Præsenteret her er en trin-for-trin procedure til at fremkalde akut lungeskade i mus ved direkte intratrakeal lipopolysaccharid instillation og til at udføre FACS analyse af blodprøver, bronchoalveolær skylning væske, og lungevæv. Minimal invasivitet, enkel håndtering, god reproducerbarhed, og titrering af sygdommens sværhedsgrad er fordele ved denne tilgang.
Luftvejs administration af lipopolysaccharid (LPS) er en almindelig måde at studere lungebetændelse og akut lungeskade (ALI) i små dyremodeller. Forskellige tilgange er blevet beskrevet, såsom indånding af aerosoliserede LPS samt nasal eller intratrakeale instillation. Den præsenterede protokol beskriver en detaljeret trin-for-trin procedure til at inducere Ali i mus ved direkte intratrakeal LPS instillation og udføre FACS analyse af blodprøver, bronchoalveolær skylning (bal) væske, og lungevævet. Efter intraperitoneal sedation er luftrøret eksponeret, og LPS administreres via et 22 G venøs kateter. En robust og reproducerbar inflammatorisk reaktion med leukocyt invasion, upregulering af proinflammatoriske cytokiner, og afbrydelse af alveolo-kapillar barrieren induceres inden for timer til dage, afhængigt af den anvendte LPS dosering. Indsamling af blodprøver, BAL-væske, og lunge høst, samt behandling af FACS analyse, er beskrevet i detaljer i protokollen. Selv om brugen af den sterile LPS ikke er egnet til at studere farmakologiske interventioner i smitsomme sygdomme, den beskrevne tilgang tilbyder minimal invasivitet, enkel håndtering, og god reproducerbarhed til at besvare mekanistiske immunologiske spørgsmål. Desuden giver dosistitrering samt brug af alternative LPS præparater eller muse stammer mulighed for graduering af de kliniske virkninger, som kan udvise forskellige grader af ALI sværhedsgrad eller tidligt vs. forsinket indtræden af sygdomssymptomer.
Eksperimentelle dyremodeller er uundværlige i grundlæggende immun forskning. Administration af hele bakterier eller mikrobielle komponenter er ofte blevet brugt i små dyremodeller til at inducere lokal eller systemisk inflammation1. Lipopolysaccharid (LPS eller bakteriel endotoksin) er en cellevægkomponent og et overflade antigen af gramnegative bakterier (f. eks. Enterobacteriaceae, Pseudomonas spp. eller legionella spp.). Det termo stabile og store molekyle (molekylvægt 1-4 x 106 kDa) består af en lipid-del (lipid a), kerneregion (oligosaccharid) og et o-polysaccharid (eller o-antigen). Lipid A, med dens hydrofobe fedtsyre kæder, forankrer molekylet i en bakteriel membran og medierer (ved nedbrydning af bakterier) den immunologiske aktivitet og toksicitet af LPS. Efter binding til LPS binding protein (LBP), LPS: LBP komplekser fast CD14/TLR4/MD2 receptor kompleks placeret på overfladen af mange celletyper, inducerer en stærk proinflammatorisk reaktion med NF-κb nukleare translokation og efterfølgende Opregulering af cytokinekspression2.
Akut lungeskade (ALI) er defineret som akut hypoksimisk respirationssvigt med bilateralt lungeødem i fravær af hjerteinsufficiens3. Luftvejs administration af LPS er en almindelig måde at fremkalde pulmonal inflammation og Ali4,5,6,7. Selv om det sterile stof ikke er egnet til at studere farmakologiske interventioner i smitsomme sygdomme, kan mekanistiske immunologiske spørgsmål besvares med tilstrækkelig præcision. Instillation af LPS i luftrøret inducerer en robust inflammatorisk reaktion med leukocyt invasion, upregulering af proinflammatoriske cytokiner, og afbrydelse af alveolo-kapillar barrieren inden for timer til dage, afhængigt af LPS dosering3, 6,7.
Den præsenterede protokol beskriver en detaljeret trin-for-trin procedure til at inducere Ali i mus ved intratrakeal LPS instillation. Modellen er blevet valideret ved at vurdere cytokin-ekspression, neutrofile granulocyt-invasion og intra-alveolær albumin lækage som tidligere beskrevet8.
Minimal invasivitet, enkel håndtering, og god reproducerbarhed er centrale elementer i den præsenterede tilgang til at inducere ALI i en lille gnaver model. Brugen af LPS i stedet for hele bakterier i dyremodeller har fordele. Det er en stabil og ren sammensatte og kan opbevares i lyofiliseret form indtil brug. Det er en potent stimulerende for medfødte immunrespons via TLR4 pathway, og dens biologiske aktivitet kan let kvantificeres, lette titrering af sygdommens sværhedsgrad med god reproducerbarhed. Desuden, bruge…
The authors have nothing to disclose.
Forfatterne ønsker at takke Jan Kleiner og Susanne Schulz for at yde teknisk støtte. Forfatterne anerkender den fremragende støtte af flow cytometri kerne facilitet på det medicinske fakultet ved Bonn Universitet. Forfatterne modtog ingen støtte fra nogen ekstern organisation. En del af de data, der er angivet i resultatafsnittet og afbildet i figur 3 , er allerede vist i en tidligere publikation8.
1 ml syringes | BD, Franklin Lakes, NJ, USA | 300013 | |
10 ml syringes | BD, Franklin Lakes, NJ, USA | 309110 | |
Anti-CD115 (c-fms) APC | Thermo Fisher, Waltham, MA, USA | 17-1152-80 | |
Anti-CD11b (M1/70) – FITC | Thermo Fisher, Waltham, MA, USA | 11-0112-81 | |
Anti-CD45 (30-F11) – eF450 | Thermo Fisher, Waltham, MA, USA | 48-0451-82 | |
Anti-F4/80 (BM-8) – PE Cy7 | Thermo Fisher, Waltham, MA, USA | 25-4801-82 | |
Anti-Gr1 (RB6-8C5) | BD Biosciences, Franklin Lakes, NJ, USA | 552093 | |
Anti-Ly6C (HK1.4) PerCP-Cy5.5 | Thermo Fisher, Waltham, MA, USA | 45-5932-82 | |
Anti-Ly6G (1A8) APC/Cy7 | Bio Legend, San Diego, CA | 127623 | |
Buprenorphine hydrochloride | Indivior UK Limited, Berkshire, UK | ||
C57BL/6 mice, female, 10 – 12 weeks old | Charles River, Wilmongton, MA, USA | ||
CaliBRITE APC-beads (6µm) | BD Biosciences, Franklin Lakes, NJ, USA | 340487 | |
Canula 23 gauge 1'' | BD, Franklin Lakes, NJ, USA | 300800 | |
Canula 26 gauge 1/2'' | BD, Franklin Lakes, NJ, USA | 303800 | |
Cell strainer 70 µm | BD Biosciences, Franklin Lakes, NJ, USA | 352350 | |
Collagenase Type I | Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA | 1148089 | |
Deoxyribonuclease II | Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA | D8764 | |
Dulbecco's Phosphate Buffered Saline (PBS), sterile | Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA | D8662 | |
Dulbecco’s Phosphate Buffered Saline (PBS), without calcium chloride and magnesium chloride, sterile | Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA | D8537 | |
Ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) solution | Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA | E7889 | |
FACS tubes, 5 ml | Sarstedt, Nümbrecht, Germany | 551579 | |
Fetal calf serum (FCS) | Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA | F2442 | |
Forceps | Fine Science Tools, Heidelberg, Germany | 11049-10 | |
Isoflurane | Baxter, Unterschleißheim, Germany | ||
Ketamine hydrochloride | Serumwerk Bernburg, Bernburg, Germany | ||
Lipopolysaccharides (LPS) from Escherichia coli O111:B4 | Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA | L2630 | |
LIVE/DEAD Fixable Dead Cell Green Kit | Thermo Fisher, Waltham, MA, USA | L23101 | |
Purified Rat Anti-Mouse CD16/CD32 (Mouse BD Fc Block™), Clone 2.4G2 | BD, Franklin Lakes, NJ, USA | 553141 | |
Red blood cell lysis buffer | Thermo Fisher, Waltham, MA, USA | 00-4333-57 | |
RPMI-1640, with L-glutamine and sodium bicarbonate | Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA | R8758 | |
Scissors | Fine Science Tools, Heidelberg, Germany | 14060-09 | |
Sodium azide (NaN3) | Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA | S2002 | |
Spring scissors | Fine Science Tools, Heidelberg, Germany | 15018-10 | |
Tissue forceps | Fine Science Tools, Heidelberg, Germany | 11021-12 | |
Tubes | Eppendorf, Hamburg, Germany | 30125150 | |
Venous catheter, 22 gauge | B.Braun, Melsungen, Germany | 4268091B | |
Xylazine hydrochloride | Serumwerk Bernburg, Bernburg, Germany |