongue tissue as an in vitro. model for studying tongue cancer and tongue regeneration. Acta Biomaterialia. 58, 122-135 (2017).
  4. Ng, S. L., Narayanan, K., Gao, S., Wan, A. C. Lineage restricted progenitors for the repopulation of decellularized heart. Biomaterials. 32, 7571-7580 (2011).
  5. Ott, H. C., et al. Perfusion-decellularized matrix: using nature’s platform to engineer a bioartificial heart. Nat. Med. 14, 213-221 (2008).
  6. Remlinger, N. T., Wearden, P. D., Gilbert, T. W. Procedure for decellularization of porcine heart by retrograde coronary perfusion. J. Vis. Exp. (6), e50059 (2012).
  7. Wainwright, J. M., et al. Preparation of cardiac extracellular matrix from an intact porcine heart. Tissue Eng. Part C-ME. 16, 525-532 (2010).
  8. Baptista, P. M., Siddiqui, M. M., Lozier, G., Rodriguez, S. R., Atala, A., Soker, S. The use of whole organ decellularization for the generation of a vascularized liver organoid. Hepatology. 53, 604-617 (2011).
  9. Shupe, T., Williams, M., Brown, A., Willenberg, B., Petersen, B. E. Method for the decellularization of intact rat liver. Organogenesis. 6, 134-136 (2010).
  10. Soto-Gutierrez, A., et al. A whole-organ regenerative medicine approach for liver replacement. Tissue Eng. Part C-ME. 17, 677-686 (2011).
  11. Uygun, B. E., et al. Organ reengineering through development of a transplantable recellularized liver graft using decellularized liver matrix. Nat. Med. 16, 814-820 (2010).
  12. Bonvillain, R. W., et al. A nonhuman primate model of lung regeneration: detergent-mediated decellularization and initial in vitro recellularization with mesenchymal stem cells. Tissue Eng. Pt A. 18, 2437-2452 (2012).
  13. Daly, A. B., et al. Initial binding and recellularization of decellularized mouse lung scaffolds with bone marrow-derived mesenchymal stromal cells. Tissue Eng. Pt A. 18, 1-16 (2012).
  14. Ott, H. C., et al. Regeneration and orthotopic transplantation of a bioartificial lung. Nat. Med. 16, 927-933 (2010).
  15. Petersen, T. H., et al. Tissue-engineered lungs for in vivo implantation. Science. 329, 538-541 (2010).
  16. Price, A. P., England, K. A., Matson, A. M., Blazar, B. R., Panoskaltsis-Mortari, A. Development of a decellularized lung bioreactor system for bioengineering the lung: the matrix reloaded. Tissue Eng. Pt A. 16, 2581-2591 (2010).
  17. Wallis, J. M., et al. Comparative assessment of detergent-based protocols for mouse lung de-cellularization and re-cellularization. Tissue Eng. Part C-ME. 18, 420-432 (2012).
  18. Ross, E. A., et al. Embryonic stem cells proliferate and differentiate when seeded into kidney scaffolds. J. Am. Soc. Nephrol. 20, 2338-2347 (2009).
  19. Song, J. J., Guyette, J. P., Gilpin, S., Gonzalez, G., Vacanti, J. P., Ott, H. C. Regeneration and experimental orthotopic transplantation of a bioengineered kidney. Nat. Med. 19, 646-651 (2013).
  20. Sullivan, D. C., et al. Decellularization methods of porcine kidneys for whole organ engineering using a high-throughput system. Biomaterials. 33, 7756-7764 (2012).
  21. Soto-Gutierrez, A., Wertheim, J. A., Ott, H. C., Gilbert, T. W. Perspectives on whole-organ assembly: moving toward transplantation on demand. J. Clin. Invest. 122, 3817-3823 (2012).
  22. Song, J. J., Ott, H. C. Organ engineering based on decellularized matrix scaffolds. Trends Mol. Med. 17, 424-432 (2011).
  23. Badylak, S. F., Taylor, D., Uygun, K. Whole-organ tissue engineering: decellularization and recellularization of three-dimensional matrix scaffolds. Annu. Rev. Biomed. Eng. 13, 27-53 (2011).
  24. Shamis, Y., et al. Organ-specific scaffolds for in vitro expansion, differentiation, and organization of primary lung cells. Tissue Eng. Part C-ME. 17, 861-870 (2011).
  25. Nakayama, K. H., Batchelder, C. A., Lee, C. I., Tarantal, A. F. Decellularized rhesus monkey kidney as a three-dimensional scaffold for renal tissue engineering. Tissue Eng. Pt A. 16, 2207-2216 (2010).
  26. Cortiella, J., et al. Influence of acellular natural lung matrix on murine embryonic stem cell differentiation and tissue formation. Tissue Eng. Pt A. 16, 2565-2580 (2010).

Play Video

Cite This Article
Yao, Y., Lin, W., Zhang, Y. Fabrication of Tongue Extracellular Matrix and Reconstitution of Tongue Squamous Cell Carcinoma In Vitro. J. Vis. Exp. (136), e57235, doi:10.3791/57235 (2018).

View Video