Summary

Å gjøre Testing og bruke kalium Ion selektive Microelectrodes i vev skiver av voksen hjernen

Published: May 07, 2018
doi:

Summary

Kalium ioner bidrar til hvile membran potensialet i celler og ekstracellulære K+ konsentrasjon er en viktig regulator av mobilnettet excitability. Beskriver vi hvordan å gjøre, kalibrere og bruke monopolar K+-selektiv microelectrodes. Med slike elektrodene kan måling av elektrisk vakte K+ konsentrasjon dynamikk i voksen hippocampus skiver.

Abstract

Kalium ioner betydelig bidrar til hvile membran potensialet i celler, og derfor ekstracellulære K+ konsentrasjon er en viktig regulator av cellen excitability. Endret konsentrasjoner ekstracellulære K+ påvirker hvile membran potensial og mobilnettet excitability av skiftende likevekt mellom lukket, åpen og deaktivert for spenningen-avhengige ionekanaler som ligger til grunn for handlingen potensial initiering og gjennomføring. Derfor er det verdifullt å måle direkte ekstracellulære K+ dynamikk i helse og syke tilstander. Her beskriver vi hvordan å gjøre, kalibrere og bruke monopolar K+-selektiv microelectrodes. Vi satt dem i voksen hippocampus hjernen skiver å måle elektrisk vakte K+ konsentrasjon dynamics. Forstandig bruk av slike elektrodene er en viktig del av verktøysett for å evaluere mobilnettet og Biofysiske mekanismer som styrer ekstracellulære K+ konsentrasjoner i nervesystemet.

Introduction

Kalium ion konsentrasjoner er strengt regulert i hjernen, og deres svingninger utøver en mektig innflytelse på hvile membran potensialet i alle celler. I lys av disse viktige bidrag er et viktig mål for biologi å fastslå mobilnettet og Biofysiske mekanismene som brukes til å regulere tett konsentrasjonen av K+ på ekstracellulære plass i ulike organer av kroppen1 , 2. et viktig krav i disse studiene er muligheten til å måle K+ konsentrasjoner nøyaktig. Selv om mange komponenter som bidrar til kalium homeostase i hjernen i friske og syke tilstander har blitt identifisert3,4,5, har ytterligere fremgang blitt redusert på grunn av spesialiserte natur forbereder ion selektiv microelectrodes for kalium måling. Microelectrode sensorer representerer gullstandarden for måling K+ konsentrasjoner i vitro, vev skiver og i vivo.

Nyere metoder for K+ overvåking er under utvikling med optiske sensorer, men dette ikke oppdager en biologisk relevante utvalg av K+ konsentrasjoner eller har ikke blitt fullt sjekket i biologiske systemer, selv om resultatene vises lovende6,7,8. Sammenlignet med optiske sensorer, er microelectrodes fundamentalt begrenset til en kilde måling av ioner, selv om elektroden matriser kan forbedre romlig oppløsning9. Denne artikkelen fokuserer på enkelt-barreled microelectrode sensorer for å overvåke K+ dynamics.

I dette arbeidet vi rapporterer detaljert gradvis prosedyrer å gjøre K+ selektiv microelectrodes, med en valinomycin-baserte kalium ionophore som tillater svært selektive (104 brett K+ å Na+ selektivitet) K+ bevegelse over membraner10. En naturlig forekommende polypeptid, valinomycin fungerer som en K+ gjennomtrengelig pore og forenkler flyten av K+ ned den elektrokjemiske gradering. Vi beskriver hvordan å kalibrere elektrodene, lagre og bruke dem og til slutt hvordan du distribuerer dem til å måle K+ konsentrasjon dynamikk i akutt hippocampus hjernen skiver fra voksne mus. Bruk av slike elektroder med genmodifiserte mus som mangler spesifikke ionekanaler foreslått å regulere ekstracellulære K+ dynamics skal avsløre de cellulære mekanismene brukes av nervesystemet for å kontrollere ambient konsentrasjonen av K + i ekstracellulære miljøet.

Protocol

Alle dyreforsøk ble utført i henhold til National Institute of helse Guide og bruk av forsøksdyr og ble godkjent av kansler dyr forskningsutvalg ved University of California, Los Angeles. Alle mus ble plassert med mat og vann tilgjengelig annonsen libitum i 12 h lys og mørke omgivelser. Alle dyrene var friske med ingen åpenbare atferdsendringer, var ikke involvert i tidligere studier og ble ofret under lyset syklus. Data for eksperimenter ble samlet inn fra voksen mus (6-8 uker gammel for alle eksperimenter…

Representative Results

For selektiv måling ekstracellulære k+forberedt vi ion-selektiv microelectrodes belagt med et hydrofobe lag gjennom silanization av ren Borosilikatglass Pipetter (figur 1A). Dette belegg kan K+ ionophore som inneholder valinomycin for å hvile på spissen av elektroden og tillater bare K+ flux gjennom en smal åpning på elektroden spissen (figur 1B). Etter grunning elektrodene fylt saltvann og …

Discussion

Metoden som beskriver vi her har tillatt oss å vurdere K+ dynamics svar på elektrisk stimulering av Schaffer collaterals i akutt hippocampus skiver fra voksne mus. Vår metode for å forberede K+ ion selektive microelectrodes ligner på tidligere beskrevet prosedyrer12,13,14,15. Denne metoden har imidlertid fordeler over alternative elektrode konfigurasjoner i at det er …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Khakh lab ble støttet av NIH MH104069. Mody laboratoriet ble støttet av NIH NS030549. J.C.O. takk NIH T32-Grant(NS058280) for trening av Neural Microcircuits.

Materials

Vibratome DSK Microslicer Zero 1
Mouse: C57BL/6NTac inbred mice Taconic Stock#B6
Microscope Olympus BX51
Electrode puller Sutter P-97
Ag/AgCl ground pellet WPI EP2
pCLAMP10.3 Molecular Devices n/a
Custom microfil 28G tip World precision instruments CMF28G
Tungsten Rod A-M Systems 716000
Bipolar stimulating electrodes FHC MX21XEW(T01)
Stimulus isolator World precision instruments A365
Grass S88 Stimulator Grass Instruments Company S88
Borosilicate glass pipettes World precision instruments 1B150-4
A to D board Digidata 1322A Axon Instruments
Signal Amplifier Multiclamp 700A or 700B Axon Instruments
Headstage CV-7B Cat 1 Axon Instruments
Patch computer Dell n/a
Sodium Chloride Sigma S5886
Potassium Chloride Sigma P3911
HEPES Sigma H3375
Sodium Bicarbonate Sigma S5761
Sodium Phosphate Monobasic Sigma S0751
D-glucose Sigma G7528
Calcium Chloride Sigma 21108
Magnesium Chloride Sigma M8266
valinomycin Sigma V0627-10mg
1,2-dimethyl-3-nitrobenzene Sigma 40870-25ml
Potassium tetrakis (4-chlorophenyl)borate Sigma 60591-100mg
5% dimethyldichlorosilane in heptane Sigma 85126-5ml
TTX Cayman Chemical Company 14964
Hydrochloric acid Sigma H1758-500mL
Sucrose Sigma S9378-5kg
Pipette Micromanipulator Sutter MP-285 / ROE-200 / MPC-200
Objective lens Olympus PlanAPO 10xW

References

  1. McDonough, A. A., Youn, J. H. Potassium homeostasis: The knowns, the unknowns, and the health benefits. Physiol Bethesda Md. 32 (2), 100-111 (2017).
  2. Hille, B. . Ion channels of excitable membranes. , 507 (2001).
  3. Kofuji, P., Ceelen, P., Zahs, K. R., Surbeck, L. W., Lester, H. A., Newman, E. A. Genetic inactivation of an inwardly rectifying potassium channel (Kir4.1 subunit) in mice: Phenotypic impact in retina. J Neurosci. 20 (15), 5733-5740 (2000).
  4. Sibille, J., Dao Duc, K., Holcman, D., Rouach, N. The neuroglial potassium cycle during neurotransmission: role of Kir4.1 channels. PLoS Comput Biol. 11 (3), e1004137 (2015).
  5. Tong, X., et al. Astrocyte Kir4.1 ion channel deficits contribute to neuronal dysfunction in Huntington’s disease model mice. Nat Neurosci. 17 (5), 694-703 (2014).
  6. Datta, D., Sarkar, K., Mukherjee, S., Meshik, X., Stroscio, M. A., Dutta, M. Graphene oxide and DNA aptamer based sub-nanomolar potassium detecting optical nanosensor. Nanotechnology. 28 (32), 325502 (2017).
  7. Bandara, H. M. D., et al. Palladium-Mediated Synthesis of a Near-Infrared Fluorescent K+ Sensor. J Org Chem. 82 (15), 8199-8205 (2017).
  8. Depauw, A., et al. A highly selective potassium sensor for the detection of potassium in living tissues. Chem Weinh Bergstr Ger. 22 (42), 14902-14911 (2016).
  9. Machado, R., et al. Biofouling-Resistant Impedimetric Sensor for Array High-Resolution Extracellular Potassium Monitoring in the Brain. Biosensors. 6 (4), (2016).
  10. Rose, M. C., Henkens, R. W. Stability of sodium and potassium complexes of valinomycin. Biochim Biophys Acta BBA – Gen Subj. 372 (2), 426-435 (1974).
  11. Ammann, D., Chao, P., Simon, W. Valinomycin-based K+ selective microelectrodes with low electrical membrane resistance. Neurosci Lett. 74 (2), 221-226 (1987).
  12. Amzica, F., Steriade, M. Neuronal and glial membrane potentials during sleep and paroxysmal oscillations in the neocortex. J Neurosci. 20 (17), 6648-6665 (2000).
  13. Amzica, F., Steriade, M. The functional significance of K-complexes. Sleep Med Rev. 6 (2), 139-149 (2002).
  14. MacVicar, B. A., Feighan, D., Brown, A., Ransom, B. Intrinsic optical signals in the rat optic nerve: role for K(+) uptake via NKCC1 and swelling of astrocytes. Glia. 37 (2), 114-123 (2002).
  15. Chever, O., Djukic, B., McCarthy, K. D., Amzica, F. Implication of Kir4.1 channel in excess potassium clearance: an in vivo study on anesthetized glial-conditional Kir4.1 knock-out mice. J Neurosci. 30 (47), 15769-15777 (2010).
  16. Hall, D. G. Ion-selective membrane electrodes: A general limiting treatment of interference effects. J Phys Chem. 100 (17), 7230-7236 (1996).
  17. Haack, N., Durry, S., Kafitz, K. W., Chesler, M., Rose, C. R. Double-barreled and Concentric Microelectrodes for Measurement of Extracellular Ion Signals in Brain Tissue. J Vis Exp. (103), e53058 (2015).
  18. Larsen, B. R., MacAulay, N. Kir4.1-mediated spatial buffering of K(+): Experimental challenges in determination of its temporal and quantitative contribution to K(+) clearance in the brain. Channels Austin Tex. 8 (6), 544-550 (2014).
  19. Mei, L., et al. Long-term in vivo recording of circadian rhythms in brains of freely moving mice. Proceedings of the National Academy of Sciences. 115, 4276-4281 (2018).
check_url/57511?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Octeau, J. C., Faas, G., Mody, I., Khakh, B. S. Making, Testing, and Using Potassium Ion Selective Microelectrodes in Tissue Slices of Adult Brain. J. Vis. Exp. (135), e57511, doi:10.3791/57511 (2018).

View Video