Summary

Bruke deuteriumoksid som et ikke-invasivt, ikke-dødelig verktøy for å vurdere kroppssammensetning og vannforbruk hos pattedyr

Published: February 20, 2020
doi:

Summary

Denne artikkelen beskriver deuteriumoksidfortynningsteknikken hos to pattedyr, et insektiboer og kjøtteter, for å bestemme totalt kroppsvann, mager kroppsmasse, kroppsfettmasse og vannforbruk.

Abstract

Kroppstilstand skåre systemer og kroppen tilstand indekser er vanlige teknikker som brukes for å vurdere helsestatus eller egnethet av en art. Kroppstilstandspoengsystemer er evaluatoravhengige og har potensial til å være svært subjektive. Kroppstilstandindekser kan forvirres ved foraging, effekten av kroppsvekt, samt statistiske og inferential problemer. Et alternativ til kroppstilstand scoring systemer og kroppstilstand indekser bruker en stabil isotop som deuterium oksid for å bestemme kroppssammensetning. Deuteriumoksidfortynningsmetoden er en repeterbar, kvantitativ teknikk som brukes til å estimere kroppssammensetning hos mennesker, dyreliv og innenlandske arter. I tillegg kan deuteriumoksidfortynningsteknikken brukes til å bestemme vannforbruket til et enkelt dyr. Her beskriver vi tilpasningen av deuteriumoksidfortynningsteknikken for å vurdere kroppssammensetning i store brune (Eptesicus fuscus) og for å vurdere vannforbruket hos katter (Felis catis).

Introduction

Kroppstilstand skåre systemer og kroppen tilstand indekser er vanlige teknikker som brukes for å vurdere helsestatus eller fitness av en art1,2. Mange innenlandske og zoologiske arter har unike kroppstilstand scoring (BCS) systemer som brukes til å vurdere et dyrs muskel og overfladisk fettvev3. BCS-vurderingen er imidlertid avhengig av evaluatoren – noe som betyr at BCS er en objektiv eller semikvantitativ måling når den vurderes av en opplært evaluator. I dyrearter brukes kroppstilstandsindekser ofte i stedet for BCS og er basert på et forhold mellom kroppsmasse og kroppsmasse til underarm2. Kroppstilstand indikiditt er ofte forvirret av effekten av foraging og kan forvirres av kroppsstørrelse samt statistiske og inferential problemer4.

Et alternativ til kroppstilstand scoring systemer og kroppstilstand indekser bruker en stabil isotop for å bestemme kroppssammensetning. En vanlig brukt stabil isotop er deuteriumoksid (D2O), en ikke-radioaktiv form for vann der hydrogenatomer er deuterium isotoper. Deuteriumoksidfortynningsmetoden beskrevet i denne studien kan være en ikke-subjektiv, kvantitativ og repeterbar teknikk som brukes til å estimere kroppssammensetning hos mennesker5 og et bredt spekter av arter4,6,7. Denne teknikken kan være en fordel for å studere kroppssammensetningen i dyrelivet. For eksempel kan den brukes til å vurdere langsgående endringer i kroppssammensetning, for eksempel før og etter en ledelseshandling. Men i noen dyreliv arter deuterium oksid kan overvurdere selve vanninnholdet8. Derfor, når du tilpasser teknikken for en art, er det viktig å validere metoden ved å sammenligne deuteriumoksidmetoden med kadaveranalyse for ikke-truede arter. For truede og truede arter bør en ikke-destruktiv metode som dobbel røntgenabsorptiometry (DXA) betraktes som en alternativ sammenligningsmetode til gullstandarddestruktiv metode for fullstendig kadaveranalyse.

I tillegg til kroppssammensetning kan D2O-fortynningsteknikken brukes til å bestemme vannforbruket til et individuelt dyr9. Denne unike anvendelsen av D2O kan brukes til å svare på ikke bare forskningsspørsmål, men kan være nyttig for å vurdere vannforbruket til individuelle dyr(e) plassert i store sosiale miljøer.

Her beskriver vi tilpasningen av D2O-fortynningsteknikken for å vurdere kroppssammensetning i et insekt, store brune (Eptesicus fuscus), og for å vurdere vannforbruket i en kjøtteter, katter (Felis catis).

Protocol

Alle eksperimenter som er beskrevet her ble godkjent av University of Missouri Animal Care and Use Committee og utført under Missouri Department of Conservation (MDC) Wildlife Scientific Collection tillatelse (Tillatelse #16409 og #17649). 1. Fremstilling av steril, isotonisk, salinert D2O lagerløsning Lag en 50 ml lagerløsning på 9,0 g/l salinert D2O. Vei opp 450 mg farmasøytisk karakter NaCl og overfør alle NaCl til et 100 ml, sterilisert beger. …

Representative Results

Deuteriumoksidfortynningsteknikken kan brukes til å vurdere kroppssammensetningen av en rekke arter. For å demonstrere tilpasningsevnen rapporterer vi den første bruken av deuteriumoksidfortynningsteknikken i en nordamerikansk insektivorende flaggermusart, Eptesicus fuscus, den store brune for representative resultater. Et timingplatå ble fullført ved å ta pre- og post-D2O injeksjon blodprøver som bør gjøres med noen arter der likevektsperioden er ukjent. Det …

Discussion

Bruken av deuteriumoksid for å bestemme TBW har blitt brukt siden 1940-tallet17 og brukes hos mennesker og en rekke innenlandske og dyreliv arter4,6,7. Andre ikke-destruktive teknikker er utviklet, inkludert bioelektrisk impedansanalyse (BIA), DXA og kvantitativ magnetisk resonans (QMR). Hver metode har fordeler og ulemper som bør vurderes før du velger en bestemt metodikk for å vurdere kroppssammense…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denne forskningen ble støttet av MDC Cooperative Agreement (#416), US Forest Service Cooperative Agreement (16-JV-11242311-118), American Academy of Veterinary Nutrition og Waltham/Royal Canin, USA Grant (stipendnummer: 00049049), NIH opplæringsstipend (stipendnummer: T32OS011126), og University of Missouri Veterinary Research Scholars Program. Forfatterne takker Shannon Ehlers for å ha forhåndsanmeldt dette manuskriptet. Vi takker Dr. Robert Backus for å gi D2O standarder og tillate bruk av laboratoriet hans.

Materials

0.2 micron non-pyrogenic disk filter Argos Technologies FN32S nylon, 30mm diameter, 0.22um, sterile
1.5 mL conical microcentrifuge tubes USA Scientific 1415-9701 1.5 ml self-standing microcentrifuge tube, natural with blue cap
10 mL sterile glass vial for injection Mountainside Medical Equipment MS-SEV10 clear, sterile glass injection unit
10 mL syringe Becton Dickinson 305219 sterile 10 mL syringe individually wrapped
100 mL sterile glass vial for injection Mountainside Medical Equipment AL-SV10020 clear, sterile glass injection unit
20 gauge needle Exel 26417 needles hypodermic 20g x 1" plastic hub (yellow) / regular bevel
22 gauge needle Exel 26411 needles hypodermic 22g x 1" plastic hub (black) / regular bevel
deuterium oxide Sigma-Aldrich 151882-25G 99.9 atom % D
isofluorane Vetone 3060 fluriso isoflurane, USP
OMNIC Spectra Software ThermoFisher Scientific 833-036200 FT-IR standard software
petroleum jelly Vaseline 305212311006 Vaseline, 100% pure petroleum jelly, original, skin protectant
plastic capillary tubes Innovative Med Tech 100050 sodium heparin anticoagulant, 50 μL capacity, 30 mm length
Sealed liquid spectrophotometer SL-3 FTIR CAF2 Cell International Crystal Laboratory 0005D-875 0.05 mm Pathlength
sodium chloride EMD Millipore 1.37017 suitable for biopharmaceutical production
Thermo Electron Nicolet 380 FT-IR Spectrometer ThermoFisher Scientific 269-169400 discontinued model, newer models available

References

  1. Schiffmann, C., Clauss, M., Hoby, S., Hatt, J. M. Visual body condition scoring in zoo animals – composite, algorithm and overview approaches. Journal of Zoo Aquarium Research. 5 (1), (2017).
  2. Peig, J., Green, A. J. New perspectives for estimating body condition from mass/length data: the scaled mass index as an alternative method. Oikos. 118 (12), 1883-1891 (2009).
  3. Bissell, H. . Body Condition Scoring Resource Center. , (2017).
  4. McWilliams, S. R., Whitman, M. Non-destructive techniques to assess body composition of birds: a review and validation study. Journal of Ornithology. 154 (3), 597-618 (2013).
  5. Lukaski, H. C., Johnson, P. E. A simple, inexpensive method of determining total body water using a tracer dose of D2O and infrared absorption of biological fluids. American Journal of Clinical Nutrition. 41 (2), 363-370 (1985).
  6. Chusyd, D. E., et al. Adiposity and Reproductive Cycling Status in Zoo African Elephants. Obesity (Silver Spring). 26 (1), 103-110 (2018).
  7. Kanchuk, M. L., Backus, R. C., Calvert, C. C., Morris, J. G., Rogers, Q. R. Neutering Induces Changes in Food Intake Body Weight, Plasma Insulin and Leptin Concentrations in Normal and Lipoprotein Lipase–Deficient Male Cats. The Journal of Nutrition. 132 (6), 1730S-1732S (2002).
  8. Eichhorn, G., Visser, G. H. Technical Comment: Evaluation of the Deuterium Dilution Method to Estimate Body Composition in the Barnacle Goose: Accuracy and Minimum Equilibration Time. Physiological and Biochemical Zoology. 81 (4), 508-518 (2008).
  9. Hooper, S. E., Backus, R., Amelon, S. Effects of dietary selenium and moisture on the physical activity and thyroid axis of cats. Journal of Animal Physiolgy and Animal Nutrition (Berl). 102 (2), 495-504 (2018).
  10. Stevenson, K. T., van Tets, I. G. Dual-Energy X-Ray Absorptiometry (DXA) Can Accurately and Nondestructively Measure the Body Composition of Small, Free-Living Rodents. Physiological and Biochemical Zoology. 81 (3), 373-382 (2008).
  11. Jennings, G., Bluck, L., Wright, A., Elia, M. The use of infrared spectrophotometry for measuring body water spaces. Clinical Chemistry. 45 (7), 1077-1081 (1999).
  12. Beuth, J. M. . Body Composition, movemement phenology and habitat use of common eider along the southern new england coast. Master of Science in Biological and Environmental Sciences (MSBES) thesis. , (2013).
  13. Coplen, T. B., Hopple, J., Peiser, H., Rieder, S. Compilation of minimum and maximum isotope ratios of selected elements in naturally occurring terrestrial materials and reagents. U.S. Geological Survey Water-Resources Investigations Report 01-4222. , (2002).
  14. Karasov, W. H., Pinshow, B. Changes in lean mass and in organs of nutrient assimilation in a long-distance passerine migrant at a springtime stopover site. Physiological Zoology. 71 (4), 435-448 (1998).
  15. Hood, W. R., Oftedal, O. T., Kunz, T. H. Variation in body composition of female big brown bats (Eptesicus fuscus.) during lactation. Journal of Comparative Physiology B. 176 (8), 807-819 (2006).
  16. Backus, R. C., Havel, P. J., Gingerich, R. L., Rogers, Q. R. Relationship between serum leptin immunoreactivity and body fat mass as estimated by use of a novel gas-phase Fourier transform infrared spectroscopy deuterium dilution method in cats. American Journal of Veterinary Research. 61 (7), 796-801 (2000).
  17. Moore, F. D. Determination of Total Body Water and Solids with Isotopes. Science. 104 (2694), 157-160 (1946).
  18. Voigt, C., Cruz-Neto, A., Parsons, S., Kunz, T. H. . Ecological and Behavioral Methods in the Study of Bats. , 621-645 (2009).
  19. International Atomic Energy Agency. . Assessment of Body Composition and Total Energy Expenditure in Humans Using Stable Isotope Techniques. , (2009).
  20. International Atomic Energy Agency. . Introduction to Body Composition Assessment Using the Deuterium Dilution Technique with Analysis of Saliva Samples by Fourier Transform Infrared Spectrometry. , (2011).
  21. Shimamoto, H., Komiya, S. The Turnover of Body Water as an Indicator of Health. Journal of Physiological Anthropology and Applied Human Science. 19 (5), 207-212 (2000).
check_url/59442?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Hooper, S. E., Eshelman, A. N., Cowan, A. N., Roistacher, A., Paneitz, T. S., Amelon, S. K. Using Deuterium Oxide as a Non-Invasive, Non-Lethal Tool for Assessing Body Composition and Water Consumption in Mammals. J. Vis. Exp. (156), e59442, doi:10.3791/59442 (2020).

View Video