Summary

Intramucosal inokulering av skivepitelcancer celler i möss för tumör immun profilering och svar bedömning

Published: April 22, 2019
doi:

Summary

Här presenterar vi en reproducerbar metod för att utveckla en ortotop murina modell av huvud och hals skivepitelcancer. Tumörer visar kliniskt relevanta histopatologiska funktioner av sjukdomen, inklusive nekros, dålig differentiering, nodal metastaser och immun infiltration. Tumör-bärande möss utvecklar kliniskt relevanta symtom inklusive dysfagi, käken förskjutning och viktminskning.

Abstract

Huvud och hals skivepitelcancer (SchH) är en försvagande och dödliga sjukdom med hög prevalens av upprepning och behandlingssvikt. För att utveckla bättre terapeutiska strategier, förståelse tumör microenvironmental faktorer som bidrar till behandling motståndet är viktigt. Ett stort hinder för att förstå sjukdomsmekanismer och förbättra terapi har varit en brist murina cellinjer som liknar den aggressiva och metastaserande karaktären av mänskliga HNSCCs. Dessutom sysselsätter en majoritet av murina modeller subkutan implantationer av tumörer som saknar viktiga fysiologiska funktioner i regionen huvud och hals, inklusive hög vaskulär densitet, omfattande lymfatiska kärl och bosatt slemhinnor flora. Syftet med denna studie är att utveckla och karakterisera en ortotop modell av SchH. Vi använder två genetiskt distinkta murina cellinjer och etablerade tumörer hos möss buckala slemhinna. Vi optimerar kollagenas-baserade tumör matsmältningen metoder för optimal återhämtning av enstaka celler från etablerade tumörer. De data som presenteras här visar att möss utvecklar högt vaskulariserad tumörer som metastaser till regionala lymfkörtlar. Encelliga multiparametric massa flödescytometri analys visar förekomsten av olika immun befolkningsgrupper med myeloida celler som representerar majoriteten av alla immunceller. Den modell som föreslås i denna studie har tillämpningar inom Cancerbiologi, tumör immunologi och preklinisk utveckling av nya behandlingar. Likheten av ortotop modellen till kliniska drag av mänskliga sjukdomar ger ett verktyg för förbättrad översättning och förbättrade behandlingsresultat.

Introduction

SchH är den femte vanligaste malignitet globalt, med över 600 000 patienter diagnostiseras årligen1. Trots aggressiv behandling med kemoterapi och strålbehandling (RT), förblir den totala överlevnaden (OS) för SchH patienter utan humant papillomvirus (HPV) infektion under 50% efter 5 år2. Detta tillskrivs i hög grad en mycket komplex tumör närmiljön som tumörer kan komma från flera olika anatomiska platser inom regionen huvud och hals, inklusive buckala slemhinna, tunga, golvet i munnen, näshålan, munhålan, svalget, orofarynx och hypofarynx. Dessutom regionen huvud och hals är högt vaskulariserad och innehåller nästan hälften av alla lymfkörtlar i kroppen3. En majoritet av studier som undersöker huvud och hals tumörbiologi lita på tumör modeller i regionen flanken. Sådana modeller kan erbjuda inblick i tumör-inneboende mekanismer, men avsaknaden av den infödda huvud och hals närmiljön kan avsevärt påverka translationell potentialen för sådana slutsatser. En metod som har använts för att framkalla muntliga tumörer är genom exponering för cancerframkallande 9,10-dimetyl-1,2-benzanthracene (DMBA)4. Denna metod är dock associerade med en utdragen process, inducerar tumörer hos råttor och hamstrar men inte i möss, och de resulterande tumörerna inte besitter många av de histologiska funktionerna av differentierade SCCs5,6. Införandet av den carcinogen4-nitroquinoline 1-oxiden (4-NQO), ett vattenlösligt kinolon derivat, resulterade i mus muntliga tumörer när tillämpas muntligen men också lidit av långa exponeringstider (16 veckor) och en begränsad ta kurs inom och mellan serier möss7,8,9. För att utveckla kliniskt relevanta modeller, utnyttjade flera grupper genetiskt modifierade modeller som inbegriper manipulation av drivrutinen onkgener eller tumörsuppressorgener, inklusive TP53, TGFB, KRAS, HRAS och SMAD410. Dessa modeller kan erbjuda inblick i tumörer med kända förare gener men sammanfatta inte de komplexa heterogena mänskliga HNSCCs.

I detta arbete demonstrera vi genomförbarheten av utför en intramucosal inympning av skivepitelcancer celler i möss. Inokulerade celler utvecklas till aggressiva tumörer inom 1 vecka efter injektionen. Liknar mänskliga HNSCCs, tumörer metastasera till regionala lymfkörtlar. Vi karakterisera histologiska och kliniska funktioner av sjukdomen och ge insikt i den tumör immun mikromiljö. Vi föreslår att denna ortotop modell av SchH har tillämpningar inom Cancerbiologi, tumör immunologi och prekliniska studier. Mekanismer för immun skatteflykt, tumör progression, behandlingsresistens och metastaser representerar områden av klinisk betydelse som kan lösas med den föreslagna modellen.

Protocol

Alla djur förfaranden utfördes i enlighet med en godkänd institutionella djurens skötsel och användning kommittén (IACUC) protokoll vid University of Colorado Denver (protokoll nr 00250). 1. tumör cellkultur Obs: B4B8 och LY2 cellinjer användes för att generera ortotop SchH tumörer: B4B8 tumörceller härleddes från cancerframkallande-omvandlad slemhinnor keratinocyter (från BALB/C-möss)11. LY2 tumörceller härled…

Representative Results

In vitro-bedömningen av proliferation av LY2 och B4B8 visade att både cellinjer har liknande fördubbling gånger (21 och 23 h, respektive). In vivo, både cellinjer bildade en enda, synlig och påtaglig massa inom 1 vecka efter inympningen (figur 1A). I möss med LY2 tumörer, förflyttades käken av 3 veckor på grund av tumör börda (figur 1A). Kontroll möss som inte fått tumörceller utvecklade inte tumörer som förvän…

Discussion

Noggrann analys och karakterisering av de tumör närmiljön utgör en viktig strategi för förståelse mekanismer för tumörutveckling, progression och metastaser och för utvecklingen av effektiva behandlingar. Huvud och hals cancer är en komplex sjukdom som kan härröra från flera anatomiska platser inom regionen huvud och hals. Ett stort hinder för att förstå sjukdomsmekanismer och förbättra terapi har varit en brist murina mus cellinjer som liknar den aggressiva och metastaserande karaktären av mänskliga…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Ingen

Materials

Collagenase III Worthington Biochemical Corp. LS004183
DNase I Worthington Biochemical Corp. LS006328
Fc Block (CD16/32) BD Biosciences 553141  Clone 2.4G2 
Flow Cytometry Staining Buffer eBioscience 00-4222-26
HBSS ThermoFisher Scientific 14175079 no calcium, no magnesium, no pheno red
Helois mass cytometer Fluidigm NA
Matrigel membrane matrix Corning  CB-40234B
MRI Scanner Bruker NA 7.4 Tesla
RBC lysis buffer BioLegend 420301
Trypsin inhibitor Worthington Biochemical Corp. LS002830

References

  1. Chaturvedi, A. K., et al. Worldwide trends in incidence rates for oral cavity and oropharyngeal cancers. Journal of Clinical Oncology. 31 (36), 4550-4559 (2013).
  2. Ang, K. K., Sturgis, E. M. Human papillomavirus as a marker of the natural history and response to therapy of head and neck squamous cell carcinoma. Seminars in Radiation Oncology. 22 (2), 128-142 (2012).
  3. Amin, M. B., et al. The Eighth Edition AJCC Cancer Staging Manual: Continuing to build a bridge from a population-based to a more "personalized" approach to cancer staging. CA: A Cancer Journal for Clinicians. 67 (2), 93-99 (2017).
  4. Salley, J. J. Experimental carcinogenesis in the cheek pouch of the Syrian hamster. Journal of Dental Research. 33 (2), 253-262 (1954).
  5. Morris, A. L. Factors influencing experimental carcinogensis in the hamster cheek pouch. Journal of Dental Research. 40, 3-15 (1961).
  6. MacDonald, D. G. Comparison of epithelial dysplasia in hamster cheek pouch carcinogenesis and human oral mucosa. Journal of Oral Pathology & Medicine. 10 (3), 186-191 (1981).
  7. Hawkins, B. L., et al. 4NQO carcinogenesis: a mouse model of oral cavity squamous cell carcinoma. Head & Neck. 16 (5), 424-432 (1994).
  8. Tang, X. H., Knudsen, B., Bemis, D., Tickoo, S., Gudas, L. J. Oral cavity and esophageal carcinogenesis modeled in carcinogen-treated mice. Clinical Cancer Research. 10 (1 Pt 1), 301-313 (2004).
  9. Vered, M., Yarom, N., Dayan, D. 4NQO oral carcinogenesis: animal models, molecular markers and future expectations. Oral Oncology. 41 (4), 337-339 (2005).
  10. Bornstein, S., et al. Smad4 loss in mice causes spontaneous head and neck cancer with increased genomic instability and inflammation. Journal of Clinical Investigation. 119 (11), 3408-3419 (2009).
  11. Thomas, G. R., Chen, Z., Oechsli, M. N., Hendler, F. J., Van Waes, C. Decreased expression of CD80 is a marker for increased tumorigenicity in a new murine model of oral squamous-cell carcinoma. International Journal of Cancer. 82 (3), 377-384 (1999).
  12. Yuspa, S. H., Hawley-Nelson, P., Koehler, B., Stanley, J. R. A survey of transformation markers in differentiating epidermal cell lines in culture. Cancer Research. 40 (12), 4694-4703 (1980).
  13. Chen, Z., Smith, C. W., Kiel, D., Van Waes, C. Metastatic variants derived following in vivo tumor progression of an in vitro transformed squamous cell carcinoma line acquire a differential growth advantage requiring tumor-host interaction. Clinical & Experimental Metastasis. 15 (5), 527-537 (1997).
  14. Euhus, D. M., Hudd, C., LaRegina, M. C., Johnson, F. E. Tumor measurement in the nude mouse. Journal of Surgical Oncology. 31 (4), 229-234 (1986).
  15. Tomayko, M. M., Reynolds, C. P. Determination of subcutaneous tumor size in athymic (nude) mice. Cancer Chemotherapy and Pharmacology. 24 (3), 148-154 (1989).
  16. Yushkevich, P. A., et al. User-guided 3D active contour segmentation of anatomical structures: significantly improved efficiency and reliability. NeuroImage. 31 (3), 1116-1128 (2006).
  17. Dutta, S., et al. The relationship between tumour necrosis, tumour proliferation, local and systemic inflammation, microvessel density and survival in patients undergoing potentially curative resection of oesophageal adenocarcinoma. Britisch Journal of Cancer. 106 (4), 702-710 (2012).
  18. Li, H., et al. Genomic analysis of head and neck squamous cell carcinoma cell lines and human tumors: a rational approach to preclinical model selection. Molecular Cancer Research. 12 (4), 571-582 (2014).
  19. Walsh, N. C., et al. Humanized Mouse Models of Clinical Disease. Annual Review of Pathology. 12, 187-215 (2017).
  20. Oweida, A., et al. Ionizing radiation sensitizes tumors to PD-L1 immune checkpoint blockade in orthotopic murine head and neck squamous cell carcinoma. OncoImmunology. 6 (10), e1356153 (2017).
  21. Ferris, R., et al. Further evaluations of nivolumab (nivo) versus investigator’s choice (IC) chemotherapy for recurrent or metastatic (R/M) squamous cell carcinoma of the head and neck (SCCHN): CheckMate 141. Journal of Clinical Oncology. 34, (2016).
  22. Ferris, R. L., et al. Nivolumab for Recurrent Squamous-Cell Carcinoma of the Head and Neck. The New England Journal of Medicine. 375 (19), 1856-1867 (2016).
  23. Harrington, K. J., et al. Nivolumab versus standard, single-agent therapy of investigator’s choice in recurrent or metastatic squamous cell carcinoma of the head and neck (CheckMate 141): health-related quality-of-life results from a randomised, phase 3 trial. The Lancet Oncology. 18 (8), 1104-1115 (2017).
  24. Kiyota, N., et al. A randomized, open-label, Phase III clinical trial of nivolumab vs. therapy of investigator’s choice in recurrent squamous cell carcinoma of the head and neck: A subanalysis of Asian patients versus the global population in checkmate 141. Oral Oncology. 73, 138-146 (2017).
  25. Ling, D. C., Bakkenist, C. J., Ferris, R. L., Clump, D. A. Role of Immunotherapy in Head and Neck Cancer. Seminars in Radiation Oncology. 28 (1), 12-16 (2018).
  26. Perri, F., et al. Radioresistance in head and neck squamous cell carcinoma: Biological bases and therapeutic implications. Head & Neck. 37 (5), 763-770 (2015).
  27. Yamamoto, V. N., Thylur, D. S., Bauschard, M., Schmale, I., Sinha, U. K. Overcoming radioresistance in head and neck squamous cell carcinoma. Oral Oncology. 63, 44-51 (2016).
  28. Bonner, J. A., et al. Radiotherapy plus cetuximab for locoregionally advanced head and neck cancer: 5-year survival data from a phase 3 randomised trial, and relation between cetuximab-induced rash and survival. The Lancet Oncology. 11 (1), 21-28 (2010).
  29. Bhatia, S., et al. Inhibition of EphB4-Ephrin-B2 Signaling Enhances Response to Cetuximab-Radiation Therapy in Head and Neck Cancers. Clinical Cancer Research. 24 (18), 4539-4550 (2018).
  30. Bhatia, S., et al. Enhancing radiosensitization in EphB4 receptor-expressing Head and Neck Squamous Cell Carcinomas. Scientific Reports. 6, 38792 (2016).
  31. Tang, C., et al. Combining radiation and immunotherapy: a new systemic therapy for solid tumors?. Cancer Immunology Research. 2 (9), 831-838 (2014).
  32. Oweida, A., et al. Resistance to radiotherapy and PD-L1 blockade is mediated by TIM-3 upregulation and regulatory T-cell infiltration. Clinical Cancer Research. , (2018).
check_url/59195?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Oweida, A. J., Bhatia, S., Van Court, B., Darragh, L., Serkova, N., Karam, S. D. Intramucosal Inoculation of Squamous Cell Carcinoma Cells in Mice for Tumor Immune Profiling and Treatment Response Assessment. J. Vis. Exp. (146), e59195, doi:10.3791/59195 (2019).

View Video