Summary

Induktion og karakterisering af pulmonal hypertension hos mus ved hjælp af Hypoxi/SU5416-modellen

Published: June 03, 2020
doi:

Summary

Denne protokol beskriver induktion af pulmonal hypertension (PH) i mus baseret på eksponering for hypoxi og injektion af en VEGF receptor antagonist. Dyrene udvikler PH og højre ventrikel (RV) hypertrofi 3 uger efter indledningen af protokollen. Den funktionelle og morfometriske karakterisering af modellen præsenteres også.

Abstract

Pulmonal hypertension (PH) er en patofysiologisk tilstand, defineret ved et gennemsnitligt lungearterialtryk på over 25 mm Hg i hvile, vurderet ved højre hjertekateterisation. Et bredt spektrum af sygdomme kan føre til PH, forskellige i deres ætiologi, histopatologi, klinisk præsentation, prognose, og respons på behandling. Trods betydelige fremskridt i de seneste år er PH fortsat en uhærdet sygdom. Forståelse af de underliggende mekanismer kan bane vejen for udviklingen af nye behandlingsformer. Dyremodeller er vigtige forskningsværktøjer til at nå dette mål. I øjeblikket er der flere modeller til rådighed for recapitulating PH. Denne protokol beskriver en to-hit mus PH model. Stimuli for PH udvikling er hypoxi og injektion af SU5416, en vaskulær endotel vækstfaktor (VEGF) receptor antagonist. Tre uger efter indledningen af Hypoxi/SU5416 udvikler dyrene lunge-vaskulær remodellering, der efterligner de histopatologiske forandringer, der er observeret i human PH (overvejende gruppe 1). Vaskulær remodeling i lungecirkulationen resulterer i remodeling af højre hjertekammer (RV). Procedurerne for måling af RV-tryk (ved hjælp af den åbne brystmetode), de morfometriske analyser af RV (ved dissekere og vejning af både hjertesektriker) og de histologiske vurderinger af remodelleringen (både pulmonal ved at vurdere vaskulær remodellering og hjertebåren ved at vurdere RV-kardiomyocythypertrofi og fibrose) beskrives i detaljer. Fordelene ved denne protokol er muligheden for anvendelse både i vild type og i genetisk modificerede mus, den relativt nemme og billige gennemførelse, og den hurtige udvikling af den sygdom af interesse (3 uger). Begrænsninger af denne metode er, at mus ikke udvikler en alvorlig fænotype og PH er reversibel ved tilbagevenden til normoxia. Forebyggelse, samt terapi undersøgelser, kan nemt gennemføres i denne model, uden at det er nødvendigt at avancerede færdigheder (i modsætning til kirurgisk gnaver modeller).

Introduction

Pulmonal hypertension (PH) er en patofysiologisk tilstand, defineret ved et gennemsnitligt lungearterial (PA) tryk på over 25 mm Hg i hvile, vurderet ved højre hjertekateterisation1,2. Der er en række sygdomme, der kan føre til PH. I et forsøg på at organisere de PH-tilknyttede forhold er der udviklet flere klassifikationssystemer. Den nuværende kliniske klassificering kategoriserer de mange PH-relaterede sygdomme i 5 forskellige grupper1. Denne skelnen er vigtig, da forskellige grupper af patienter har sygdomme, der adskiller sig i deres kliniske præsentation, patologi, prognose og respons på behandling2. Tabel 1 opsummerer den nuværende klassificering suppleret med de grundlæggende histopatologiske egenskaber ved hver sygdom.

Table 1
Tabel 1: Oversigt over den kliniske klassificering af PH samt de vigtigste histopatologiske træk i grupperne. Egnethed af Hypoxi/SU5416-protokollen til modellering af PH. Denne tabel er blevet ændret fra19. PH: Pulmonal hypertension, PAH: Pulmonal arteriel hypertension

Trods betydelige fremskridt i behandlingen af PH-relaterede sygdomme, PH stadig uden en kur, med en 3-årig dødelighed spænder mellem 20% og 80%3. Dette indikerer det bydende nødvendigt behov for at forstå de underliggende mekanismer i PH og derefter udviklingen af nye behandlingsformer for at forebygge, bremse progression, og helbrede sygdommen. Dyremodeller er af afgørende betydning for dette anvendelsesområde. I øjeblikket findes der forskellige modeller til at studere PH. Den interesserede læser er henvist til de fremragende anmeldelser om dette emne2,,3,4. I betragtning af de mange forskellige sygdomme, der fører til PH, er det indlysende, at de forskellige forhold i human PH ikke kan perfekt opsummeres i én dyremodel. De tilgængelige dyremodeller kan kategoriseres i i) single-hit, ii) to-hit, iii) knockout, og iv) overexpression modeller3. I single-hit modeller, er PH induceret af en enkelt patologisk stimulus, mens to-hit modeller kombinerer to patologiske stimuli med det mål at fremkalde mere alvorlige PH og dermed tættere efterligne den komplekse menneskelige sygdom. Ud over de ætiologiske forskelle resulterer de mange stimuli i PH-modelleringsforskelle, der også afhænger af dyrenes art og genetiske baggrund4.

En af de mest almindeligt anvendte klassiske PH gnaver modeller er den kroniske hypoxi model2. Hypoxi er kendt for at fremkalde PH hos mennesker såvel som hos flere dyrearter. Hypoxi har den fordel, at det er en fysiologisk stimulus for PH (Tabel 1). Men, mens graden af hypoxi anvendes til inducerende PH i gnavere er langt mere alvorlig end hos mennesker, den enkelte fornærmelse (hypoxi) fører kun til en mild form for vaskulær remodeling. Dette efterligner ikke sværhedsgraden af den menneskelige sygdom. Tilføjelsen af en anden-hit, en ekstra stimulus for at fremkalde PH, viste lovende resultater: injektion af forbindelsen SU5416 til gnavere kombineret med hypoxisk stimulus inducerer en mere alvorlig PH fænotype2,,5,6. SU5416 er en hæmmer af vaskulær endotelvækstfaktor (VEGF) receptor-2. Det blokerer VEGF receptorer og fører til endotelcelle apoptose. Under hypoxiske tilstande stimulerer dette udbredelsen af en delmængde af apoptoseresistente endotelceller. Desuden fører SU5416 til glat muskelcelleproliferedning. Kombinationen af disse effekter resulterer i patologisk vaskulær remodeling af lungecirkulationen og fører til forhøjet PA tryk og højre ventrikulære remodeling2,5,7. Modellen blev først beskrevet hos rotter6 og senere anvendt på mus4,5,7. Musemodellen udviser mindre svær vaskulær remodeling sammenlignet med rotter. Desuden fortsætter PH, når den vender tilbage til normoxia, med at udvikle sig i rotter, mens det hos mus er delvist reversibelt.

Følgende protokol beskriver alle trin til modellering af PH i mus ved hjælp af metoden Hypoxia/SU5416 (planlægning, tidslinje, udførelse). Derudover er karakteriseringen af modellen beskrevet i denne protokol: funktionelt (ved invasivt måling af højre ventrikeltryk (RV) ved hjælp af den åbne brystteknik), morfemetrisk (ved dissekting og vejning af både højre og venstre ventrikler) samt histologisk (ved at evaluere lungevaskulær remodeling, højre ventrikelmyocyt hypertrofi og fibrose).

Alle de trin og metoder, der er beskrevet i denne protokol, kan nemt implementeres af efterforskere på ethvert oplevelsesniveau. Mens de funktionelle målinger af RV ved hjælp af det åbne bryst teknik (beskrevet her) er ikke guld standard metode i marken, det har den fordel, at det hurtigt kan læres og præcist gengives selv af en mindre erfaren eksperimentator.

Protocol

Forud for eventuelle dyreforsøg opnå den lokale institutionelle dyrepleje udvalg tilladelse. De nuværende eksperimenter blev udført efter godkendelse af Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) på Icahn School of Medicine på Mount Sinai. 1. PH induktion Under forberedelse Før du begynder undersøgelsen, omhyggeligt planlægge det eksperimentelle design. Sørg for, at mus udsættes for hypoxi på samme tidspunkt som den første SU5416-injektion. Et eksempel p…

Representative Results

I denne protokol beskriver vi i detaljer oprettelsen af Hypoxia/SU5416-modellen til at fremkalde PH i mus. Desuden beskriver vi alle de nødvendige trin til at udføre lungevaskulær og hjerteevaluering ved observationsperiodens afslutning. En oversigt over forsøgsdesignet for denne model findes i figur 1A13,14. Mus udsættes for normobarisk hypoxi (10% O2) og injiceres subkuti…

Discussion

Denne protokol beskriver, hvordan man model PH i mus ved at kombinere to patologiske stimuli: kronisk hypoxi og SU5416 injektion (Hypoxi/SU5416)18. I et forsøg på at korrelere denne musemodel med den menneskelige PH tilstand, man uundgåeligt skal se på den nuværende PH klassificering, vist i tabel 1. PH i næsten alle former er karakteriseret ved lunge vasokonstriktion og afvigende spredning af endotel og glatte muskelceller. Dette fører til forhøjet tryk i lungearterierne …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbejde blev støttet af tilskud fra American Heart Association (AHA- 17SDG3370112 og 18IPA34170258) og fra National Institutes of Health NIH K01 HL135474 til Y.S. O.B blev støttet af Deutsche Herzstiftung.

Materials

Acetic acid glacial Roth 3738.1
Acetone, Histology Grade The Lab Depot VT110D
ADVantage Pressure-Volume System Transonic ADV500
Bouin's solution Sigma Ht10132
Cautery System Fine Science Tools 18000-00
Connection tubing and valves
Cotton-Tipped Applicators Covidien 8884541300
Coverslips, 24 x50 mm Roth 1871
Data Acquisition and Analysis Emka iox2
Direct Red 80 Sigma 365548-5G
DMSO (Dimethyl Sulfoxide) Sigma Aldrich 276855
Dry ice
Dumont # 5 forceps Fine Science Tools 11251-10
Dumont # 7 Fine Forceps Fine Science Tools 11274-20
Embedding molds Sigma Aldrich E-6032
Eosin Solution Aqueous Sigma HT110216
Ethanol, laboratory Grade Carolina Biological Supply Company 861285
Fast Green FCF Sigma F7252-5G
Fine scissors Fine Science Tools 14090-09
Goat Serum invitrogen 16210-064
Heating pad  Gaymar  T/Pump
Hematoxylin 2 Thermo Scientific 7231
Hypoxic chamber Biospherix A30274P
Induction chamber DRE Veterinary 12570
Intubation catheter (i.v. catheter SurFlash (20 G x 1") ) Terumo  SR*FF2025
Iris scissors Fine Science Tools 14084-08
Isoflurane Baxter NDC-10019-360-40
Isoflurane vaporizer DRE Veterinary 12432
Mice (C57BL/6) Charles River
Needles 25 G x 5/8" BD 305122
OCT Tissue Tek 4583
PBS (Phosphate Buffered Saline) Corning 21-031-CV
Piric Acid- Saturated Solution 1.3 % Sigma P6744-1GA
Pressure volume catheter Transonic FTH-1212B-4018
Retractor Kent Scientific SURGI-5001
Static oxygen Controller ProOx 360 Biospherix P360
SU 5416 Sigma Aldrich S8442
Surgical Suture, black braided silk, 5.0 Surgical Specialties Corp.  SP116
Surgical tape 3M 1527-1
Syringe 10 ml BD 303134
Syringes with needle 1 ml BD 309626
Sytox Green Nuclein Acid Stain Thermo Scientific S7020
Tenotomy scissors Pricon 60-521
Toluol Roth 9558.3
Ventilator  CWE SAR-830/P
WGA Alexa Fluor  Thermo Scientific W11261
Xylene Roth

References

  1. Galie, N., et al. 2015 ESC/ERS Guidelines for the diagnosis and treatment of pulmonary hypertension: The Joint Task Force for the Diagnosis and Treatment of Pulmonary Hypertension of the European Society of Cardiology (ESC) and the European Respiratory Society (ERS): Endorsed by: Association for European Paediatric and Congenital Cardiology (AEPC), International Society for Heart and Lung Transplantation (ISHLT). European Heart Journal. 37 (1), 67-119 (2016).
  2. Stenmark, K. R., Meyrick, B., Galie, N., Mooi, W. J., McMurtry, I. F. Animal models of pulmonary arterial hypertension: the hope for etiological discovery and pharmacological cure. American Journal of Physiology-Lung Cell Molecular Physiology. 297 (6), 1013-1032 (2009).
  3. Maarman, G., Lecour, S., Butrous, G., Thienemann, F., Sliwa, K. A comprehensive review: the evolution of animal models in pulmonary hypertension research; are we there yet. Pulmonary Circulation. 3 (4), 739-756 (2013).
  4. Gomez-Arroyo, J., et al. A brief overview of mouse models of pulmonary arterial hypertension: problems and prospects. American Journal of Physiology-Lung Cell Molecular Physiology. 302 (10), 977-991 (2012).
  5. Ciuclan, L., et al. A novel murine model of severe pulmonary arterial hypertension. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 184 (10), 1171-1182 (2011).
  6. Taraseviciene-Stewart, L., et al. Inhibition of the VEGF receptor 2 combined with chronic hypoxia causes cell death-dependent pulmonary endothelial cell proliferation and severe pulmonary hypertension. FASEB Journal. 15 (2), 427-438 (2001).
  7. Vitali, S. H., et al. The Sugen 5416/hypoxia mouse model of pulmonary hypertension revisited: long-term follow-up. Pulmonary Circulation. 4 (4), 619-629 (2014).
  8. Breen, E. C., Scadeng, M., Lai, N. C., Murray, F., Bigby, T. D. Functional magnetic resonance imaging for in vivo quantification of pulmonary hypertension in the Sugen 5416/hypoxia mouse. Experimental Physiology. 102 (3), 347-353 (2017).
  9. Wang, Z., Schreier, D. A., Hacker, T. A., Chesler, N. C. Progressive right ventricular functional and structural changes in a mouse model of pulmonary arterial hypertension. Physiological Reports. 1 (7), 00184 (2013).
  10. Momcilovic, M., et al. Utilizing 18F-FDG PET/CT Imaging and Quantitative Histology to Measure Dynamic Changes in the Glucose Metabolism in Mouse Models of Lung Cancer. Journal of Visualized Experiment. (137), 57167 (2018).
  11. Guma, S. R., et al. Natural killer cell therapy and aerosol interleukin-2 for the treatment of osteosarcoma lung metastasis. Pediatric Blood Cancer. 61 (4), 618-626 (2014).
  12. Lattouf, R., et al. Picrosirius red staining: a useful tool to appraise collagen networks in normal and pathological tissues. Journal of Histochemistry and Cytochemistry. 62 (10), 751-758 (2014).
  13. Penumatsa, K. C., et al. Transglutaminase 2 in pulmonary and cardiac tissue remodeling in experimental pulmonary hypertension. American Journal of Physiology-Lung Cell Molecular Physiology. 313 (5), 752-762 (2017).
  14. Wang, Z., et al. Organ-level right ventricular dysfunction with preserved Frank-Starling mechanism in a mouse model of pulmonary arterial hypertension. Journal of Applied Physiology. 124 (5), 1244-1253 (2018).
  15. van de Veerdonk, M. C., Bogaard, H. J., Voelkel, N. F. The right ventricle and pulmonary hypertension. Heart Failure Reviews. 21 (3), 259-271 (2016).
  16. Emde, B., Heinen, A., Godecke, A., Bottermann, K. Wheat germ agglutinin staining as a suitable method for detection and quantification of fibrosis in cardiac tissue after myocardial infarction. European Journal of Histochemistry. 58 (4), 2448 (2014).
  17. Pena, S. D., Gordon, B. B., Karpati, G., Carpenter, S. Lectin histochemistry of human skeletal muscle. Journal of Histochemistry and Cytochemistry. 29 (4), 542-546 (1981).
  18. Bueno-Beti, C., Hadri, L., Hajjar, R. J., Sassi, Y. The Sugen 5416/Hypoxia Mouse Model of Pulmonary Arterial Hypertension. Methods in Molecular Biology. 1816, 243-252 (2018).
  19. Colvin, K. L., Yeager, M. E. Animal Models of Pulmonary Hypertension: Matching Disease Mechanisms to Etiology of the Human Disease. Journal of Pulmonary and Respiratory Medicine. 4 (4), (2014).
  20. Benza, R. L., et al. Predicting survival in pulmonary arterial hypertension: insights from the Registry to Evaluate Early and Long-Term Pulmonary Arterial Hypertension Disease Management (REVEAL). Circulation. 122 (2), 164-172 (2010).
  21. Jacob, S. W., Rosenbaum, E. E. The toxicology of dimethyl sulfoxide (DMSO). Headache. 6 (3), 127-136 (1966).
  22. Jacob, S. W., Wood, D. C. Dimethyl sulfoxide (DMSO). Toxicology, pharmacology, and clinical experience. American Journal of Surgery. 114 (3), 414-426 (1967).
  23. Abraham, D., Mao, L. Cardiac Pressure-Volume Loop Analysis Using Conductance Catheters in Mice. Journal of Visualized Experiment. (103), 52942 (2015).
  24. Ma, Z., Mao, L., Rajagopal, S. Hemodynamic Characterization of Rodent Models of Pulmonary Arterial Hypertension. Journal of Visualized Experiment. (110), 53335 (2016).
  25. Townsend, D. Measuring Pressure Volume Loops in the Mouse. Journal of Visualized Experiment. (111), 53810 (2016).
  26. Penumatsa, K. C., Warburton, R. R., Hill, N. S., Fanburg, B. L. CrossTalk proposal: The mouse SuHx model is a good model of pulmonary arterial hypertension. Journal of Physiology. 597 (4), 975-977 (2019).
check_url/59252?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Bikou, O., Hajjar, R. J., Hadri, L., Sassi, Y. Induction and Characterization of Pulmonary Hypertension in Mice using the Hypoxia/SU5416 Model. J. Vis. Exp. (160), e59252, doi:10.3791/59252 (2020).

View Video