Summary

चूहे में वातस्फीति के मूल्यांकन के लिए लगातार दबाव के तहत फेफड़ों का निर्धारण

Published: September 26, 2019
doi:

Summary

यहाँ प्रस्तुत फेफड़ों के निर्धारण के लिए एक उपयोगी प्रोटोकॉल है कि वातस्फीति के एक माउस मॉडल से फेफड़ों के नमूनों के हिस्टोलॉजिकल मूल्यांकन के लिए एक स्थिर स्थिति बनाता है. इस मॉडल का मुख्य लाभ यह है कि यह फेफड़ों के पतन या संकुचन के बिना एक ही निरंतर दबाव के साथ कई फेफड़ों को ठीक कर सकते हैं.

Abstract

वातस्फीति क्रोनिक ऑब्सट्रक्टिव पल्मोनरी डिजीज (सीओपीडी) की एक महत्वपूर्ण विशेषता है। एक वातस्फीति माउस मॉडल से जुड़े अध्ययनों के लिए फेफड़ों के विश्वसनीय हिस्टोलॉजिकल नमूनों का उत्पादन करने के लिए इष्टतम फेफड़ों के निर्धारण की आवश्यकता होती है। फेफड़ों की संरचनात्मक संरचना की प्रकृति के कारण, जिसमें काफी हद तक हवा और ऊतक होते हैं, एक जोखिम है कि यह निर्धारण प्रक्रिया के दौरान गिर जाता है या deflates होता है। विभिन्न फेफड़ों निर्धारण विधियों मौजूद हैं, जिनमें से प्रत्येक के अपने फायदे और नुकसान हैं। फेफड़ों के निर्धारण विधि यहाँ प्रस्तुत एक वातस्फीति माउस फेफड़ों के मॉडल का उपयोग कर अध्ययन के लिए इष्टतम ऊतक मूल्यांकन सक्षम करने के लिए लगातार दबाव का इस्तेमाल करता है. मुख्य लाभ यह है कि यह एक ही समय में एक ही शर्त के साथ कई फेफड़ों को ठीक कर सकते हैं. फेफड़ों के नमूने पुरानी सिगरेट के धुएं से उजागर चूहों से प्राप्त कर रहे हैं. फेफड़ों निर्धारण विशेष उपकरण है कि लगातार दबाव के उत्पादन में सक्षम बनाता है का उपयोग किया जाता है। यह लगातार दबाव एक काफी फुलाया राज्य में फेफड़ों को बनाए रखता है. इस प्रकार, इस विधि फेफड़ों कि सिगरेट के धुएं प्रेरित हल्के वातस्फीति का मूल्यांकन करने के लिए उपयुक्त है की एक हिस्टोलॉजिकल नमूना उत्पन्न करता है.

Introduction

सीओपीडी मौत1के प्रमुख दुनिया भर में कारणों में से एक है। सिगरेट का धुआं सीओपीडी का सबसे महत्वपूर्ण कारण है, लेकिन रोगजनन के तंत्र अपूर्ण रूप से परिभाषित रहते हैं। सीओपीडी दो मुख्य विशेषताओं को दर्शाता है, airflow के प्रगतिशील सीमा और फेफड़ों की एक असामान्य भड़काऊ प्रतिक्रिया सहित. वातस्फीति विकार प्राय : सीओपीडी रोगियों के फेफड़ों में होता है2. वातस्फीति के रोगात्मक निष्कर्षों में कूपिका-दीवार विनाश3की विशेषता है . कई पशु प्रजातियों विवो में सीओपीडी मॉडल उत्पन्न करने के लिए इस्तेमाल किया गया है (यानी, कुत्तों, गिनी सूअरों, बंदरों, और कृन्तकों)4. हालांकि, माउस सबसे अधिक सीओपीडी मॉडल के निर्माण में इस्तेमाल किया बन गया है. यह अपनी कम लागत सहित कई फायदे हैं, आनुवंशिक रूप से संशोधित करने की क्षमता, व्यापक जीनोमिक जानकारी उपलब्धता, एंटीबॉडी की उपलब्धता, और माउस उपभेदों की एक किस्म का उपयोग करने की क्षमता5. वर्तमान में, वहाँ कोई माउस मॉडल है कि मानव सीओपीडी की पूरी सुविधाओं की नकल कर सकते है; इस प्रकार, व्यक्तिगत शोधकर्ताओं का चयन करना होगा जो मॉडल विशिष्ट सीओपीडीअनुसंधान6 के लिए सबसे उपयुक्त है. वातस्फीति माउस मॉडल वर्तमान में उपलब्ध हैं कि कई सीओपीडी माउस मॉडल में से एक है. अतिरिक्त मॉडल exacerbation माउस मॉडल, प्रणालीगत सह-morbidities मॉडल, और सीओपीडी संवेदनशीलता मॉडल7शामिल हैं.

वातस्फीति माउस मॉडल कई प्रकार के exogenous एजेंटों द्वारा उत्पन्न किया जा सकता है, रासायनिक एजेंटों और सिगरेट के धुएं जोखिम4सहित. रासायनिक जोखिम (जैसे, इलैस्टेस के लिए) वातस्फीति का एक गंभीर प्रकार का उत्पादन करता है, जबकि सिगरेट के धुएं का परिणाम हल्के वातस्फीति8,9 में होताहै। सिगरेट का धुआं सीओपीडी के रोगजनन का मुख्य कारण माना जाता है; इसलिए, एक सीओपीडी माउस मॉडल बनाने के लिए एक साधन के रूप में सिगरेट के धुएं का चुनाव उचित10है। कई अध्ययनों से सिगरेट के धुएं का इस्तेमाल किया है माउस में वातस्फीति बनाने के लिए. उदाहरण के लिए, Nikula एट अल सफलतापूर्वक B6C3F1 महिला चूहों से एक वातस्फीति माउस मॉडल बनाया उन्हें 7 या 13 महीने11के लिए सिगरेट के धुएं को उजागर द्वारा . हमने सेनेसी मार्कर प्रोटीन/एसएमपी-30 KO चूहों12के माध्यम से एक वातस्फीति माउस मॉडल भी स्थापित किया है। यह ठीक से सिगरेट के धुएं के प्रदर्शन से इस हल्के वातस्फीति मॉडल कल्पना कर सकते हैं कि एक फेफड़ों के निर्धारण विधि प्रदर्शन करने के लिए महत्वपूर्ण है।

फेफड़ों के निर्धारण के लिए विभिन्न तरीकों की स्थापना की गई है13. तथापि, वातस्फीति14के मूल्यांकन के लिए फेफड़ों के ऊतक निर्धारण की कोई स्वर्ण मानक विधि नहीं है। इस प्रयोगशाला के अनेक अध्ययनों से पता चला है कि यहां प्रस्तुत स्थिरप्रणाली वातस्फीति12,15,16,17,18के मूल्यांकन के लिए एक स्थिर स्थिति बनाकर उपयोगी है . वर्तमान प्रणाली का मुख्य लाभ यह है कि यह फेफड़ों के पतन या संकुचन के बिना एक ही शर्त के साथ कई फेफड़ों को ठीक कर सकते हैं. वर्तमान फेफड़ों निर्धारण प्रणाली कुछ विशेष उपकरण है कि फेफड़ों के नमूनों को एक दिया अवधि के लिए एक उचित निरंतर दबाव में फुलाया जा करने की अनुमति देता है का उपयोग करता है. इस विशेष उपकरण एक कम कंटेनर, ऊपरी कंटेनर, और पंप सहित तीन भागों के होते हैं. फेफड़ों के नमूनों को निचले पात्र में रखा जाता है जो दाबित फिक्सिंग एजेंटों से जुड़ा होता है, जिसके परिणामस्वरूप ऊपरी और निचले कंटेनर19के बीच एजेंटों के स्तर में 25 बउचह2हे दाब अंतर होता है।

Protocol

निम्नलिखित तरीकों को जूनेंडो विश्वविद्यालय स्कूल ऑफ मेडिसिन के पशु देखभाल और उपयोग समितियों द्वारा अनुमोदित किया गया है। पशु प्रयोगों के उचित आचरण के लिए दिशानिर्देशों का पालन किया गया, जापान की विज…

Representative Results

जैसा कि पहले बताया गया है, विशेष उपकरण, जो विस्तारित निरंतर दबाव उत्पन्न करता है, को तीन भागों में विभाजित किया जा सकता है (चित्र 3ए)। निम्न भाग वह बिंदु होता है जिस पर फेफड़ों का नमूना सम?…

Discussion

कृंतक फेफड़ों के लिए निर्धारण प्रक्रिया यहाँ प्रस्तुत उपन्यास नहीं है; हालांकि, इस प्रणाली के कई फायदे हैं। सबसे पहले, यह एक ही स्थिति के साथ कई फेफड़ों (अधिकतम 20) को ठीक कर सकते हैं। विष विज्ञान की सोसाय?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

इस काम के भाग में जेएसपीएस KAKENHI अनुदान संख्या 26461199 (टी Sato) और पर्यावरण और लिंग विशेष चिकित्सा के लिए संस्थान, Juntendo विश्वविद्यालय चिकित्सा के स्नातक स्कूल, अनुदान संख्या E2920 (टी Sato) द्वारा समर्थित किया गया था. वर्तमान विधियों के डिजाइन में और पांडुलिपि लिखने में funder की कोई भूमिका नहीं थी।

Materials

10% formalin (formalin neutral buffer solution) Wako 060-01667
Bent forceps Hammacher HSC187-11
Cannula, size 20G Terumo SR-FS2032
Cannula, size 22G Terumo SR-OT2225C Cannula to exsanguinate lung
Forceps Hammacher HSC184-10
Kimtowel Nippon Paper Crecia (Kimberly Clark) 61000
Kimwipe Nippon Paper Crecia (Kimberly Clark) 62011
Lower container (acrylic glass material) Tokyo Science Custom-made Pressure equipment component
Roller pump Nissin Scientific Corp NRP-75 Pump machine to exsanguinate lung
Roller pump RP-2000 Eyela (Tokyo Rikakikai Co. Ltd) 160200 Pressure equipment pump
Silicone tube Ø 9 mm Sansyo 94-0479 Pressure equipment component
Somnopentyl (64.8 mg/mL) Kyoritsu Seiyaku SOM02-YA1312 Pentobarbital Sodium
Surgical scissor Hammacher HSB014-11
Suture thread, size 0 Nescosuture GA01SW
Syringe, 1 mL Terumo SS-01T
Syringe, 1 ml with needle Terumo SS-01T2613S
Syringe, 10 mL Terumo SS-10ESZ
Three-way stopcock Terumo TS-TR1K01
Upper container (acrylic glass material) Tokyo Science Custom-made Pressure equipment component

References

  1. Vogelmeier, C. F., et al. Global strategy for the diagnosis, management, and prevention of chronic obstructive lung disease 2017 report. GOLD Executive Summary. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 195 (5), 557-582 (2017).
  2. Pauwels, R. A., Rabe, K. F. Burden and clinical features of chronic obstructive pulmonary disease (COPD). Lancet. 364 (9434), 613-620 (2004).
  3. Spurzem, J. R., Rennard, S. I. Pathogenesis of COPD. Seminars in Respiratory and Critical Care Medicine. 26 (2), 142-153 (2005).
  4. Vlahos, R., Bozinovski, S., Gualano, R. C., Ernst, M., Anderson, G. P. Modelling COPD in mice. Pulmonary Pharmacology and Therapeutics. 19 (1), 12-17 (2006).
  5. Vlahos, R., Bozinovski, S. Recent advances in pre-clinical mouse models of COPD. Clinical Science (Lond). 126 (4), 253-265 (2014).
  6. Stevenson, C. S., Belvisi, M. G. Preclinical animal models of asthma and chronic obstructive pulmonary disease. Expert Review of Respiratory Medicine. 2 (5), 631-643 (2008).
  7. Stevenson, C. S., Birrell, M. A. Moving towards a new generation of animal models for asthma and COPD with improved clinical relevance. Pharmacology and Therapeutics. 130 (2), 93-105 (2011).
  8. Vandivier, R. W., Ghosh, M. Understanding the Relevance of the Mouse Cigarette Smoke Model of COPD: Peering through the Smoke. American Journal of Respiratory Cell and Molecular Biology. 57 (1), 3-4 (2017).
  9. Wright, J. L., Cosio, M., Churg, A. Animal models of chronic obstructive pulmonary disease. American Journal of Physiology Lung Cellular and Molecular Physiology. 295 (1), L1-L15 (2008).
  10. Rennard, S. I., Togo, S., Holz, O. Cigarette smoke inhibits alveolar repair: a mechanism for the development of emphysema. Proceedings of the American Thoracic Society. 3 (8), 703-708 (2006).
  11. Nikula, K. J., et al. A mouse model of cigarette smoke-induced emphysema. Chest. 117, 246S-247S (2000).
  12. Sato, T., et al. Senescence marker protein-30 protects mice lungs from oxidative stress, aging, and smoking. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 174 (5), 530-537 (2006).
  13. Braber, S., Verheijden, K. A., Henricks, P. A., Kraneveld, A. D., Folkerts, G. A comparison of fixation methods on lung morphology in a murine model of emphysema. American Journal of Physiology Lung Cellular and Molecular Physiology. 299 (6), L843-L851 (2010).
  14. Hsia, C. C., et al. An official research policy statement of the American Thoracic Society/European Respiratory Society: standards for quantitative assessment of lung structure. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 181 (4), 394-418 (2010).
  15. Kasagi, S., et al. Tomato juice prevents senescence-accelerated mouse P1 strain from developing emphysema induced by chronic exposure to tobacco smoke. American Journal of Physiology Lung Cellular and Molecular Physiology. 290 (2), L396-L404 (2006).
  16. Koike, K., et al. Complete lack of vitamin C intake generates pulmonary emphysema in senescence marker protein-30 knockout mice. American Journal of Physiology Lung Cellular and Molecular Physiology. 298 (6), L784-L792 (2010).
  17. Koike, K., et al. Vitamin C prevents cigarette smoke-induced pulmonary emphysema in mice and provides pulmonary restoration. American Journal of Respiratory Cell and Molecular Biology. 50 (2), 347-357 (2014).
  18. Suzuki, Y., et al. Hydrogen-rich pure water prevents cigarette smoke-induced pulmonary emphysema in SMP30 knockout mice. Biochemical and Biophysical Research Communications. 492 (1), 74-81 (2017).
  19. Saad, M., Ruwanpura, S. M. Tissue Processing for Stereological Analyses of Lung Structure in Chronic Obstructive Pulmonary Disease. Methods in Molecular Biology. 1725, 155-162 (2018).
  20. Thurlbeck, W. M. The internal surface area of nonemphysematous lungs. The American Review of Respiratory Disease. 95 (5), 765-773 (1967).
  21. Saetta, M., et al. Destructive index: a measurement of lung parenchymal destruction in smokers. The American Review of Respiratory Disease. 131 (5), 764-769 (1985).
  22. Renne, R., et al. Recommendation of optimal method for formalin fixation of rodent lungs in routine toxicology studies. Toxicologic Pathology. 29 (5), 587-589 (2001).
  23. Schneider, J. P., Ochs, M. Alterations of mouse lung tissue dimensions during processing for morphometry: a comparison of methods. American Journal of Physiology Lung Cellular and Molecular Physiology. 306 (4), L341-L350 (2014).
  24. Wright, J. L. Relationship of pulmonary arterial pressure and airflow obstruction to emphysema. Journal of Applied Physiology. 74 (3), 1320-1324 (1993).
  25. Wright, J. L., Churg, A. Cigarette smoke causes physiologic and morphologic changes of emphysema in the guinea pig. The American Review of Respiratory Disease. 142 (6 Pt 1), 1422-1428 (1990).
  26. Thurlbeck, W. M. Internal surface area and other measurements in emphysema. Thorax. 22 (6), 483-496 (1967).
  27. Wright, J. L., et al. Airway remodeling in the smoke exposed guinea pig model. Inhalation Toxicology. 19 (11), 915-923 (2007).
  28. Limjunyawong, N., Mock, J., Mitzner, W. Instillation and Fixation Methods Useful in Mouse Lung Cancer Research. Journal of Visualized Experiments. (102), e52964 (2015).
  29. Roos, A. B., Berg, T., Ahlgren, K. M., Grunewald, J., Nord, M. A method for generating pulmonary neutrophilia using aerosolized lipopolysaccharide. Journal of Visualized Experiments. (94), (2014).
  30. Laucho-Contreras, M. E., Taylor, K. L., Mahadeva, R., Boukedes, S. S., Owen, C. A. Automated measurement of pulmonary emphysema and small airway remodeling in cigarette smoke-exposed mice. Journal of Visualized Experiments. (95), 52236 (2015).
  31. Nakanishi, Y., et al. Clarithromycin prevents smoke-induced emphysema in mice. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 179 (4), 271-278 (2009).
  32. Maeno, T., et al. CD8+ T Cells are required for inflammation and destruction in cigarette smoke-induced emphysema in mice. Journal of Immunology. 178 (12), 8090-8096 (2007).
  33. Sato, M., et al. Optimal fixation for total preanalytic phase evaluation in pathology laboratories: a comprehensive study including immunohistochemistry, DNA, and mRNA assays. Pathology International. 64 (5), 209-216 (2014).
check_url/58197?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Karasutani, K., Baskoro, H., Sato, T., Arano, N., Suzuki, Y., Mitsui, A., Shimada, N., Kodama, Y., Seyama, K., Fukuchi, Y., Takahashi, K. Lung Fixation under Constant Pressure for Evaluation of Emphysema in Mice. J. Vis. Exp. (151), e58197, doi:10.3791/58197 (2019).

View Video