Summary

Att göra och testning med kalium Ion selektiv mikroelektroder i vävnad skivor av vuxna hjärnan

Published: May 07, 2018
doi:

Summary

Kalium joner bidrar till vila membranet potential celler och extracellulära K+ koncentration är en viktig regulator av cellulära retbarhet. Vi beskriver hur man gör, kalibrera och använda monopolär K+-selektiv mikroelektroder. Med sådana elektroder kan mätning av elektriskt evoked K+ koncentration dynamics i vuxen Hippocampus skivor.

Abstract

Kalium joner bidra avsevärt till att vila membranet potential celler och extracellulära K+ koncentration är därför en avgörande regulator av cell retbarhet. Förändrad koncentrationer av extracellulära K+ påverkar vilande membranet potential och cellulära retbarhet av skiftande jämvikter mellan sluten, öppen och inaktiverade stater för spänningsberoende jonkanaler som ligger bakom aktionspotential initiering och överledning. Därför är det värdefullt att direkt mäta extracellulära K+ dynamik i hälsa och sjuka stater. Här beskriver vi hur man gör, kalibrera och använda monopolär K+-selektiv mikroelektroder. Vi distribuerade dem i vuxna Hippocampus hjärnan skivor att mäta elektriskt evoked K+ koncentration dynamics. Förnuftig användning av sådana elektroder är en viktig del av den verktygslåda som behövs för att utvärdera cellulära och biofysiska mekanismer som styr extracellulära K+ koncentrationer i nervsystemet.

Introduction

Kalium jonkoncentrationer är hårt reglerad i hjärnan, och deras variationer ett kraftfullt inflytande på vilande membranet potential av alla celler. Mot bakgrund av dessa kritiska bidrag är ett viktigt mål av biologi att bestämma de cellulära och biofysiska mekanismer som används för att ordentligt reglera koncentrationen av K+ i det extracellulära utrymmet i olika organ i kroppen1 , 2. ett viktigt krav i dessa studier är förmågan att mäta K+ koncentrationer exakt. Även om många delar som bidrar till kalium homeostas i hjärnan i friska och sjuka har varit identifierade3,4,5, har ytterligare framsteg minskat på grund av specialiserade förbereder ion selektiv mikroelektroder kalium mätning. Mikroelektrod sensorer representerar den gyllene standarden för att mäta K+ koncentrationer i vitro, i vävnad skivor och in vivo.

Nyare metoder för K+ övervakning är under utveckling med optiska sensorer, men dessa inte upptäcka en biologiskt relevant utbud av K+ koncentrationer eller har inte fullt prövats i biologiska system, även om de första resultaten visas lovande6,7,8. Jämfört med optiska sensorer, är mikroelektroder fundamentalt begränsat till en punktkälla mätning av joner, även om elektroden matriser kan förbättra den rumsliga upplösning9. Denna artikel fokuserar på singel-barreled mikroelektrod sensorer för övervakning av K+ dynamics.

I detta arbete, Vi rapporterar detaljerad stegvis förfaranden för att göra K+ selektiv mikroelektroder, använder en valinomycin-baserade kalium jonofor som tillåter mycket selektiv (104 faldigt K+ till Na+ selektivitet) K+ rörelse över membran10. En naturligt förekommande polypeptid, valinomycin fungerar som en K+ genomsläpplig por och underlättar flödet av K+ ner det är elektrokemiska gradient. Vi beskriver också hur du kalibrerar elektroderna, lagra och använda dem och slutligen hur du distribuerar dem för att mäta K+ koncentration dynamics i akut Hippocampus hjärnan skivor från vuxna möss. Användningen av sådana elektroder tillsammans med genetiskt modifierade möss som saknar specifika jonkanaler föreslog att reglera extracellulära K+ dynamics bör avslöja de cellulära mekanismer som används av nervsystemet för att styra omgivande koncentrationen av K + i den extracellulära miljön.

Protocol

Alla djurförsök har utförts i enlighet med nationella institutet för hälsa guiden för skötsel och användning av laboratoriedjur och godkändes av kanslerns djur forskningsutskottet vid University of California, Los Angeles. Alla möss var inrymt med mat och vatten tillgängliga ad libitum i 12 h ljus-mörk miljö. Alla djur var friska med inga uppenbara beteendeförändringar, var inte inblandade i tidigare studier och offrades under lätta cykeln. Data för experiment samlades in från vuxna möss (6-8 …

Representative Results

För selektiv mätning av extracellulära K+beredda vi jonselektiva mikroelektroder överdragen med ett vattenavvisande skikt genom silanisering av ren borosilikatglas pipetter (figur 1A). Denna beläggning kan den K+ jonofor som innehåller valinomycin för att vila på spetsen av elektroden och tillåta endast K+ flöde genom en smal öppning på elektroden spetsen (figur 1B). Efter grundning el…

Discussion

Den metod som vi beskriver här har tillåtit oss att bedöma K+ dynamics svar på elektrisk stimulering av Schaffer säkerheter i akut Hippocampus skivor från vuxna möss. Vår metod för att förbereda K+ ion selektiv mikroelektroder liknar tidigare beskrivna förfaranden12,13,14,15. Denna metod har dock fördelar över alternativa elektrod konfigurationer i att det är…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Khakh labbet stöddes av NIH MH104069. Mody labbet stöddes av NIH NS030549. J.C.O. Tack det NIH T32 neurala mikrokretsar utbildning Grant(NS058280).

Materials

Vibratome DSK Microslicer Zero 1
Mouse: C57BL/6NTac inbred mice Taconic Stock#B6
Microscope Olympus BX51
Electrode puller Sutter P-97
Ag/AgCl ground pellet WPI EP2
pCLAMP10.3 Molecular Devices n/a
Custom microfil 28G tip World precision instruments CMF28G
Tungsten Rod A-M Systems 716000
Bipolar stimulating electrodes FHC MX21XEW(T01)
Stimulus isolator World precision instruments A365
Grass S88 Stimulator Grass Instruments Company S88
Borosilicate glass pipettes World precision instruments 1B150-4
A to D board Digidata 1322A Axon Instruments
Signal Amplifier Multiclamp 700A or 700B Axon Instruments
Headstage CV-7B Cat 1 Axon Instruments
Patch computer Dell n/a
Sodium Chloride Sigma S5886
Potassium Chloride Sigma P3911
HEPES Sigma H3375
Sodium Bicarbonate Sigma S5761
Sodium Phosphate Monobasic Sigma S0751
D-glucose Sigma G7528
Calcium Chloride Sigma 21108
Magnesium Chloride Sigma M8266
valinomycin Sigma V0627-10mg
1,2-dimethyl-3-nitrobenzene Sigma 40870-25ml
Potassium tetrakis (4-chlorophenyl)borate Sigma 60591-100mg
5% dimethyldichlorosilane in heptane Sigma 85126-5ml
TTX Cayman Chemical Company 14964
Hydrochloric acid Sigma H1758-500mL
Sucrose Sigma S9378-5kg
Pipette Micromanipulator Sutter MP-285 / ROE-200 / MPC-200
Objective lens Olympus PlanAPO 10xW

References

  1. McDonough, A. A., Youn, J. H. Potassium homeostasis: The knowns, the unknowns, and the health benefits. Physiol Bethesda Md. 32 (2), 100-111 (2017).
  2. Hille, B. . Ion channels of excitable membranes. , 507 (2001).
  3. Kofuji, P., Ceelen, P., Zahs, K. R., Surbeck, L. W., Lester, H. A., Newman, E. A. Genetic inactivation of an inwardly rectifying potassium channel (Kir4.1 subunit) in mice: Phenotypic impact in retina. J Neurosci. 20 (15), 5733-5740 (2000).
  4. Sibille, J., Dao Duc, K., Holcman, D., Rouach, N. The neuroglial potassium cycle during neurotransmission: role of Kir4.1 channels. PLoS Comput Biol. 11 (3), e1004137 (2015).
  5. Tong, X., et al. Astrocyte Kir4.1 ion channel deficits contribute to neuronal dysfunction in Huntington’s disease model mice. Nat Neurosci. 17 (5), 694-703 (2014).
  6. Datta, D., Sarkar, K., Mukherjee, S., Meshik, X., Stroscio, M. A., Dutta, M. Graphene oxide and DNA aptamer based sub-nanomolar potassium detecting optical nanosensor. Nanotechnology. 28 (32), 325502 (2017).
  7. Bandara, H. M. D., et al. Palladium-Mediated Synthesis of a Near-Infrared Fluorescent K+ Sensor. J Org Chem. 82 (15), 8199-8205 (2017).
  8. Depauw, A., et al. A highly selective potassium sensor for the detection of potassium in living tissues. Chem Weinh Bergstr Ger. 22 (42), 14902-14911 (2016).
  9. Machado, R., et al. Biofouling-Resistant Impedimetric Sensor for Array High-Resolution Extracellular Potassium Monitoring in the Brain. Biosensors. 6 (4), (2016).
  10. Rose, M. C., Henkens, R. W. Stability of sodium and potassium complexes of valinomycin. Biochim Biophys Acta BBA – Gen Subj. 372 (2), 426-435 (1974).
  11. Ammann, D., Chao, P., Simon, W. Valinomycin-based K+ selective microelectrodes with low electrical membrane resistance. Neurosci Lett. 74 (2), 221-226 (1987).
  12. Amzica, F., Steriade, M. Neuronal and glial membrane potentials during sleep and paroxysmal oscillations in the neocortex. J Neurosci. 20 (17), 6648-6665 (2000).
  13. Amzica, F., Steriade, M. The functional significance of K-complexes. Sleep Med Rev. 6 (2), 139-149 (2002).
  14. MacVicar, B. A., Feighan, D., Brown, A., Ransom, B. Intrinsic optical signals in the rat optic nerve: role for K(+) uptake via NKCC1 and swelling of astrocytes. Glia. 37 (2), 114-123 (2002).
  15. Chever, O., Djukic, B., McCarthy, K. D., Amzica, F. Implication of Kir4.1 channel in excess potassium clearance: an in vivo study on anesthetized glial-conditional Kir4.1 knock-out mice. J Neurosci. 30 (47), 15769-15777 (2010).
  16. Hall, D. G. Ion-selective membrane electrodes: A general limiting treatment of interference effects. J Phys Chem. 100 (17), 7230-7236 (1996).
  17. Haack, N., Durry, S., Kafitz, K. W., Chesler, M., Rose, C. R. Double-barreled and Concentric Microelectrodes for Measurement of Extracellular Ion Signals in Brain Tissue. J Vis Exp. (103), e53058 (2015).
  18. Larsen, B. R., MacAulay, N. Kir4.1-mediated spatial buffering of K(+): Experimental challenges in determination of its temporal and quantitative contribution to K(+) clearance in the brain. Channels Austin Tex. 8 (6), 544-550 (2014).
  19. Mei, L., et al. Long-term in vivo recording of circadian rhythms in brains of freely moving mice. Proceedings of the National Academy of Sciences. 115, 4276-4281 (2018).
check_url/57511?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Octeau, J. C., Faas, G., Mody, I., Khakh, B. S. Making, Testing, and Using Potassium Ion Selective Microelectrodes in Tissue Slices of Adult Brain. J. Vis. Exp. (135), e57511, doi:10.3791/57511 (2018).

View Video