Summary

Atomic absorbansen spektroskopi å måle intracellulære zinc Pools i pattedyrceller

Published: May 16, 2019
doi:

Summary

Kultivert primære eller etablerte cellelinjer er ofte brukt til å ta grunnleggende biologiske og mekanistisk spørsmål som en første tilnærming før du bruker dyremodeller. Denne protokollen beskriver hvordan man skal tilberede hele celle ekstrakter og subcellulære fraksjoner for studier av sink (Zn) og andre sporstoffer med Atomic absorbansen spektroskopi.

Abstract

Overgangs metaller er essensielle mikronæringsstoffer for organismer, men kan være giftig for celler ved høye konsentrasjoner ved å konkurrere med fysiologiske metaller i proteiner og generere Redox stress. Patologiske tilstander som fører til tømming av metall eller akkumulering er årsakssammenheng mellom ulike menneskelige sykdommer. Noen eksempler er anemi, acrodermatitis enteropathica, og Wilson ‘ s og Menkes ‘ sykdommer. Det er derfor viktig å være i stand til å måle nivåene og transport av overgangs metaller i biologiske prøver med høy følsomhet og nøyaktighet for å gjøre det lettere å undersøke hvordan disse elementene bidrar til normale fysiologiske funksjoner og Toksisitet. Sink (Zn), for eksempel, er en kofaktor i mange pattedyr proteiner, deltar i signalering hendelser, og er en sekundær Messenger i cellene. I overkant, Zn er giftig og kan hemme absorpsjon av andre metaller, mens i underskudd, kan det føre til en rekke potensielt dødelige forhold.

Grafitt ovn Atomic absorpsjon spektroskopi (GF-AAS) gir en svært følsom og effektiv metode for å bestemme Zn og andre overgangen metall konsentrasjoner i ulike biologiske prøver. Elektrotermiske forstøvning via GF-AAS kvantifiserer metaller ved Forstøvende små mengder av prøver for påfølgende selektiv absorpsjon analyse ved hjelp av bølgelengde av eksitasjon av elementet av interesse. Innenfor rammene av linearitet av Beer-Lambert Law, er absorbansen av lys av metallet direkte proporsjonal med konsentrasjonen av analytt. Sammenlignet med andre metoder for å bestemme Zn innhold, oppdager GF-AAS både frie og complexed Zn i proteiner og muligens i små intracellulære molekyler med høy følsomhet i små prøve volumer. Dessuten er GF-AAS også lettere tilgjengelig enn Induktivt kombinerte plasma masse massespektrometri (ICP-MS) eller Synchrotron røntgen fluorescens. I denne metoden beskrives den systematiske prøve forberedelsen av ulike kulturperler for analyser i en GF-AAS. Variasjoner i dette sporet element ble sammenlignet i både hele cellen lysater og subcellulære fraksjoner av voksende og differensiert celler som bevis på prinsippet.

Introduction

Overgang og tungmetaller, slik som Zn, Cu, MN, og Fe, finnes naturlig i miljøet i både næringsstoffer i mat og forurensning. Alle levende organismer krever forskjellige mengder av disse mikronæringsstoffer; eksponering for høye nivåer er imidlertid skadelige for organismer. Metall oppkjøp er hovedsakelig gjennom dietten, men metaller kan også inhalert eller absorberes gjennom huden1,2,3,4,5. Det er viktig å merke seg at tilstedeværelsen av metaller i atmosfæriske partikler er økende og har vært i stor grad forbundet med helserisiko. På grunn av menneskeskapte aktiviteter har det blitt påvist økte nivåer av tungmetaller som AG, som, CD, CR, HG, ni, fe og Pb i atmosfæriske partikler, regnvann og jord6,7. Disse metaller har potensial til å konkurrere med essensielle fysiologiske sporelementer, spesielt Zn og Fe, og de induserer toksiske effekter av inaktivere grunnleggende enzymer for biologiske prosesser.

Trace element Zn er Redox nøytral og oppfører seg som en Lewis Acid i biologiske reaksjoner, noe som gjør det til en grunnleggende kofaktor nødvendig for protein folding og katalysator i over 10% av pattedyr proteiner8,9, 10andre; Følgelig er det viktig for ulike fysiologiske funksjoner8,11. Men som mange sporstoffer, det er en delikat balanse mellom disse metaller tilrettelegge normal fysiologisk funksjon og forårsaker toksisitet. I pattedyr, Zn mangler føre til anemi, vekst retardasjon, hypogonadisme, hud unormalt, diaré, alopecia, smaksforstyrrelser, kronisk betennelse, og nedsatt immun-og nevrologiske funksjoner11,12, 13,14,15,16,17,18. I overkant er Zn cytotoksisk og hemmer absorpsjon av andre essensielle metaller som kobber19,20,21.

I tillegg har noen metaller som Cu og Fe potensial til å delta i skadelige reaksjoner. Produksjon av reaktive oksygen arter (ros) via Fenton kjemi kan forstyrre monteringen av jern svovel klynge proteiner og endre lipid metabolisme22,23,24. For å hindre denne skaden, celler utnytte metall-binding chaperones og transportører for å hindre toksiske effekter. Utvilsomt, må metall homeostase være strengt kontrollert for å sikre at bestemte celletyper opprettholde riktig nivå av metaller. Av denne grunn er det et betydelig behov for å fremme teknikker for nøyaktig måling av spor metaller i biologiske prøver. I utvikling og modne organismer finnes det en differensial biologisk behov for sporstoffer på cellenivå, på ulike utviklingsmessige stadier, og i normale og patologiske tilstander. Derfor nøyaktig bestemmelse av vev og systemiske metall nivåer er nødvendig for å forstå organismal metall homeostase.

Grafitt Furnace Atomic absorpsjon massespektrometri (GF-AAS) er en svært følsom teknikk som brukes for små prøve volumer, noe som gjør det ideelt å måle overgangen og tungmetaller tilstede i biologiske og miljømessige prøver25,26 , 27 andre priser , 28. videre, på grunn av høy følsomhet av teknikken, har det vist seg å være hensiktsmessig for å studere de fine transport egenskapene til na+/K+-ATPase og mage H+/K+-ATPase ved hjelp av Xenopus oocytter som modell system29. I GF-AAS, de atomized elementene i et utvalg absorberer en bølgelengde av stråling som slippes ut av en lyskilde som inneholder metall av interesse, med absorbert stråling proporsjonal med konsentrasjonen av elementet. Elemental elektronisk eksitasjon finner sted ved absorpsjon av ultrafiolett eller synlig stråling i en kvantisert prosess som er unik for hvert grunnstoff. I en enkelt elektron prosess innebærer opptaket av et foton et elektron som beveger seg fra et lavere energi nivå til et høyere nivå i Atom-og GF-AAS bestemmer mengden av fotoner som absorberes av prøven, som er proporsjonal med antall strålings absorberende elementer atomized i grafitt røret.

Selektivitet av denne teknikken er avhengig av den elektroniske strukturen av atomer, der hvert element har en bestemt absorpsjon/utslipp Spectral linje. I tilfelle av Zn, den absorbansen bølgelengde er 213,9 NM og kan være nøyaktig skilles fra andre metaller. Overall, GF-AAS kan brukes til å kvantifisere Zn med tilstrekkelige grenser for deteksjon (LOD) og høy følsomhet og selektivitet25. Endringene i absorbert bølgelengde er integrert og presentert som topper energi absorpsjon på bestemte og isolerte bølgelengder. Konsentrasjonen av Zn i en gitt prøve beregnes vanligvis fra en standard kurve av kjente konsentrasjoner i henhold til Beer-Lambert-loven, hvor absorbansen er direkte proporsjonal med konsentrasjonen av Zn i prøven. Men å anvende Beer-Lambert-ligningen på GF-AAS-analyser viser også noen komplikasjoner. Variasjoner i forstøvning og/eller ikke-homogene konsentrasjoner av prøvene kan for eksempel påvirke metall målingene.

Metall forstøvning som kreves for GF AAS sporings element analyse består av tre grunnleggende trinn. Det første trinnet er desolvation, hvor det flytende løsemiddel er fordampet; forlater tørre forbindelser etter at ovnen når en temperatur på rundt 100 ° c. Deretter blir forbindelsene fordampet ved å varme dem fra 800 til 1 400 ° c (avhengig av elementet som skal analyseres) og bli en gass. Til slutt er forbindelsene i gass-staten atomized med temperaturer som spenner fra 1 500 til 2 500 ° c. Som diskutert ovenfor, vil økende konsentrasjoner av et metall av interesse gjengi proporsjonal økning på absorpsjon oppdages av GF-AAS, men ovnen reduserer det dynamiske spekteret av analyser, som er den arbeider spekter av konsentrasjoner som kan bestemmes av instrumentet. Således krever teknikken lave konsentrasjoner og en forsiktig bestemmelse av det dynamiske spekteret av metoden ved å bestemme LOD og grensen for linearitet (LOL) av Beer-Lambert lov. Den LOD er det minste antallet som kreves for en substans som skal oppdages, definert som tre ganger standardavviket for Zn i matrisen. Den LOL er den maksimale konsentrasjon som kan oppdages ved hjelp av Beer-Lambert lov.

I dette arbeidet beskriver vi en standard metode for å analysere nivåene av Zn i hele celle ekstrakter, cytoplasmatiske og kjernefysiske fraksjoner, og i voksende og differensiere kulturperler celler (figur 1). Vi tilpasset den raske isolering av kjerner protokollen til ulike cellulære systemer for å hindre metall tap under prøveforberedelse. Den cellulære modeller som brukes var primære myoblasts avledet fra musen satellitt celler, murine neuroblastom celler (N2A eller Neuro2A), murine 3T3 L1 adipocytter, en menneskelig ikke-tumorigene bryst epitel cellelinje (MCF10A), og epitel Madin-Darby canine nyre ( MDCK)-celler. Disse cellene ble etablert fra ulike linjene og er gode modeller for å undersøke avstamning spesifikke variasjoner av metall nivåer in vitro.

Primær myoblasts avledet fra mus satellitt celler utgjør en godt egnet in vitro modell for å undersøke skjelettlidelser muskel differensiering. Spredning av disse cellene er rask når kultivert under høye serum forhold. Differensiering i muskel avstamning blir deretter indusert av lavt serum forhold30. Den murine neuroblastom (N2A) etablerte cellelinje ble avledet fra musen neural Crest. Disse cellene presentere neuronal og Amoeboid stilk cellen morfologi. Ved differensiering stimulans, de N2A cellene presentere flere egenskaper av neurons, som neurofilamenter. N2A celler brukes til å etterforske Alzheimers sykdom, neurite utvekst, og nevrotoksisitet31,32,33. Den 3T3-L1 murine pre-adipocytter etablerte cellelinjen er vanligvis brukes til å undersøke metabolske og fysiologiske endringer forbundet med adipogenesis. Disse cellene presentere en Fibroblast-lignende morfologi, men når stimulert for differensiering, presenterer de enzymatisk aktivering forbundet med lipid syntese og triglyserider akkumulering. Dette kan observeres som morfologiske endringer for å produsere cytoplasmatiske lipid dråper34,35. MCF10A er en ikke-tumor bryst epitel cellelinje avledet fra en premenopausale kvinne med bryst fibrocystic sykdom36. Det har vært mye brukt for biokjemiske, molekylær, og cellulære studier knyttet til brystkreft som spredning, celle migrasjon, og invasjon. Den Madin-Darby canine nyre (MDCK) epitel cellelinjen har blitt mye brukt til å undersøke egenskaper og molekylære hendelser knyttet til etablering av epitel fenotype. Ved å nå samløpet, disse cellene blir polarisert og etablere celle-celle adhesjon, egenskaper av pattedyr epitel vev37.

For å teste AAS evne til å måle nivåene av Zn i pattedyrceller, analyserte vi hele og subcellulære fraksjoner (stoffer og nucleus) av disse fem cellelinjene. AAS-målinger viste ulike konsentrasjoner av Zn i disse celle typene. Konsentrasjonen var lavere i voksende og differensiering primære myoblasts (4 til 7 nmol/mg protein) og høyere i de fire etablerte cellelinjer (alt 20 til 40 nmol/mg protein). En liten ikke-signifikant økning i Zn nivåer ble påvist i å skille primære myoblasts og neuroblastom celler i forhold til voksende celler. Den motsatte effekten ble påvist i differensiert adipocytter. Men voksende 3T3-L1-celler viste høyere konsentrasjoner av metallet sammenlignet med differensiert celler. Viktigere, i disse tre cellelinjer, subcellulære fraksjonering viste at Zn er differensielt distribueres i stoffer og kjernen i henhold til metabolsk tilstand av disse cellene. For eksempel, i voksende myoblasts, N2A celler, og 3T3-L1 pre-adipocytter, et flertall av metallet er lokalisert til kjernen. Ved induksjon av differensiering ved hjelp av spesifikke celle behandlinger, Zn lokalisert til stoffer i disse tre celletyper. Interessant, viste både epitel cellelinjer høyere nivåer av Zn under spredning sammenlignet med når samløpet, der en karakteristisk stram monolag ble dannet. I voksende epitelceller, bryst cellelinjen MCF10A hadde en lik Zn fordeling mellom stoffer og kjernen, mens i nyre-avledet cellelinje, det meste av metallet var plassert i kjernen. I disse to celle typene, da cellene nådde samløpet, var Zn overveiende lokalisert til stoffer. Disse resultatene viser at GF-AAS er en svært følsom og nøyaktig teknikk for å utføre elementær analyse i lav kapasitets prøver. GF-AAS kombinert med subcellulære fraksjonering og kan tilpasses for å undersøke nivåene av sporstoffer metall elementer i ulike cellelinjer og vev.

Protocol

1. pattedyr cellekultur Generelle hensyn Følg aseptisk teknikk for pattedyr cellekultur som tidligere har gjennomgått38. Oppretthold alle cellelinjer i en fuktet 5% CO2 inkubator ved 37 ° c. Cellekultur forhold varierer for hver celle type. Det er viktig å opprettholde passende kultur forhold for hver cellelinje som brukes, som variasjoner av disse prosedyrene vil føre til avvikende fenotyper og svikt i celle kulturen. Sikr…

Representative Results

Vi testet GF-AAS evne til å påvise minutt nivåer av Zn i pattedyrceller (figur 1). Derfor, vi kultivert primære myoblasts avledet fra musen satellitt celler, og de etablerte cellelinjer N2A (neuroblastom avledet), 3T3 L1 (adipocytter), MCF10A (bryst epitel), og MDCK celler (hund nyre epitel). Først isolerte vi hele celle, cytosolic, og kjernefysiske fraksjoner av alle disse celletyper og evaluert renheten av fraksjoner av Western Blot (<strong class="xfi…

Discussion

Atomic absorbansen spektroskopi er en svært følsom metode for Zn kvantifisering i små volum/masse biologiske prøver. Den beskrevne optimaliseringen av Zn måling gjør anvendelsen av denne metoden enkel og garanterer ideelle analytiske forhold. Her, ved hjelp av GF-AAS, bestemte vi konsentrasjonen av Zn i hele celler, og i cytosolic og kjernefysiske fraksjoner, fra ulike cellelinjer. Resultatene viser at denne teknikken gjengir sammenlignes med de som oppnås ved fluorescerende sonder og ICP-MS. For eksempel, flere f…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av fakultetet mangfold Scholars Award fra University of Massachusetts Medical School til T.P.-B. N.N.-T. støttes av SEP-CONACYT, Grant 279879. J. G. N er støttet av National Science Foundation Grant DBI 0959476. Forfatterne er takknemlige for Dr. Daryl A. Bosco for å gi N2A cellelinjen og til Daniella Cangussu for sin tekniske støtte.

Materials

3-isobutyl-1-methylxanthine Sigma Aldrich I5879
Acetic Acid Sigma Aldrich 1005706
Anti Brg1-antibody (G7) Santa Cruz biotechnologies sc-17796
Anti b-tubulin-antibody (BT7R) Thermo Scientific MA5-16308
Bradford Biorad 5000205
Dexamethasone Sigma Aldrich D4902
Dulbecco's Modified Eagle's Media (DMEM) ThermoFischer-Gibco 11965092
Dulbecco's Modified Eagle's Media/Nutrient Mix (DMEM/F12) ThermoFischer-Gibco 11320033
Dulbecco's Phosphate Buffered Saline (DPBS) ThermoFischer-Gibco 14190144
Epidemal Growth Factor (EGF) Sigma Aldrich E9644
Fetal Bovine Serum (FBS) ThermoFischer-Gibco 16000044
Fibroblastic Growth Factor-Basic (FGF) (AA 10-155) ThermoFischer-Gibco PHG0024
Horse serum ThermoFischer-Gibco 16050122
Hydrocortisone Sigma Aldrich H0888
Hydrogen Peroxide (H2O2) Sigma Aldrich 95321
Insulin Sigma Aldrich 91077C
Insulin-Transferrin-Selenium-A ThermoFischer 51300044
Nitric Acid (HNO3) Sigma Aldrich 438073
Nonidet P-40 (NP-40) Thermo Scientific 85125
OptiMEM (Reduced Serum Media) ThermoFischer-Gibco 31985070
Penicillin-Streptomycin ThermoFischer-Gibco 15140148
PureCol (Collagen) Advanced BioMatrix 5005
Retionic Acid Sigma Aldrich PHR1187
Troglitazone Sigma Aldrich 648469-M
Trypsin-EDTA (0.25%), phenol red ThermoFischer-Gibco 25200056
Zinc (Zn) Pure Single-Element Standard, 1,000 µg/mL, 2% HNO3 Perkin Elmer N9300168
Established Cell Lines
3T3-L1 American Type Culture Collection CL-173
MCDK American Type Culture Collection CCL-34
MCF10A American Type Culture Collection CRL-10317
N2A American Type Culture Collection CCL-131
Equipment
Atomic Absortion spectrophotometer PerkinElmer Aanalyst 800
Bioruptor Diagnode UCD-200

References

  1. Sharma, B., Singh, S., Siddiqi, N. J. Biomedical implications of heavy metals induced imbalances in redox systems. Biomed Research International. 640754, (2014).
  2. Jaishankar, M., Tseten, T., Anbalagan, N., Mathew, B. B., Beeregowda, K. N. Toxicity, mechanism and health effects of some heavy metals. Interdisciplinary Toxicology. 7 (2), 60-72 (2014).
  3. Jan, A. T., et al. Heavy Metals and Human Health: Mechanistic Insight into Toxicity and Counter Defense System of Antioxidants. International Journal of Molecular Science. 16 (12), 29592-29630 (2015).
  4. Manutsewee, N., Aeungmaitrepirom, W., Varanusupakul, P., Imyim, A. Determination of Cd, Cu, and Zn in fish and mussel by AAS after ultrasound-assisted acid leaching extraction. Food Chemistry. 101 (2), 817-824 (2007).
  5. Pereira, C. C., de Souza, A. O., Oreste, E. Q., Vieira, M. A., Ribeiro, A. S. Evaluation of the use of a reflux system for sample preparation of processed fruit juices and subsequent determination of Cr, Cu, K, Mg, Na, Pb, and Zn by atomic spectrometry techniques. Food Chemistry. 240, 959-964 (2018).
  6. McComb, J. Q., Rogers, C., Han, F. X., Tchounwou, P. B. Rapid screening of heavy metals and trace elements in environmental samples using portable X-ray fluorescence spectrometer, A comparative study. Water, Air, & Soil Pollution. 225 (12), (2014).
  7. Borgatta, J. P., Paskavitz, A., Kim, D., Navea, J. G. Comparative evaluation of iron leach from different sources of fly ash under atmospherically relevant conditions. Environmental Chemistry. 13, 902-912 (2016).
  8. Dufner-Beattie, J., Langmade, S. J., Wang, F., Eide, D., Andrews, G. K. Structure, function, and regulation of a subfamily of mouse zinc transporter genes. Journal of Biological Chemistry. 278 (50), 50142-50150 (2003).
  9. Sekler, I., Sensi, S. L., Hershfinkel, M., Silverman, W. F. Mechanism and regulation of cellular zinc transport. Molecular Medicine. 13 (7-8), 337-343 (2007).
  10. Berg, J. M., Shi, Y. The galvanization of biology: a growing appreciation for the roles of zinc. Science. 271 (5252), 1081-1085 (1996).
  11. Kambe, T., Tsuji, T., Hashimoto, A., Itsumura, N. The Physiological, Biochemical, and Molecular Roles of Zinc Transporters in Zinc Homeostasis and Metabolism. Physiology Reviews. 95 (3), 749-784 (2015).
  12. Fukada, T., Kambe, T. Molecular and genetic features of zinc transporters in physiology and pathogenesis. Metallomics. 3 (7), 662-674 (2011).
  13. Prasad, A. S., Halsted, J. A., Nadimi, M. Syndrome of iron deficiency anemia, hepatosplenomegaly, hypogonadism, dwarfism and geophagia. American Journal of Medicine. 31, 532-546 (1961).
  14. Jinno, N., Nagata, M., Takahashi, T. Marginal zinc deficiency negatively affects recovery from muscle injury in mice. Biological Trace Element Research. 158 (1), 65-72 (2014).
  15. Gaither, L. A., Eide, D. J. Eukaryotic zinc transporters and their regulation. Biometals. 14 (3-4), 251-270 (2001).
  16. Fukada, T., Yamasaki, S., Nishida, K., Murakami, M., Hirano, T. Zinc homeostasis and signaling in health and diseases: Zinc signaling. Journal of Biological Inorganic Chemistry. 16 (7), 1123-1134 (2011).
  17. Kambe, T., Hashimoto, A., Fujimoto, S. Current understanding of ZIP and ZnT zinc transporters in human health and diseases. Cellular and Molecular Life Sciences. 71 (17), 3281-3295 (2014).
  18. Plum, L. M., Rink, L., Haase, H. The essential toxin: impact of zinc on human health. International Journal of Environmental Research and Public Health. 7 (4), 1342-1365 (2010).
  19. Broun, E. R., Greist, A., Tricot, G., Hoffman, R. Excessive zinc ingestion. A reversible cause of sideroblastic anemia and bone marrow depression. Journal of the American Medical Association. 264 (11), 1441-1443 (1990).
  20. Fischer, P. W., Giroux, A., L’Abbe, M. R. The effect of dietary zinc on intestinal copper absorption. American Journal of Clinical Nutrition. 34 (9), 1670-1675 (1981).
  21. Ogiso, T., Ogawa, N., Miura, T. Inhibitory effect of high dietary zinc on copper absorption in rats. II. Binding of copper and zinc to cytosol proteins. in the intestinal mucosa. Chemical and Pharmaceutical Bulletin (Tokyo. 27 (2), 515-521 (1979).
  22. Gaetke, L. M., Chow, C. K. Copper toxicity, oxidative stress, and antioxidant nutrients. Toxicology. 189 (1-2), 147-163 (2003).
  23. Macomber, L., Imlay, J. A. The iron-sulfur clusters of dehydratases are primary intracellular targets of copper toxicity. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 106 (20), 8344-8349 (2009).
  24. Robotham, J. L., Lietman, P. S. Acute iron poisoning. A review. American Journal of Diseases of Children. 134 (9), 875-879 (1980).
  25. Yang, W., Ni, Z., Guang, P., Xue, Y., Guang, P., Fen, X. . Recent advances in absolute analysis by graphite furnace atomic absorption spectrometry. 17 (2), 104-110 (1997).
  26. Gomez-Nieto, B., Gismera, M. J., Sevilla, M. T., Satrustegui, J., Procopio, J. R. Micro-sampling method based on high-resolution continuum source graphite furnace atomic absorption spectrometry for calcium determination in blood and mitochondrial suspensions. Talanta. 170, 15-21 (2017).
  27. Shaw, J. C., Bury, A. J., Barber, A., Mann, L., Taylor, A. A micromethod for the analysis of zinc in plasma or serum by atomic absorption spectrophotometry using graphite furnace. Clin Chim Acta. 118 (2-3), 229-239 (1982).
  28. Stevens, B. J., Hare, D. J., Volitakis, I., Cherny, R. A., Roberts, B. R. Direct determination of zinc in plasma by graphite furnace atomic absorption spectrometry using palladium/magnesium and EDTA matrix modification with high temperature pyrolysis. Journal of Analytical Atomic Spectrometry. 32 (4), 843-847 (2017).
  29. Durr, K. L., Tavraz, N. N., Spiller, S., Friedrich, T. Measuring cation transport by Na,K- and H,K-ATPase in Xenopus oocytes by atomic absorption spectrophotometry: an alternative to radioisotope assays. Journal of Visualized Experiments. (72), e50201 (2013).
  30. Conejo, R., Valverde, A. M., Benito, M., Lorenzo, M. Insulin produces myogenesis in C2C12 myoblasts by induction of NF-kappaB and downregulation of AP-1 activities. Journal of Cellular Physiology. 186 (1), 82-94 (2001).
  31. Salto, R., et al. beta-Hydroxy-beta-Methylbutyrate (HMB) Promotes Neurite Outgrowth in Neuro2a Cells. PLoS One. 10 (8), e0135614 (2015).
  32. LePage, K. T., Dickey, R. W., Gerwick, W. H., Jester, E. L., Murray, T. F. On the use of neuro-2a neuroblastoma cells versus intact neurons in primary culture for neurotoxicity studies. Critical Reviews in Neurobiology. 17 (1), 27-50 (2005).
  33. Provost, P. Interpretation and applicability of microRNA data to the context of Alzheimer’s and age-related diseases. Aging (Albany NY). 2 (3), 166-169 (2010).
  34. Green, H., Kehinde, O. An established preadipose cell line and its differentiation in culture. II. Factors affecting the adipose conversion. Cell. 5 (1), 19-27 (1975).
  35. Padilla-Benavides, T., Velez-delValle, C., Marsch-Moreno, M., Castro-Munozledo, F., Kuri-Harcuch, W. Lipogenic Enzymes Complexes and Cytoplasmic Lipid Droplet Formation During Adipogenesis. Journal of Cellular Biochemistry. 117 (10), 2315-2326 (2016).
  36. Soule, H. D., et al. Isolation and characterization of a spontaneously immortalized human breast epithelial cell line, MCF-10. Cancer Research. 50 (18), 6075-6086 (1990).
  37. Leighton, J., Estes, L. W., Mansukhani, S., Brada, Z. A cell line derived from normal dog kidney (MDCK) exhibiting qualities of papillary adenocarcinoma and of renal tubular epithelium. Cancer. 26 (5), 1022-1028 (1970).
  38. Cote, R. J. Aseptic technique for cell culture. Current Protocols in Cell Biology. , (2001).
  39. Suzuki, K., Bose, P., Leong-Quong, R. Y., Fujita, D. J., Riabowol, K. R. E. A. P. A two minute cell fractionation method. BMC Research Notes. 3, 294 (2010).
  40. Nabbi, A., Riabowol, K. Rapid Isolation of Nuclei from Cells In Vitro. Cold Spring Harbor Protocols. 2015 (8), 769-772 (2015).
  41. Bradford, M. M. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Analytical Biochemistry. 72, 248-254 (1976).
  42. Carpenter, M. C., Lo, M. N., Palmer, A. E. Techniques for measuring cellular zinc. Archive of Biochemistry and Biophysics. 611, 20-29 (2016).
  43. Paskavitz, A. L., et al. Differential expression of zinc transporters accompanies the differentiation of C2C12 myoblasts. Journal of Trace Elements in Medical Biology. 49, 27-34 (2018).
  44. Chandler, P., et al. Subtype-specific accumulation of intracellular zinc pools is associated with the malignant phenotype in breast cancer. Molecular Cancer. 15 (2), (2016).
  45. Gordon, S. J. V., Fenker, D. E., Vest, K. E., Padilla-Benavides, T. Manganese influx and expression of ZIP8 is essential in primary myoblasts and contributes to activation of SOD2. bioRxiv. , 494542 (2018).
  46. Jansen, S., Arning, J., Beyersmann, D. Zinc homeostasis in C6 glioma cells: phospholipase C activity regulates cellular zinc export. Biological Trace Element Research. 108 (1-3), 87-104 (2005).
  47. Fahrni, C. J. Biological applications of X-ray fluorescence microscopy: exploring the subcellular topography and speciation of transition metals. Current Opinion in Chemical Biology. 11 (2), 121-127 (2007).
  48. Huang, Z., Lippard, S. J. Illuminating mobile zinc with fluorescence from cuvettes to live cells and tissues. Methods in Enzymology. 505, 445-468 (2012).
  49. Qiao, W., Mooney, M., Bird, A. J., Winge, D. R., Eide, D. J. Zinc binding to a regulatory zinc-sensing domain monitored in vivo by using FRET. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 103 (23), 8674-8679 (2006).
  50. Tomat, E., Lippard, S. J. Imaging mobile zinc in biology. Current Opinion in Chemical Biology. 14 (2), 225-230 (2010).
  51. Jajda, H. M., et al. Comparative efficacy of two standard methods for determination of iron and zinc in fruits, pulses and cereals. Journal of Food Science and Technology. 52 (2), 1096-1102 (2015).
  52. Padilla-Benavides, T., Long, J. E., Raimunda, D., Sassetti, C. M., Argüello, J. M. A novel P1B-type Mn2+-transporting ATPase is required for secreted protein metallation in mycobacteria. Journal of Biological Chemistry. 288 (16), 11334-11347 (2013).
check_url/59519?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Gordon, S. J., Xiao, Y., Paskavitz, A. L., Navarro-Tito, N., Navea, J. G., Padilla-Benavides, T. Atomic Absorbance Spectroscopy to Measure Intracellular Zinc Pools in Mammalian Cells. J. Vis. Exp. (147), e59519, doi:10.3791/59519 (2019).

View Video