Summary

उंनमनी Auris लंग्स वोल्टेज क्लैंप शर्तों के तहत स्तनधारी Neuromuscular ट्रांसमिशन की परीक्षा के लिए तैयारी

Published: May 05, 2018
doi:

Summary

इस पत्र में वर्णित प्रोटोकॉल माउस का उपयोग करता है उंनमनी auris लंग्स (लाल) मांसपेशी को रिकॉर्ड करने के लिए सहज और तंत्रिका पैदा की postsynaptic क्षमता (वर्तमान दबाना) और धाराओं (वोल्टेज-दबाना) neuromuscular जंक्शन पर. इस तकनीक का उपयोग सामांय और रोग की स्थिति के तहत synaptic संचरण के तंत्र में महत्वपूर्ण अंतर्दृष्टि प्रदान कर सकते हैं ।

Abstract

इस प्रोटोकॉल के लिए एक तकनीक का वर्णन के तहत neuromuscular जंक्शन से synaptic संचरण रिकॉर्ड वर्तमान दबाना और वोल्टेज-क्लैंप शर्तों । उंनमनी auris लंग्स (लाल) की एक पूर्व vivo तैयारी का प्रयोग किया जाता है, क्योंकि यह एक पतली मांसपेशी कि मोटर microelectrode में endplate के लिए neuromuscular जंक्शन के आसान दृश्य प्रदान करता है । इस विधि सहज लघु endplate क्षमता और धाराओं की रिकॉर्डिंग के लिए अनुमति देता है (mEPPs और mEPCs), तंत्रिका पैदा की endplate क्षमता और धाराओं (EPPs और ईपीसी), साथ ही मोटर endplate के झिल्ली गुण. इस विधि से प्राप्त परिणाम quantal सामग्री (QC), पुटिका रिलीज साइटों की संख्या (n), पुटिका रिहाई (पीरिलायंस एनर्जी), synaptic सुविधा और अवसाद की संभावना, साथ ही मांसपेशी झिल्ली समय लगातार (τ शामिल m) और इनपुट प्रतिरोध । मानव रोग के माउस मॉडल के लिए इस तकनीक के आवेदन रोग राज्यों में प्रमुख विकृतियों को उजागर कर सकते हैं और उपंयास उपचार रणनीतियों की पहचान में मदद । पूरी तरह से वोल्टेज-एक एकल synapse clamping द्वारा, इस विधि वर्तमान में उपलब्ध synaptic संचरण का सबसे विस्तृत विश्लेषण में से एक प्रदान करता है ।

Introduction

neuromuscular जंक्शन पर synaptic ट्रांसमिशन का अध्ययन तंत्रिका और कंकाल पेशी प्रणालियों के बीच गतिशील रिश्ते में अंतर्दृष्टि प्रदान करता है और synaptic फिजियोलॉजी की जांच के लिए एक उत्कृष्ट मॉडल है । उंनमनी auris लंग्स (लाल) एक पतली मांसपेशी है, neuromuscular जंक्शनों के लिए अनुमति देता है आसानी से visualized । पिछले रिपोर्टों synaptic दवाओं और विषाक्त पदार्थों की जांच करने के लिए लाल का उपयोग करने की सुविधा का वर्णन किया है और लाल1,2के कंकाल मांसपेशी फाइबर प्रकार विशेषताओं की विशेषता है । कई अध्ययनों से लाल neuromuscular फिजियोलॉजी3,4,5,6,7,8की जांच करने के लिए इस्तेमाल किया है । इलेक्ट्रोफिजियोलॉजी के लिए, आसानी से लाल neuromuscular जंक्शनों का निरीक्षण करने की क्षमता मोटर endplate में microelectrodes के सटीक स्थान के लिए अनुमति देता है और बहुत synaptic संचरण रिकॉर्डिंग में अंतरिक्ष दबाना मुद्दों को कम कर देती है । मांसपेशी झिल्ली गुण की वर्तमान दबाना रिकॉर्डिंग, जैसे झिल्ली समय स्थिरांक (τm) और इनपुट प्रतिरोध (Rin) आसानी से प्राप्त कर रहे हैं । इसके अलावा, इन संपत्तियों एक ही मांसपेशी neuromuscular संचरण रिकॉर्ड करने के लिए इस्तेमाल किया फाइबर से मापा जा सकता है, synaptic समारोह की मांसपेशी झिल्ली संपत्तियों के लिए एक सीधी तुलना के लिए अनुमति देता है । इन आंकड़ों का विश्लेषण कई neuromuscular रोगों और बदल गतिविधि के राज्यों के भौतिक तंत्र में महत्वपूर्ण अंतर्दृष्टि प्रदान कर सकते हैं ।

तकनीक का एक महत्वपूर्ण पहलू यहां वर्णित वोल्टेज का उपयोग है-synaptic रिकॉर्डिंग के लिए दबाना, जो गैर के अधीन नहीं है रैखिकता वर्तमान दबाना में सामना करना पड़ा और मांसपेशियों की झिल्ली गुणों से स्वतंत्र हैं । वोल्टेज का उपयोग करने के लाभ के रूप में वर्तमान-दबाना neuromuscular संचरण की जांच के लिए विरोध दबाना 1950 के दशक में अग्रणी प्रयासों द्वारा स्थापित किया गया था9। के तहत वर्तमान दबाना, EPPs कि 10-15 से अधिक है एमवी आयाम में mEPP आयाम के एक रैखिक उत्पाद नहीं है9। उदाहरण के लिए, यदि औसत mEPP है 1 mv, 5 mv की एक EPP के उत्पाद के लिए माना जा सकता 5 mEPPs (QC of 5); जबकि, ४० एमवी का एक EPP ४० से अधिक mEPPs का उत्पाद होगा । इस गैर बड़ा EPPs में रैखिकता होता है क्योंकि EPP, जो acetylcholine रिसेप्टर (~-10 एमवी) के लिए झिल्ली की क्षमता और संतुलन क्षमता के बीच अंतर है के लिए ड्राइविंग बल, काफी बड़ी EPPs के दौरान कम हो जाती है । स्नायु झिल्ली क्षमता वोल्टेज दबाना प्रयोगों के दौरान परिवर्तन नहीं करता है, क्योंकि यह समस्या वोल्टेज दबाना प्रयोगों में बचा है । एक खामी यह है कि वोल्टेज दबाना प्रयोगों तकनीकी रूप से और अधिक मुश्किल वर्तमान दबाना रिकॉर्डिंग से पूरा करने के लिए कर रहे हैं । मन में इस के साथ, McLachlan और मार्टिन एक सीधा गणितीय सुधार है कि गैर के लिए खातों में वर्तमान में रैखिकता-EPPs10की रिकॉर्डिंग दबाना विकसित । सुधार अच्छी तरह से काम11,12,13, लेकिन महत्वपूर्ण बात यह है कि मांसपेशी झिल्ली गुण बाधित नहीं किया गया है मान ।

मांसपेशी झिल्ली गुण विशेष रूप से अगर स्थितियों या रोग राज्यों है कि मांसपेशियों को बाधित अध्ययन पर विचार करने के लिए महत्वपूर्ण हैं । उदाहरण के लिए, Huntington रोग के R6/2 ट्रांसजेनिक मॉडल से कंकाल की मांसपेशी आराम क्लोराइड और पोटेशियम धाराओं में एक प्रगतिशील कमी के कारण hyperexcitable है14,15. एक परिणाम के रूप में, mEPPs और EPPs R6/2 कंकाल की मांसपेशी में परिलक्षित कर रहे हैं । निश्चित रूप से, अतिरिक्त कारकों mEPPs और EPPs बदल सकते हैं । Huntington की बीमारी चूहों के एक अलग मॉडल के साथ काम (R6/EPPs में परिवर्तन पाया गया है कि जाल प्रोटीन से संबंधित लग रहा था8। बदल neuromuscular संचरण के कारण तंत्र का आकलन करने के लिए, यह एक वोल्टेज-दबाना का उपयोग करके बदल मांसपेशी झिल्ली संपत्तियों के प्रभाव को खत्म करने के लिए फायदेमंद होगा । हाल के एक अध्ययन में, R6/2 neuromuscular संचरण दोनों वर्तमान और वोल्टेज-क्लैंप शर्तों के तहत अध्ययन किया गया था यहां वर्णित तकनीक का उपयोग कर । मोटर endplates की पूरी तरह वोल्टेज थे-से कम 1% त्रुटि के साथ clamped endplate की लंबाई स्थिरांक के भीतर दो microelectrodes रखकर16। यह दिखाया गया है कि वोल्टेज-दबाना और सही वर्तमान दबाना रिकॉर्ड R6 में neuromuscular संचरण के विषम माप उपज/ यह प्रकाश डाला गया कि यह गैर के लिए EPPs सही करने के लिए मुश्किल हो सकता है रैखिकता अगर मांसपेशी झिल्ली गुण बदल दिया गया है और वोल्टेज दबाना रिकॉर्ड है कि मांसपेशियों की झिल्ली गुणों से स्वतंत्र हैं प्राप्त करने के लाभों से पता चलता है. यहां प्रस्तुत प्रोटोकॉल की स्थिति या रोग राज्यों है कि synaptic संचरण और postsynaptic झिल्ली संपत्तियों को प्रभावित की जांच के लिए आदर्श है ।

Protocol

राइट स्टेट यूनिवर्सिटी की एनिमल केयर एंड फीमेल कमेटी के अनुसार सभी पशु प्रक्रियाओं का प्रदर्शन किया गया । 1. माउस इच्छामृत्यु एक धुएं के हुड में, एक हवा बद गिलास anesthetizing चैंबर में माउस जगह है …

Representative Results

चित्रा 8 वर्तमान दालों का एक उदाहरण से पता चलता है (चित्रा 8A) और वोल्टेज प्रतिक्रियाओं (चित्रा 8B) एक लाल फाइबर से वर्तमान के तहत-क्लैंप एक 12 सप्ताह पुराने जंग?…

Discussion

यहां वर्णित है तैयारी और वर्तमान या वोल्टेज-दबाना शर्तों के तहत neuromuscular संचरण की माप के लिए माउस लाल मांसपेशी का उपयोग करें । लाल को बाहर निकालने के लिए विचार करने के लिए कई महत्वपूर्ण बिंदु हैं । इलेक्ट्?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

हम संपादकीय टिप्पणी के लिए डॉ मार्क एम रिच और डैनियल मिरांडा धंयवाद, इस तकनीक की स्थापना में मदद करने के लिए अहमद Khedraki, और राइट राज्य विश्वविद्यालय वित्तीय सहायता के लिए (A.A.V. के लिए स्टार्टअप कोष) ।

Materials

Olympus Compound Microscope Olympus BX51WI
10x Objective Olympus UMPLFLN10XW
40x Objective Olympus LUMPLFLN40XW
Borosilicate Glass Sutter Instruments BF150-86-7.5
CCD Camera Santa Barbara Instruments Group ST-7XMEI
Axoclamp 900A Amplifier Molecular Devices 2500‐0179  
Mater-9 Pulse Generator AMPI
Iso-flex Stimulus Isolator AMPI
pCLAMP 10 Data Acquisition and Analysis Software Molecular Devices 1-2500-0180
Concentric Bipolar Electrode FHC CBDSH75
Ball-joint Manipulator Narishige 
Non-metalic Syringes 34 Gauge World Precision Instruments MF34G-5
Nikon Stereomicroscope Nikon SMZ800N
No. 5 Forceps Fine Science Tools
Spring Scissors Fine Science Tools 15006-09
No. 2 Forceps Roboz RS-5Q41
Microdissecting Scissors Roboz RS-5912SC
Sylgard 184 Silicone Elastomer Kit Dow Corning 2404019862
Hair Removal Cream Nair
Grass SD9 Stimulator Grass Medical
Model P-1000 Micropipette Puller Sutter Instruments P-1000
Axon Digidata 1550 Low-noise Data Acuisition System Molecular Devices
Low Pass Bessell Filter Warner Instrument Corp. LPF-8
Left-handed Micromanipulator Siskiyou Corp. MX1641/45DL
Right-handed Micromanipulator Siskiyou Corp. MX1641/45DR
Single Motion Controler Siskiyou Corp. MC100e
Crossed Roller Micromanipulator Siskiyou Corp. MX1641R This was added to the Z-axis of the Left and Right-handed micromanipulators to allow the z axis to be motorized. This custom set-up is cheaper and less bulky than buying a 4-axis motorized micromanipulator. It also allows us to control both micromanipulators with one controller
All chemicals were orded from Fisher except,
BTS Toronto Research Chemicals B315190
CTX Alomone Labs C-270
4-Di-2-Asp Molecular Probes Molecular probes is no longer a company. Now ordered through Fisher

References

  1. Angaut-Petit, D., Molgo, J., Connold, A. L., Faille, L. The levator auris longus muscle of the mouse: a convenient preparation for studies of short- and long-term presynaptic effects of drugs or toxins. Neurosci Lett. 82 (1), 83-88 (1987).
  2. Erzen, I., Cvetko, E., Obreza, S., Angaut-Petit, D. Fiber types in the mouse levator auris longus muscle: a convenient preparation to study muscle and nerve plasticity. J Neurosci Res. 59 (5), 692-697 (2000).
  3. Bertone, N. I., et al. Carbonic anhydrase inhibitor acetazolamide shifts synaptic vesicle recycling to a fast mode at the mouse neuromuscular junction. Synapse. , (2017).
  4. Garcia-Chacon, L. E., Nguyen, K. T., David, G., Barrett, E. F. Extrusion of Ca2+ from mouse motor terminal mitochondria via a Na+-Ca2+ exchanger increases post-tetanic evoked release. J Physiol. 574 (Pt 3), 663-675 (2006).
  5. Murray, L. M., et al. Selective vulnerability of motor neurons and dissociation of pre- and post-synaptic pathology at the neuromuscular junction in mouse models of spinal muscular atrophy. Hum Mol Genet. 17 (7), 949-962 (2008).
  6. Nadal, L., et al. Presynaptic muscarinic acetylcholine autoreceptors (M1, M2 and M4 subtypes), adenosine receptors (A1 and A2A) and tropomyosin-related kinase B receptor (TrkB) modulate the developmental synapse elimination process at the neuromuscular junction. Mol Brain. 9 (1), 67 (2016).
  7. Rousse, I., St-Amour, A., Darabid, H., Robitaille, R. Synapse-glia interactions are governed by synaptic and intrinsic glial properties. Neuroscience. 167 (3), 621-632 (2010).
  8. Rozas, J. L., Gomez-Sanchez, L., Tomas-Zapico, C., Lucas, J. J., Fernandez-Chacon, R. Increased neurotransmitter release at the neuromuscular junction in a mouse model of polyglutamine disease. J Neurosci. 31 (3), 1106-1113 (2011).
  9. Takeuchi, A., Takeuchi, N. Further analysis of relationship between end-plate potential and end-plate current. J Neurophysiol. 23, 397-402 (1960).
  10. McLachlan, E. M., Martin, A. R. Non linear summation of end plate potentials in the frog and mouse. The Journal of Physiology. 311 (1), 307-324 (1981).
  11. Obis, T., et al. The novel protein kinase C epsilon isoform modulates acetylcholine release in the rat neuromuscular junction. Mol Brain. 8 (1), 80 (2015).
  12. Silveira, P. E., et al. Ryanodine and inositol triphosphate receptors modulate facilitation and tetanic depression at the frog neuromuscular junction. Muscle Nerve. 52 (4), 623-630 (2015).
  13. Wood, S. J., Slater, C. R. Safety factor at the neuromuscular junction. Prog Neurobiol. 64 (4), 393-429 (2001).
  14. Miranda, D. R., et al. Progressive Cl- channel defects reveal disrupted skeletal muscle maturation in R6/2 Huntington’s mice. J Gen Physiol. 149 (1), 55-74 (2017).
  15. Waters, C. W., Varuzhanyan, G., Talmadge, R. J., Voss, A. A. Huntington disease skeletal muscle is hyperexcitable owing to chloride and potassium channel dysfunction. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 110 (22), 9160-9165 (2013).
  16. Khedraki, A., et al. Depressed Synaptic Transmission and Reduced Vesicle Release Sites in Huntington’s Disease Neuromuscular Junctions. Journal of Neuroscience. 37 (34), 8077-8091 (2017).
  17. Greene, E. C. . The anatomy of the rat. , (1955).
  18. Magrassi, L., Purves, D., Lichtman, J. W. Fluorescent probes that stain living nerve terminals. J Neurosci. 7 (4), 1207-1214 (1987).
  19. Jack, J. J. B., Noble, D., Tsien, R. W. . Electric current flow in excitable cells. , (1983).
  20. Voss, A. A. Extracellular ATP inhibits chloride channels in mature mammalian skeletal muscle by activating P2Y(1) receptors. Journal of Physiology-London. 587 (23), 5739-5752 (2009).
  21. Albuquerque, E. X., McIsaac, R. J. Fast and slow mammalian muscles after denervation. Experimental Neurology. 26 (1), 183-202 (1970).
  22. Santafe, M. M., Urbano, F. J., Lanuza, M. A., Uchitel, O. D. Multiple types of calcium channels mediate transmitter release during functional recovery of botulinum toxin type A-poisoned mouse motor nerve terminals. Neuroscience. 95 (1), 227-234 (2000).
  23. Gaffield, M. A., Betz, W. J. Synaptic vesicle mobility in mouse motor nerve terminals with and without synapsin. J Neurosci. 27 (50), 13691-13700 (2007).
  24. Zhang, Z. S., Nguyen, K. T., Barrett, E. F., David, G. Vesicular ATPase Inserted into the Plasma Membrane of Motor Terminals by Exocytosis Alkalinizes Cytosolic pH and Facilitates Endocytosis. Neuron. 68 (6), 1097-1108 (2010).
check_url/57482?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Burke, S. R. A., Reed, E. J., Romer, S. H., Voss, A. A. Levator Auris Longus Preparation for Examination of Mammalian Neuromuscular Transmission Under Voltage Clamp Conditions. J. Vis. Exp. (135), e57482, doi:10.3791/57482 (2018).

View Video