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Methodenartikel

Quantifizierung der Leukozyten Egress über Lymphgefäße aus murinen Haut und Tumoren

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DOI:

10.3791/58704

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7. Januar 2019

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In diesem Artikel

Zusammenfassung

Hier zeigen wir die Methoden zur in Vivo Quantifizierung der Leukozyten Ausstieg aus naiv, entzündet, und bösartigen murinen Haut. Wir führen einen direkten Vergleich der beiden Modelle: transdermale FITC Anwendung und in Situ Ladungszustand. Darüber hinaus zeigen wir den Nutzen der Ladungszustand für die Verfolgung von Leukozyten Egress von kutanen Tumoren.

Zusammenfassung

Leukozyten-Ausstieg aus den peripheren Geweben, Lymphknoten ist nicht nur wichtig für die Immunüberwachung und Einleitung, sondern trägt auch zur Lösung der peripheren Gewebe Antworten. Während eine Vielzahl von Methoden werden verwendet, um die Leukozyten Ausstieg aus den nicht-lymphatischen, peripheren Geweben zu quantifizieren, bleiben die zellulären und molekularen Mechanismen, die Kontext-abhängige ausgehenden Regeln schlecht verstanden. Hier beschreiben wir die Verwendung von in Situ Ladungszustand für Quantitative Analyse der Leukozyten Ausstieg aus murinen Haut und Tumoren. Ladungszustand ermöglicht die direkte Kennzeichnung von Leukozyten in Hautgewebe aufhalten. Obwohl die Exposition der Haut gegenüber UV-Licht induziert lokale Entzündungsreaktionen Leukozyten Infiltrate und geprägt vaskulären Undichtigkeit in einem Direktvergleich mit transdermalen Anwendung von fluoreszierenden Tracern Ladungszustand speziell wandernde dendritische Zellenbevölkerungen beschriftet und aktiviert gleichzeitig die Quantifizierung der myeloischen und lymphatischen Egress von kutanen Mikroumgebungen und Tumoren. Die Mechanismen der Leukozyten Egress bleiben eine fehlende Komponente in unserem Verständnis der intratumorale Leukozyten Komplexität und damit die Anwendung der hier beschriebenen Tools bieten einzigartige Einblicke in die Dynamik der Tumor immun Mikroumgebungen beide im Steady State und im Ansprechen auf die Therapie.

Einleitung

Periphere Gewebe Immunantworten sind geprägt durch Leukozyten Einstellung zu den Standorten von Entzündungen, sondern auch durch Mechanismen, die ihre spätere Aufbewahrung zu Regeln. Somit richtet sich schützende Immunität durch kumulative zellulären und molekularen Mechanismen, die bestimmen, ob ein Leukozyten eingibt, Aufenthalte innerhalb, oder besser gesagt aus peripheren Gewebe über Lymphgefäße migriert. Wichtig ist, ist die Neigung für Leukozyten Gewebe durch Lymphgefäße (genannt Egress) beenden ihre speziellen Funktionen verbunden. Dendritische Zellen (DC) erwerben Wanderungsverhalten in Reaktion auf Reifung Signale führt zu Antigen-Transport und Präsentation i....

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Protokoll

Alle tierischen Protokolle wurden von den institutionellen Animal Care und Use Committee an der Oregon Health & Science University genehmigt.

1. Induktion von Entzündungen und FITC Malerei der Maus Pinna

  1. In einem Laminar-Flow-Haube, betäuben Mausklick C57Bl/6 mit verdampftem Isofluorane (bei 3-5 % Isofluorane induzieren und pflegen auf 1-3 % Isofluorane; Sauerstoff Durchflussmenge bei 0,5-1,0 L/min). Richtige Anesthetization zu gewährleisten, durch die Überwachung des Verlust Pedal-Reflex, unwillkürliche Bewegungen und reduzierte Atemfrequenz.
  2. Legen Sie ein Ohr flach mit der Bauchseite das Ohr nach oben. Pipettieren 20 µ....

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Ergebnisse

Zuerst wollten wir replizieren Ladungszustand Ergebnisse veröffentlicht in der Literatur zu bewerten die Effizienz und die damit verbundenen Entzündung in der Maus Haut festzulegen. Der Ohr-Pinna 100 mW UV-Licht ausgesetzt war (405 nm) für 3 min33wie zuvor beschrieben. Einzelne Zellsuspensionen generiert aus dem Ohr Haut oder zervikalen dLNs unmittelbar nach der Exposition einen 78 % Wirkungsgrad von allen CD45 offenbart+ Leukozyten in der Haut mit keine.......

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Diskussion

Obwohl der Leukozyten Egress von peripheren, nicht-lymphatischen Geweben für die Initiierung und Auflösung der Immunantwort ankommt, sind die molekularen Mechanismen, die ausgehenden Regeln kaum erforscht. Diese Wissenslücke ist vor allem auf hohe Verfügbarkeit von Werkzeugen für die Quantifizierung in Vivo. Hier beschreiben wir die Verwendung von Photoconvertible Mäusen (Kaede-Tg) zu quantifizieren endogenen Leukozyten Austritt aus der Haut und Tumoren eine direkte Direktvergleich mit FITC-Lack in entzündliche .......

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Offenlegungen

Die Autoren haben keine Konflikte offenzulegen.

Danksagungen

Die Autoren möchten Dr. Marcus Bosenberg danken für die Bereitstellung YUMM 1.1 und 1.7 YUMM murinen Melanom Linien und Dr. Deborah J. Fowell für die Bereitstellung von B6. CG-Tg(CAG-tdKaede) 15Utr Mäuse im Einvernehmen mit RIKEN BRC durch nationale Bio-Ressource des MEXT, Japan.

....

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
Kollagenase DRoche11088866001
DNaseRoche4536282001
Silver-LED-405B Lichtquelle mit optischer Faser und KollimtorPrizmatix LtdV8144
Fluorescein isothiocyanat Isomer ISigma-AldrichF4274
DibutylphthalatSigma-Aldrich524980
AcetonMacron Fine Chemicals2440-02
29-Gauge-SpritzenExel International26029
Evans BlueSigma-AldrichE2129
70 μm ZellsiebeVWR732-2758
ParaformaldehydSigma-AldrichP6148
HBSSCaissonHBL06
LIVE/DEAD Fixable Aqua Dead Cell Stain KitInvitrogenL34966
Purified Anti-Mouse CD16/CD32Tonbo Biosciences70-0161-M001
BV605 CD11c (Klon N418)Biolegend117334
PerCP-Cy5.5 MHCII (Klon M5/114.15.2)BD Pharmingen562363
BV421 CD3e (Klon 145-2C11)Biolegend100341
APC CD8a (Klon 53-6.7)TonBo Biosciences20-0081-u100
APC-Cy7 CD45 (Klon 30-F11)Biolegend103116
BV650 CD19 (Klon 6D5)Biolegend115541
PercCP-Cy5.5 Ly6C (Klon HK1.4)Biolegend128011
Alexa Fluor 647 F4/80 (Klon BM8)Biolegend123121
APC-Cy7 Ly6G (Klon 1A8)Biolegend127623
BV711 CD11b (Klon M1/70)Biolegend101241
BV605 CD45 (Klon 30-F11)Biolegend103155
BV711 CD4 (Klon RM4-5)BD Biosciences563726
Rinderserumalbumin (Fraktion V)Fisher ScientificBP1600-100
Anit-Ratte und Anti-Hamster Igk / Negativkontrolle Kompensation PartikelsetBD Biosciences552845
Fortessa DurchflusszytometerBD Biosciences
FlowJo v10 SoftwareFlowJo

Referenzen

  1. Banchereau, J., Steinman, R. M. Dendritic cells and the control of immunity. Nature. 392 (6673), 245-252 (1998).
  2. Hampton, H. R., Bailey, J., Tomura, M., Brink, R., Chtanova, T. Microbe-dependent lymphatic migration of neutrophils modulates lymphocyte proliferation in l....

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Nachdrucke und Genehmigungen

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