Summary

Intramucosal vaksinasjon av Squamous celle Carcinoma celler i mus for svulst immun profilering og behandling respons vurdering

Published: April 22, 2019
doi:

Summary

Her presenterer vi en reproduserbar metode for å utvikle en orthotopic murint modell av hodet og nakken squamous celle carcinoma. Svulster viser klinisk relevante histopathological funksjoner av sykdommen, inkludert nekrose, dårlig differensiering, knutepunktet metastaser og immun infiltrasjon. Svulst-bærende mus utvikle klinisk relevante symptomer inkludert dysfagi, kjeven forskyvning og vekttap.

Abstract

Hodet og nakken squamous celle carcinoma (HNSCC) er en ødeleggende og dødelig sykdom med høy prevalens regelmessighet og behandling feil. For å utvikle bedre strategier, forståelse svulst microenvironmental faktorer som bidrar til behandling motstanden er viktig. Et stort hinder å forstå sykdom mekanismer og forbedre terapi har vært en mangel på murine linjer som ligner den aggressive og metastatisk naturen menneskelige HNSCCs. Videre fleste murine modeller ansette subkutan implantations av svulster som mangler viktige fysiologiske funksjoner i hodet og nakken regionen, inkludert vaskulær kompakt, omfattende lymfatisk blodkar og bosatt mucosal flora. Formålet med denne studien er å utvikle og karakterisere en orthotopic modell av HNSCC. Vi bruker to genetisk distinkte murine cellelinjer og etablerte svulster i bukkal mucosa mus. Vi optimaliserer collagenase-baserte svulst fordøyelsen metoder for optimal utvinning av enkeltceller fra etablerte svulster. Dataene som presenteres her viser at mus utvikle svært Stangeriaceae svulster som metastase til regionale lymfeknuter. Encellede multiparametric masse cytometri analyse viser tilstedeværelse av forskjellige immun befolkningsgrupper med myeloide celler som representerer fleste av alle immunceller. Modellen foreslått i denne studien har programmer i kreft biologi, svulst immunologi og prekliniske utvikling av romanen therapeutics. Likheten med orthotopic modellen til kliniske funksjoner for menneskelig sykdom vil gi et verktøy for forbedret oversettelse og bedre pasientens utfall.

Introduction

HNSCC er den femte vanligste malignancy globalt, med over 600 000 pasienter diagnostisert årlig1. Til tross for aggressiv behandling med kjemoterapi og strålebehandling (RT), total (OS) overlevelse for HNSCC pasienter uten humant papillomavirus (HPV)-infeksjon fortsatt under 50% etter 5 år2. Dette skyldes i stor grad til en svært komplekse svulst microenvironment som svulster kan stamme fra flere forskjellige anatomiske steder i hodet og nakken regionen, inkludert bukkal mucosa, tunge, gulv av munnen, nasal hulheten, munnhulen, svelg, oropharynx og hypopharynx. I tillegg hodet og nakken regionen er svært Stangeriaceae og inneholder nesten halvparten av alle lymfeknuter i kroppen3. Et flertall av studier undersøker hodet og nakken svulst biologi bruker svulst modeller i regionen flanke. Slike modeller kan gi innsikt i svulst-innebygde mekanismer, men mangel på det opprinnelige hodet og nakken microenvironment kan betydelig påvirke translasjonsforskning potensialet i slike funn. En metode som er brukt til å indusere muntlig svulster er gjennom eksponering til kreftfremkallende 9,10-dimethyl-1,2-benzanthracene (DMBA)4. Men denne metoden er forbundet med en lang prosess, forårsaker svulster i rotter og hamstere, men ikke i mus, og den resulterende svulst ikke har mange av de histologiske differensiert SCCs5,6. Introduksjonen av carcinogen4-nitroquinoline 1-oksid (4-NQO), en vannløselig kinolin derivat, resulterte i musen muntlig svulster når brukt muntlig, men også led av lange eksponeringstider (16 uker) og en begrenset ta innenfor og mellom grupper mus7,8,9. For å utvikle klinisk relevante modeller, benyttet flere grupper genmodifiserte modeller som involverer manipulering av driveren oncogenes eller tumor suppressor gener, inkludert TP53, TGFB, KRAS, HRAS og SMAD410. Disse modellene kan tilby innsikt svulster med kjente driveren gener, men er recapitulate ikke den komplekse heterogeniteten av menneskelig HNSCCs.

I dette arbeidet viser vi muligheten til å utføre en intramucosal vaksinering squamous celle carcinoma celler i mus. Inokulerte cellene utvikle i aggressiv svulst innen 1 uke etter injeksjon. Ligner menneskelige HNSCCs, svulstene metastase til regionale lymfeknuter. Vi karakteriserer histologiske og kliniske funksjoner av sykdommen og gi innsikt i svulst immun microenvironment. Vi foreslår at denne orthotopic modell av HNSCC har programmer i kreft biologi, svulst immunologi og prekliniske studier. Mekanismer for immun evasion, svulst progresjon, behandling motstand og metastaser representerer områder av klinisk betydning som kan løses ved hjelp av foreslåtte modellen.

Protocol

Alle dyr prosedyrer ble utført i samsvar med en godkjent institusjonelle dyr omsorg og bruk committee (IACUC) protokoll fra University of Colorado Denver (protocol # 00250). 1. svulst cellekultur Merk: B4B8 og LY2 linjer ble brukt til å generere orthotopic HNSCC svulster: B4B8 tumorceller var avledet fra karsinogen-forvandlet mucosal keratinocytter (fra BALB/C mus)11. LY2 tumorceller var avledet fra lymfeknute metastaser et s…

Representative Results

I vitro vurdering av LY2 og B4B8 celle spredning viste at begge linjer har samme dobling tid (21 h og 23 h, henholdsvis). In vivo, begge cellelinjer dannet en enkelt, synlig og håndgripelig masse 1 uke etter vaksinering (figur 1A). I mus med LY2 svulster, var kjeven fortrengt av 3 uker på grunn av svulst byrden (figur 1A). Kontroll mus som ikke fikk kreftceller utvikle ikke svulster som forventet. LY2 svulster vokste på en hø…

Discussion

Grundige analyser og karakterisering av svulst microenvironment representerer en viktig strategi for forståelse mekanismer av tumor utvikling, progresjon og metastaser og utviklingen av effektive behandlingsformer. Hode og nakke kreft er en komplisert sykdom som kan stamme fra flere anatomiske områder i hodet og nakken regionen. Et stort hinder å forstå sykdom mekanismer og forbedre terapi har vært en mangel på murine musen linjer som ligner den aggressive og metastatisk naturen menneskelige HNSCCs. Videre ansette …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Ingen

Materials

Collagenase III Worthington Biochemical Corp. LS004183
DNase I Worthington Biochemical Corp. LS006328
Fc Block (CD16/32) BD Biosciences 553141  Clone 2.4G2 
Flow Cytometry Staining Buffer eBioscience 00-4222-26
HBSS ThermoFisher Scientific 14175079 no calcium, no magnesium, no pheno red
Helois mass cytometer Fluidigm NA
Matrigel membrane matrix Corning  CB-40234B
MRI Scanner Bruker NA 7.4 Tesla
RBC lysis buffer BioLegend 420301
Trypsin inhibitor Worthington Biochemical Corp. LS002830

References

  1. Chaturvedi, A. K., et al. Worldwide trends in incidence rates for oral cavity and oropharyngeal cancers. Journal of Clinical Oncology. 31 (36), 4550-4559 (2013).
  2. Ang, K. K., Sturgis, E. M. Human papillomavirus as a marker of the natural history and response to therapy of head and neck squamous cell carcinoma. Seminars in Radiation Oncology. 22 (2), 128-142 (2012).
  3. Amin, M. B., et al. The Eighth Edition AJCC Cancer Staging Manual: Continuing to build a bridge from a population-based to a more "personalized" approach to cancer staging. CA: A Cancer Journal for Clinicians. 67 (2), 93-99 (2017).
  4. Salley, J. J. Experimental carcinogenesis in the cheek pouch of the Syrian hamster. Journal of Dental Research. 33 (2), 253-262 (1954).
  5. Morris, A. L. Factors influencing experimental carcinogensis in the hamster cheek pouch. Journal of Dental Research. 40, 3-15 (1961).
  6. MacDonald, D. G. Comparison of epithelial dysplasia in hamster cheek pouch carcinogenesis and human oral mucosa. Journal of Oral Pathology & Medicine. 10 (3), 186-191 (1981).
  7. Hawkins, B. L., et al. 4NQO carcinogenesis: a mouse model of oral cavity squamous cell carcinoma. Head & Neck. 16 (5), 424-432 (1994).
  8. Tang, X. H., Knudsen, B., Bemis, D., Tickoo, S., Gudas, L. J. Oral cavity and esophageal carcinogenesis modeled in carcinogen-treated mice. Clinical Cancer Research. 10 (1 Pt 1), 301-313 (2004).
  9. Vered, M., Yarom, N., Dayan, D. 4NQO oral carcinogenesis: animal models, molecular markers and future expectations. Oral Oncology. 41 (4), 337-339 (2005).
  10. Bornstein, S., et al. Smad4 loss in mice causes spontaneous head and neck cancer with increased genomic instability and inflammation. Journal of Clinical Investigation. 119 (11), 3408-3419 (2009).
  11. Thomas, G. R., Chen, Z., Oechsli, M. N., Hendler, F. J., Van Waes, C. Decreased expression of CD80 is a marker for increased tumorigenicity in a new murine model of oral squamous-cell carcinoma. International Journal of Cancer. 82 (3), 377-384 (1999).
  12. Yuspa, S. H., Hawley-Nelson, P., Koehler, B., Stanley, J. R. A survey of transformation markers in differentiating epidermal cell lines in culture. Cancer Research. 40 (12), 4694-4703 (1980).
  13. Chen, Z., Smith, C. W., Kiel, D., Van Waes, C. Metastatic variants derived following in vivo tumor progression of an in vitro transformed squamous cell carcinoma line acquire a differential growth advantage requiring tumor-host interaction. Clinical & Experimental Metastasis. 15 (5), 527-537 (1997).
  14. Euhus, D. M., Hudd, C., LaRegina, M. C., Johnson, F. E. Tumor measurement in the nude mouse. Journal of Surgical Oncology. 31 (4), 229-234 (1986).
  15. Tomayko, M. M., Reynolds, C. P. Determination of subcutaneous tumor size in athymic (nude) mice. Cancer Chemotherapy and Pharmacology. 24 (3), 148-154 (1989).
  16. Yushkevich, P. A., et al. User-guided 3D active contour segmentation of anatomical structures: significantly improved efficiency and reliability. NeuroImage. 31 (3), 1116-1128 (2006).
  17. Dutta, S., et al. The relationship between tumour necrosis, tumour proliferation, local and systemic inflammation, microvessel density and survival in patients undergoing potentially curative resection of oesophageal adenocarcinoma. Britisch Journal of Cancer. 106 (4), 702-710 (2012).
  18. Li, H., et al. Genomic analysis of head and neck squamous cell carcinoma cell lines and human tumors: a rational approach to preclinical model selection. Molecular Cancer Research. 12 (4), 571-582 (2014).
  19. Walsh, N. C., et al. Humanized Mouse Models of Clinical Disease. Annual Review of Pathology. 12, 187-215 (2017).
  20. Oweida, A., et al. Ionizing radiation sensitizes tumors to PD-L1 immune checkpoint blockade in orthotopic murine head and neck squamous cell carcinoma. OncoImmunology. 6 (10), e1356153 (2017).
  21. Ferris, R., et al. Further evaluations of nivolumab (nivo) versus investigator’s choice (IC) chemotherapy for recurrent or metastatic (R/M) squamous cell carcinoma of the head and neck (SCCHN): CheckMate 141. Journal of Clinical Oncology. 34, (2016).
  22. Ferris, R. L., et al. Nivolumab for Recurrent Squamous-Cell Carcinoma of the Head and Neck. The New England Journal of Medicine. 375 (19), 1856-1867 (2016).
  23. Harrington, K. J., et al. Nivolumab versus standard, single-agent therapy of investigator’s choice in recurrent or metastatic squamous cell carcinoma of the head and neck (CheckMate 141): health-related quality-of-life results from a randomised, phase 3 trial. The Lancet Oncology. 18 (8), 1104-1115 (2017).
  24. Kiyota, N., et al. A randomized, open-label, Phase III clinical trial of nivolumab vs. therapy of investigator’s choice in recurrent squamous cell carcinoma of the head and neck: A subanalysis of Asian patients versus the global population in checkmate 141. Oral Oncology. 73, 138-146 (2017).
  25. Ling, D. C., Bakkenist, C. J., Ferris, R. L., Clump, D. A. Role of Immunotherapy in Head and Neck Cancer. Seminars in Radiation Oncology. 28 (1), 12-16 (2018).
  26. Perri, F., et al. Radioresistance in head and neck squamous cell carcinoma: Biological bases and therapeutic implications. Head & Neck. 37 (5), 763-770 (2015).
  27. Yamamoto, V. N., Thylur, D. S., Bauschard, M., Schmale, I., Sinha, U. K. Overcoming radioresistance in head and neck squamous cell carcinoma. Oral Oncology. 63, 44-51 (2016).
  28. Bonner, J. A., et al. Radiotherapy plus cetuximab for locoregionally advanced head and neck cancer: 5-year survival data from a phase 3 randomised trial, and relation between cetuximab-induced rash and survival. The Lancet Oncology. 11 (1), 21-28 (2010).
  29. Bhatia, S., et al. Inhibition of EphB4-Ephrin-B2 Signaling Enhances Response to Cetuximab-Radiation Therapy in Head and Neck Cancers. Clinical Cancer Research. 24 (18), 4539-4550 (2018).
  30. Bhatia, S., et al. Enhancing radiosensitization in EphB4 receptor-expressing Head and Neck Squamous Cell Carcinomas. Scientific Reports. 6, 38792 (2016).
  31. Tang, C., et al. Combining radiation and immunotherapy: a new systemic therapy for solid tumors?. Cancer Immunology Research. 2 (9), 831-838 (2014).
  32. Oweida, A., et al. Resistance to radiotherapy and PD-L1 blockade is mediated by TIM-3 upregulation and regulatory T-cell infiltration. Clinical Cancer Research. , (2018).
check_url/59195?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Oweida, A. J., Bhatia, S., Van Court, B., Darragh, L., Serkova, N., Karam, S. D. Intramucosal Inoculation of Squamous Cell Carcinoma Cells in Mice for Tumor Immune Profiling and Treatment Response Assessment. J. Vis. Exp. (146), e59195, doi:10.3791/59195 (2019).

View Video