Summary

En dråbe mikrofluid tilgang og Microsphere-PCR-amplifikation til enkeltstrenget DNA amplikoner

Published: November 14, 2018
doi:

Summary

Dette værk indeholder en metode til fremstilling af droplet-baserede mikrofluid platforme og anvendelsen af polyacrylamid mikrokugler for microsphere-PCR-amplifikation. Microsphere-PCR-metoden gør det muligt at opnå enkeltstrenget DNA amplikoner uden adskillelse dobbelt-strenget DNA.

Abstract

Droplet-baserede mikrofluidik aktiverer pålidelig produktion af homogene mikrokugler i den mikrofluid kanal, giver kontrolleret størrelse og morfologi af den opnåede microsphere. En copolymeriseret med et acrydite-DNA-sonder microsphere blev fabrikeret. Forskellige metoder som asymmetriske PCR, exonuclease fordøjelse og isolation på streptavidin-belagt magnetiske perler kan bruges til at syntetisere enkeltstrenget DNA (ssDNA). Disse metoder kan ikke effektivt bruger store mængder af højt oprenset ssDNA. Her, beskriver vi en microsphere-PCR-protokol beskriver hvordan ssDNA kan være effektivt forstærkes og adskilt fra dsDNA simpelthen af pipettering fra en PCR reaktion tube. Forstærkning af ssDNA kan anvendes som potentielle reagenser for DNA microarray og DNA-SELEX (systematisk udvikling af ligander af eksponentielle berigelse) processer.

Introduction

Enkeltstrenget DNA (ssDNA) er blevet grundigt overvejet som en molekylær anerkendelse element (MRE) på grund af dets iboende egenskaber for DNA-DNA hybridisering1,2. Udviklingen af ssDNA syntetisk systemer kan føre til biologiske applikationer såsom DNA microarrays3, oligotherapeutics, diagnostik og integreret Molekylær sensing baseret på supplerende interaktioner4,5.

Til dato, har mikrometer skala polymer partikler med held påvist ved hjælp af mikrofluid enheder. Flere mikrofluid teknikker har vist sig for at være effektive til at producere meget homogen mikrokugler på kontinuerlig flow i microchannel miljø6,7.

I studiet af Lee et al. 8, en droplet-baserede mikrofluid platform for mikrofluid syntese af copolymerizable oligo-microsphere og ssDNA forstærkning blev rapporteret. Mikrofluid platform består af to PDMS (Polydimethylsiloxan) lag: en øvre del med en mikrofluid kanal netværk til at generere microsphere og en bunden flad del. Disse består af tre slags PDMS fluidic kanaler: 1) en flow med fokus kanal for slipværktøj generation, 2) en serpentine kanal til at blande to løsninger og 3) en sekventiel polymerisering kanal for microsphere størkning. Når to ikke-blandbare strømme er indført i en enkelt PDMS fluidic kanal, kan strømme tvinges gennem den smalle åbning struktur. Strømmen adfærd som kanal geometri, strømningshastighed og viskositet påvirke størrelse og morfologi af microsphere. Derfor, den største flydende strøm kan opdeles i mikroskala monospheres9,10.

Her er en detaljeret microsphere-PCR-protokol fastsatte forstærkning af ssDNA. Først, en droplet-baserede mikrofluid enhed designproces er beskrevet. Derefter, den måde, i hvilke polyacrylamid mikrokugler kan være functionalized med tilfældig DNA skabelon i en supplerende måde er forklaret. Endelig er en microsphere-PCR-protokol for uddybning af ssDNA vist.

Protocol

1. fabrikation af en PDMS mikrofluid Platform Forberede 20 mL flydende PDMS prepolymer ved at blande base polymer og katalysator i en volumen-forholdet på 10:1. Hæld 10 mL væske PDMS på en rede SU-8 mug på en silicium wafer for den øvre del af mikrofluid netværk. Den nederste flade del, hæld flydende PDMS samme rumfang på silicium wafer uden en skimmel struktur.Bemærk: Mikrofluid netværk er designet i et CAD-program og derefter konverteres til et photomask for at fabrikere en master ved hjælp af…

Representative Results

Opdigtet polymere droplet-baserede mikrofluid platform består af to PDMS lag (figur 1a). Tre slags mikrofluid kanal netværk bruges til at generere mikrokugler: 1) strøm-fokusere geometri som vist i figur 1b, 2) en serpentine kanal for blandingsopløsning og løsning II og 3) polymerisering kanal for microsphere størkning. Højden af alle kanaler var 60 μm. Kanal længde til at blande og polymerisation var 74.35 og 94.45 mm, …

Discussion

Kontaminanter i dsDNA er et stort problem i ssDNA forstærkning. Det er fortsat vanskeligt at minimere dsDNA forstærkning i konventionelle asymmetriske PCR forstærkning15. Desuden, selv om tekniske forbedringer for at generere ssDNA har gjort det muligt for os at øge effektiviteten af prøven overførselshastighed, er ssDNA isolation stadig problematisk på grund af sin høje omkostninger og ufuldstændige rensning udbytter.

Asymmetriske PCR er en af de mest udfordre…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denne undersøgelse er understøttet af et projekt med titlen “kooperativ forskningsprogram for landbrug Science & Technology Development (projekt nr. PJ0011642) “finansieret af landdistrikternes udvikling Administration, Republikken Korea. Denne forskning blev også delvist støttet af en bevilling (NRF-2017R1A2B4012253) af den grundlæggende videnskab forskningsprogram gennem National Research Foundation (NRF) finansieret af Ministeriet for videnskab, IKT & fremtid planlægning, Republikken Korea. Denne forskning blev også støttet af tilskud (N0000717) af programmet uddannelse for kreative og industrielle konvergens finansieret af Ministeriet for handel, industri og energi, Republikken Korea.

Materials

liquid polydimethylsiloxane, PDMS Dow Corning Inc. Sylgard 184 Components of chip
40% Acrylamide:bis solution (19:1) Bio-rad 1610140 Components of Copolymerizable oligo-microsphere
Ammonium persulfate, APS Sigma Aldrich A3678 Hardener of acrylamide:bis solution
N,N,N′,N′-Tetramethylethylenediamine, TEMED Sigma Aldrich T9281 Catalyst of ammonium persulfate
Mineral oil Sigma Aldrich M5904 Table 1. Solution III. Component of microsphere reagents
Cy3 labeled complementary oligonucleotide probes Bioneer synthesized Table 3. Sequence information 
ssDNA acrydite labeled probe Bioneer synthesized Table 1. Solution I. Component of microsphere reagents
Tris Biosesang  T1016 Components of TE buffer, pH buffer solution
EDTA Sigma Aldrich EDS Components of TE buffer, removal of ion (Ca2+)
Ex taq Takara RR001A ssDNA amplification
Confocal microscope  Carl Zeiss LSM 510 Identifying oligonucleotides expossure of microsphere surface
Light Microscope Nikon Instruments Inc. eclipse 80i Caculating number of microspheres
T100 Thermal Cycler Bio-rad 1861096 ssDNA amplification
Hand-held Corona Treater Electro-Technic BD-20AC Laboratory Corona Treater Hydrophilic surface treatment
Hot plate As one HI-1000 heating plate for curing of liquid PDMS
Syringe pump kd Scientific 78-1100 Uniform flow of Solution I and Solution II
Compressor Kohands KC-250A Flow control of Solution III
Bright-Line Hemacytometer Sigma Aldrich Z359629 Caculating number of microspheres

References

  1. Smith, A. J. The use of exonuclease III for preparing single stranded DNA for use as a template in the chain terminator sequencing method. Nucleic Acids Research. 6 (3), 831-848 (1979).
  2. Sekhon, S. S., et al. Aptabody-aptatope interactions in aptablotting assays. Nanoscale. 9 (22), 7464-7475 (2017).
  3. Ng, J. K., Ajikumar, P. K., Stephanopoulos, G., Too, H. P. Profiling RNA polymerase-promoter interaction by using ssDNA-dsDNA probe on a surface addressable microarray. Chembiochem. 8 (14), 1667-1670 (2007).
  4. Sekhon, S. S., et al. Defining the copper binding aptamotif and aptamer integrated recovery platform (AIRP). Nanoscale. 9 (8), 2883-2894 (2017).
  5. Mikhailov, V. S., Bogenhagen, D. F. Effects of Xenopus laevis mitochondrial single-stranded DNA-binding protein on primer-template binding and 3′–>5′ exonuclease activity of DNA polymerase gamma. Journal of Biological Chemistry. 271 (31), 18939-18946 (1996).
  6. Yu, X., Cheng, G., Zhou, M. D., Zheng, S. Y. On-demand one-step synthesis of monodisperse functional polymeric microspheres with droplet microfluidics. Langmuir. 31 (13), 3982-3992 (2015).
  7. Akamatsu, K., Kanasugi, S., Nakao, S., Weitz, D. A. Membrane-Integrated Glass Capillary Device for Preparing Small-Sized Water-in-Oil-in-Water Emulsion Droplets. Langmuir. 31 (25), 7166-7172 (2015).
  8. Lee, S. H., et al. On-Flow Synthesis of Co-Polymerizable Oligo-Microspheres and Application in ssDNA Amplification. PLoS One. 11 (7), e0159777 (2016).
  9. Anna, S. L., Bontoux, N. B., Stone, H. A. Formation of dispersions using "flow focusing" in microchannels. Applied Physics Letters. 82 (3), 364-366 (2003).
  10. Gupta, A., Matharoo, H. S., Makkar, D., Kumar, R. Droplet formation via squeezing mechanism in a microfluidic flow-focusing device. Computers & Fluids. 100, 218-226 (2014).
  11. McDonald, J. C., Whitesides, G. M. Poly(dimethylsiloxane) as a material for fabricating microfluidic devices. Accounts of Chemical Research. 35 (7), 491-499 (2002).
  12. Haubert, K., Drier, T., Beebe, D. PDMS bonding by means of a portable, low-cost corona system. Lab on a Chip. 6 (12), 1548-1549 (2006).
  13. Olsen, T. R., et al. Integrated Microfluidic Selex Using Free Solution Electrokinetics. Journal of the Electrochemical Society. 164 (5), B3122-B3129 (2017).
  14. Dorris, D. R., et al. Oligodeoxyribonucleotide probe accessibility on a three-dimensional DNA microarray surface and the effect of hybridization time on the accuracy of expression ratios. BMC Biotechnology. 3, 6 (2003).
  15. Heiat, M., Ranjbar, R., Latifi, A. M., Rasaee, M. J., Farnoosh, G. Essential strategies to optimize asymmetric PCR conditions as a reliable method to generate large amount of ssDNA aptamers. Biotechnology and Applied Biochemistry. 64 (4), 541-548 (2017).
check_url/57703?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Lee, S. H., Lee, H. W., Kim, D. S., Kwon, H. G., Lee, J. H., Kim, Y., Jeong, O. C., Ahn, J. A Droplet-Based Microfluidic Approach and Microsphere-PCR Amplification for Single-Stranded DNA Amplicons. J. Vis. Exp. (141), e57703, doi:10.3791/57703 (2018).

View Video