Svin som en utbildningsmodul för huvud och hals mikrovaskulära återuppbyggnad
Summary
Här presenterar vi ett protokoll för användning av gris överlägsen epigastrisk artären perforator klaffen som lärande modul för huvud och hals mikrovaskulära återuppbyggnad.
Abstract
Levande modeller som liknar kirurgiska villkorar av människor behövs för utbildning gratis-flap avverkning och anastomos. Djurmodeller för utbildningsändamål har funnits i år på många kirurgiska områden. Vi använde kvinnligt (eftersom de är lätta att hantera för förfarandet) Yorkshire svin för huvud och hals återuppbyggnad genom att skörda den djupt sämre epigastrisk artären perforator eller överlägsen epigastrisk artären perforator klaffen. Webbplatsen för anastomos (halsen hud defekt eller luftrör väggen defekt) förbereddes med dissektion av den gemensamma halspulsådern och den inre halsvenen, som 3,5 × lupp förstoring användes för anastomos som vi använder på humanfall i verkliga livet. Detta förfarande visar en ny träningsmetod som använder en pålitlig lärande modell och ger en detaljerad anatomi i ett levande scenario. Vi fokuserade på ischemi tiden, skörd, fartyget anastomos, och utforma klaffen att passa defekten. Denna modell förbättrar vävnad hantering och med användning av lämpliga instrument kan upprepas många gånger så att kirurgen är fullt förtroende innan operationen på människor.
Introduction
Återuppbyggnad efter operation för huvud och hals maligna sjukdomar är ett svårt förfarande med betydande morbiditet. Mikrovaskulära gratis-flik rekonstruktion har varit väl etablerat som standardmetoden för återuppbyggnad för över 20 år1,2,3. Gratis-flap överföring spelar en betydelsefull roll i förbättringen av huvud och hals hantering i cancerpatienter och posttraumatiska skador därmed tänja på gränserna för kirurgisk excision av sjukdom utöver tidigare tekniker, vilket resulterar i större patienten livskvalitet och längre överlevnad priser1,2,3. De olika klaffarna för återuppbyggnad inkluderar roterande, transplantat och gratis klaffar.
Rollen som gratis klaffar i huvud och hals återuppbyggnaden har expanderat. Det är den svåraste flik att arbeta med, som kräver skickliga och delikat hantering. Flap misslyckande är en katastrofal händelse, med betydande morbiditet4,5. Således krävs betydande utbildningstid att utveckla precisionen som krävs för den framgångsrika kirurgiska resultat3,4,5,6,7,8, 9. Den brant inlärningskurva som förknippas med en sådan operation kan påverka utfallet för patienter och påverka behandling förvaltning3,4,5,6,7, 8,9. Att minska träningstiden och inlärningskurvan för nya kirurger, en utbildningsmodell som behövs som härmar mänskliga biologin och ger liknande operationsområdet villkorar8.
Målet med denna studie är att Visa synbarheten av svin som en bra utbildningsmodul för huvud och hals mikrovaskulära återuppbyggnaden som liknar mänskliga fallet med förbättrade färdigheter i active mode.
Denna studie undersöktes användningen av en svin modell för utbildning nya kollegor i huvud och hals mikrovaskulära rekonstruktionen för gratis-flap överföring att tillhandahålla en kostnadseffektiv och mindre stressande tillägg till den kliniska fältet utbildningen med tillförlitligt liknande funktioner för gratis-flik förfaranden. Grisar har använts i många studier och som undervisning modeller för olika kirurgiska rekonstruktioner, exempelvis bröstrekonstruktion; 5 svin har dock aldrig använts för huvud och hals återuppbyggnad utom i vår studie för trakeal återuppbyggnad på grund av trakeal stenos10.
Tanken startades efter Frederic Bodin7, som beskriver liknande klaffen för bröstrekonstruktion. Den största fördelen för studien över den andra modulen mikrovaskulära utbildning är den aktiva livening modulen med en riktig omedelbara resultatet av förfarandet.
Protocol
Representative Results
Discussion
Betydande sjuklighet och defekter kan uppstå i huvud och hals malignitet patienter under kirurgisk behandling. Mikrovaskulära fria vävnad överföring blivit avgörande för återuppbyggnad i de flesta fall. Lönsamheten för luckan är en kritisk fråga, som kräver stabilt, exakt hantering av BLOMSTJÄLK, taktil känsla, visuospatial förmåga och utmärkta operativa flöde från kirurgen8. För att utveckla dessa färdigheter, behöver en omfattande praxis med en utbildning modell<sup class=…
Disclosures
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
Detta arbete var finansieras och stöds av grundläggande vetenskap forskningsprogrammet genom den nationella Research Foundation i Korea (NRF) finansieras av ministeriet för vetenskap, IKT och framtida planering (2015R1C1A1A01051907). Detta arbete fick också stöd av grundläggande vetenskap forskningsprogrammet genom den nationella forskning stiftelsen av Korea (NRF) finansieras av ministeriet för vetenskap, IKT & framtida planering (NRF-2016M3A9E9941746).
Materials
| Pigs XP Bio, Seoul, South Korea | |||
| Surgical Hair Removal shaver | 3M | ||
| 22 gage catheter | B.BRAUN | ||
| syring with needle size 18 | Jung Rim Medical | ||
| Intramuscular alfaxan | Careside | 10ml/VAL | |
| Intramuscularxylazine | Bayer | ||
| Intramuscular azaperone | Sigma-aldrich | 34223 | |
| Intramuscular atropine | Daewon | 0.5mg/A | |
| Intramuscular cefazolin | Yuhan | 1g | |
| intravenous Ketorolac | Hana Pharm | 30mg | |
| Swine ansthesia mask | DRE | 1392 | |
| endotracheal cuff tube 6.5 mm | SMITH medical | 100/150/065 | |
| ansthesia Machine | Dräger | PRIMUS IE | |
| 2% lidocaine topical solution | Taejoon | ||
| vet ointment | Pfizer | terramycin |
|
| eye cover patch | Innomed | S-universal010S | |
| betadine solution 1%. | Korea Pharma | ||
| gauze 4*4 | First Medical | 22*30CM 320S | |
| blade No. 23 | Paragon | 23 | |
| lahey retractor | V.Mueller | SU3960 | |
| kelly tissue scissors | SOLCO | 05-1990 | |
| blade No. 11 | Paragon | 11 | |
| surgical marking pen | Aspen Surgical | Regular #2750 | |
| allis | V.Mueller | SU4055 | |
| tie suture | Covidein | non-needle | |
| 3.5× surgical loupe | zeiss | eyemag smart | |
| double clamp without frame | V.Mueller | CH7155 | |
| microscissors | AESCULAP | FD038R | |
| Ringer's lactate | Daehan | 500ml/1bag | |
| amoxicillin–clavulanate | Ilsung | 0.6g/V | |
| Meloxicam | Samil | 7.5mg | |
| propofol | Dong Kook | 120mg/V | |
| intravenous KCl solution | Daehan | 20ml/50P | |
| mosquito curved | SOLCO | 013-0111 | |
| mosquito straight | SOLCO | 05-1050 | |
| ethilone 10-0 suture | ethicone | 10/0W1756 | |
| Vicryl 3-0. | ethicone | 3/0W9890 | |
| buprenorphine | Hanlim | 0.3mg |
References
- Chen, C. L., Zenga, J., Roland, L. T., Pipkorn, P. Complications of double free flap and free flap combined with locoregional flap in head and neck reconstruction: A systematic review. Head & Neck journal of the Science and Specialties of the Head and Neck. 40 (3), 632-646 (2018).
- Smith, R. K., Wykes, J., Martin, D. T., Niles, N. Perforator variability in the anterolateral thigh free flap: a systematic review. Surgical and Radiologic Anatomy. 39 (7), 779-789 (2017).
- Bauer, F., Koerdt, S., Hölzle, F., Mitchell, D. A., Wolff, K. D. Eight free flaps in 24 hours: a training concept for postgraduate teaching of how to raise microvascular free flaps. British Journal of Oral and Maxillofacial. 54 (1), 35-39 (2016).
- Schoeff, S., Hernandez, B., Robinson, D. J., Jameson, M. J., Shonka, D. C. Microvascular Anastomosis Simulation Using a Chicken Thigh Model: Interval Versus Massed Training. The Laryngoscope. 127 (11), 2490-2494 (2017).
- Bodin, F., Diana, M., Koutsomanis, A., Robert, E., Marescaux, J., Bruant-Rodier, C. Porcine model for free-flap breast reconstruction training. Plastic and Reconstructive Surgery Journal. 68 (10), 1402-1409 (2015).
- Rodriguez, J. R., Yañez, R., Cifuentes, I., Varas, J., Dagnino, B. Microsurgery Workout: A Novel Simulation Training Curriculum Based on Nonliving Models. Plastic and Reconstructive Surgery Journal. 138 (4), 739e-747e (2016).
- Carey, J. N., et al. Simulation of plastic surgery and microvascular procedures using perfused fresh human cadavers. Plastic and Reconstructive Surgery journal. 67 (2), e42-e48 (2014).
- Chan, W., Niranjan, N., Ramakrishnan, V. Structured assessment of microsurgery skills in the clinical setting. Plastic and Reconstructive Surgery Journal. 63 (8), 1329-1334 (2010).
- Matsumura, N. A newly designed training tool for microvascular anastomosis techniques: Microvascular Practice Card. Surgical Neurology Journal. 71 (5), 616-620 (2010).
- Kim, W. S., et al. Tracheal reconstruction with a free vascularized myofascial flap: preclinical investigation in a porcine model to human clinical application. Scientific Reports. 7 (1), 10022 (2017).
