Summary

Inducerende akut lungeskade i mus ved direkte Intratracheal Lipopolysaccharid instillation

Published: July 06, 2019
doi:

Summary

Præsenteret her er en trin-for-trin procedure til at fremkalde akut lungeskade i mus ved direkte intratrakeal lipopolysaccharid instillation og til at udføre FACS analyse af blodprøver, bronchoalveolær skylning væske, og lungevæv. Minimal invasivitet, enkel håndtering, god reproducerbarhed, og titrering af sygdommens sværhedsgrad er fordele ved denne tilgang.

Abstract

Luftvejs administration af lipopolysaccharid (LPS) er en almindelig måde at studere lungebetændelse og akut lungeskade (ALI) i små dyremodeller. Forskellige tilgange er blevet beskrevet, såsom indånding af aerosoliserede LPS samt nasal eller intratrakeale instillation. Den præsenterede protokol beskriver en detaljeret trin-for-trin procedure til at inducere Ali i mus ved direkte intratrakeal LPS instillation og udføre FACS analyse af blodprøver, bronchoalveolær skylning (bal) væske, og lungevævet. Efter intraperitoneal sedation er luftrøret eksponeret, og LPS administreres via et 22 G venøs kateter. En robust og reproducerbar inflammatorisk reaktion med leukocyt invasion, upregulering af proinflammatoriske cytokiner, og afbrydelse af alveolo-kapillar barrieren induceres inden for timer til dage, afhængigt af den anvendte LPS dosering. Indsamling af blodprøver, BAL-væske, og lunge høst, samt behandling af FACS analyse, er beskrevet i detaljer i protokollen. Selv om brugen af den sterile LPS ikke er egnet til at studere farmakologiske interventioner i smitsomme sygdomme, den beskrevne tilgang tilbyder minimal invasivitet, enkel håndtering, og god reproducerbarhed til at besvare mekanistiske immunologiske spørgsmål. Desuden giver dosistitrering samt brug af alternative LPS præparater eller muse stammer mulighed for graduering af de kliniske virkninger, som kan udvise forskellige grader af ALI sværhedsgrad eller tidligt vs. forsinket indtræden af sygdomssymptomer.

Introduction

Eksperimentelle dyremodeller er uundværlige i grundlæggende immun forskning. Administration af hele bakterier eller mikrobielle komponenter er ofte blevet brugt i små dyremodeller til at inducere lokal eller systemisk inflammation1. Lipopolysaccharid (LPS eller bakteriel endotoksin) er en cellevægkomponent og et overflade antigen af gramnegative bakterier (f. eks. Enterobacteriaceae, Pseudomonas spp. eller legionella spp.). Det termo stabile og store molekyle (molekylvægt 1-4 x 106 kDa) består af en lipid-del (lipid a), kerneregion (oligosaccharid) og et o-polysaccharid (eller o-antigen). Lipid A, med dens hydrofobe fedtsyre kæder, forankrer molekylet i en bakteriel membran og medierer (ved nedbrydning af bakterier) den immunologiske aktivitet og toksicitet af LPS. Efter binding til LPS binding protein (LBP), LPS: LBP komplekser fast CD14/TLR4/MD2 receptor kompleks placeret på overfladen af mange celletyper, inducerer en stærk proinflammatorisk reaktion med NF-κb nukleare translokation og efterfølgende Opregulering af cytokinekspression2.

Akut lungeskade (ALI) er defineret som akut hypoksimisk respirationssvigt med bilateralt lungeødem i fravær af hjerteinsufficiens3. Luftvejs administration af LPS er en almindelig måde at fremkalde pulmonal inflammation og Ali4,5,6,7. Selv om det sterile stof ikke er egnet til at studere farmakologiske interventioner i smitsomme sygdomme, kan mekanistiske immunologiske spørgsmål besvares med tilstrækkelig præcision. Instillation af LPS i luftrøret inducerer en robust inflammatorisk reaktion med leukocyt invasion, upregulering af proinflammatoriske cytokiner, og afbrydelse af alveolo-kapillar barrieren inden for timer til dage, afhængigt af LPS dosering3, 6,7.

Den præsenterede protokol beskriver en detaljeret trin-for-trin procedure til at inducere Ali i mus ved intratrakeal LPS instillation. Modellen er blevet valideret ved at vurdere cytokin-ekspression, neutrofile granulocyt-invasion og intra-alveolær albumin lækage som tidligere beskrevet8.

Protocol

Denne dyre protokol blev godkendt af den lokale Komité for dyrepasning (LANUV, Recklinghausen, Tyskland; protokol nr. 84-02.04.2015) og blev udført i overensstemmelse med de nationale Institut for sundhed retningslinjer for brug af levende dyr (NIH offentliggørelse Nr. 85-23, revideret 1996). 1. ALI induktion Brug voksne C57BL/6-mus i en alder af ca. 10-12 uger. Hus dyrene i individuelt ventilerede bure med fri adgang til vand og standard gnaver Chow. Men det er muligt at udføre …

Representative Results

Den beskrevne tilgang til at inducere ALI i mus blev valideret ved at vurdere cytokinekspression, neutrofile granulocyt infiltration og alveolo-kapillar barriere forstyrrelse 24 h og 72 h efter LPS instillation. PBS-injicerede dyr tjente som kontrol. Intratracheal LPS administration inducerede en robust pulmonal proinflammatorisk respons. Ekspression af TNF-α i lungevæv var signifikant upreguleret og nåede en vedvarende og mere end 50 gange større sammenlignet med kontroldyr [RQ (TNF-α/18s); 24 h: 53,7 (SD = 11,6); …

Discussion

Minimal invasivitet, enkel håndtering, og god reproducerbarhed er centrale elementer i den præsenterede tilgang til at inducere ALI i en lille gnaver model. Brugen af LPS i stedet for hele bakterier i dyremodeller har fordele. Det er en stabil og ren sammensatte og kan opbevares i lyofiliseret form indtil brug. Det er en potent stimulerende for medfødte immunrespons via TLR4 pathway, og dens biologiske aktivitet kan let kvantificeres, lette titrering af sygdommens sværhedsgrad med god reproducerbarhed. Desuden, bruge…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne ønsker at takke Jan Kleiner og Susanne Schulz for at yde teknisk støtte. Forfatterne anerkender den fremragende støtte af flow cytometri kerne facilitet på det medicinske fakultet ved Bonn Universitet. Forfatterne modtog ingen støtte fra nogen ekstern organisation.  En del af de data, der er angivet i resultatafsnittet og afbildet i figur 3 , er allerede vist i en tidligere publikation8.

Materials

1 ml syringes BD, Franklin Lakes, NJ, USA 300013
10 ml syringes BD, Franklin Lakes, NJ, USA 309110
Anti-CD115 (c-fms) APC Thermo Fisher, Waltham, MA, USA 17-1152-80
Anti-CD11b (M1/70) – FITC Thermo Fisher, Waltham, MA, USA 11-0112-81
Anti-CD45 (30-F11) – eF450 Thermo Fisher, Waltham, MA, USA 48-0451-82
Anti-F4/80 (BM-8) – PE Cy7 Thermo Fisher, Waltham, MA, USA 25-4801-82
Anti-Gr1 (RB6-8C5) BD Biosciences, Franklin Lakes, NJ, USA 552093
Anti-Ly6C (HK1.4) PerCP-Cy5.5 Thermo Fisher, Waltham, MA, USA 45-5932-82
Anti-Ly6G (1A8) APC/Cy7 Bio Legend, San Diego, CA 127623
Buprenorphine hydrochloride Indivior UK Limited, Berkshire, UK
C57BL/6 mice, female, 10 – 12 weeks old Charles River, Wilmongton, MA, USA
CaliBRITE APC-beads (6µm) BD Biosciences, Franklin Lakes, NJ, USA 340487
Canula 23 gauge 1'' BD, Franklin Lakes, NJ, USA 300800
Canula 26 gauge 1/2'' BD, Franklin Lakes, NJ, USA 303800
Cell strainer 70 µm BD Biosciences, Franklin Lakes, NJ, USA 352350
Collagenase Type I Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA 1148089
Deoxyribonuclease II Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA D8764 
Dulbecco's Phosphate Buffered Saline (PBS), sterile Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA D8662
Dulbecco’s Phosphate Buffered Saline (PBS), without calcium chloride and magnesium chloride, sterile Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA D8537
Ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) solution Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA E7889
FACS tubes, 5 ml Sarstedt, Nümbrecht, Germany 551579
Fetal calf serum (FCS) Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA F2442
Forceps Fine Science Tools, Heidelberg, Germany 11049-10
Isoflurane Baxter, Unterschleißheim, Germany
Ketamine hydrochloride Serumwerk Bernburg, Bernburg, Germany
Lipopolysaccharides (LPS) from Escherichia coli O111:B4 Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA L2630
LIVE/DEAD Fixable Dead Cell Green Kit Thermo Fisher, Waltham, MA, USA L23101
Purified Rat Anti-Mouse CD16/CD32 (Mouse BD Fc Block™), Clone 2.4G2 BD, Franklin Lakes, NJ, USA 553141
Red blood cell lysis buffer Thermo Fisher, Waltham, MA, USA 00-4333-57
RPMI-1640, with L-glutamine and sodium bicarbonate Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA R8758
Scissors Fine Science Tools, Heidelberg, Germany 14060-09
Sodium azide (NaN3) Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA S2002
Spring scissors Fine Science Tools, Heidelberg, Germany 15018-10
Tissue forceps Fine Science Tools, Heidelberg, Germany 11021-12
Tubes Eppendorf, Hamburg, Germany 30125150
Venous catheter, 22 gauge B.Braun, Melsungen, Germany 4268091B
Xylazine hydrochloride Serumwerk Bernburg, Bernburg, Germany

References

  1. Fink, M. P. Animal models of sepsis. Virulence. 5 (1), 143-153 (2014).
  2. Lu, Y. -. C., Yeh, W. -. C., Ohashi, P. S. LPS/TLR4 signal transduction pathway. Cytokine. 42 (2), 145-151 (2008).
  3. Matute-Bello, G., Frevert, C. W., Martin, T. R. Animal models of acute lung injury. American Journal of Physiology – Lung Cellular and Molecular Physiology. 295 (3), 379-399 (2008).
  4. Rabelo, M. A. E., et al. Acute Lung Injury in Response to Intratracheal Instillation of Lipopolysaccharide in an Animal Model of Emphysema Induced by Elastase. Inflammation. 41 (1), 174-182 (2018).
  5. Liu, F., Li, W., Pauluhn, J., Trübel, H., Wang, C. Lipopolysaccharide-induced acute lung injury in rats: comparative assessment of intratracheal instillation and aerosol inhalation. Toxicology. 304, 158-166 (2013).
  6. Rittirsch, D., et al. Acute Lung Injury Induced by Lipopolysaccharide Is Independent of Complement Activation. Journal of Immunology. 180 (11), 7664-7672 (2008).
  7. D’Alessio, F. R., et al. CD4+CD25+Foxp3+ Tregs resolve experimental lung injury in mice and are present in humans with acute lung injury. The Journal of Clinical Investigation. 119 (10), 2898-2913 (2009).
  8. Ehrentraut, H., Weisheit, C., Scheck, M., Frede, S., Hilbert, T. Experimental murine acute lung injury induces increase of pulmonary TIE2-expressing macrophages. Journal of Inflammation. 15, 12 (2018).
  9. Szarka, R. J., Wang, N., Gordon, L., Nation, P. N., Smith, R. H. A murine model of pulmonary damage induced by lipopolysaccharide via intranasal instillation. Journal of Immunological Methods. 202 (1), 49-57 (1997).
  10. Reutershan, J., Basit, A., Galkina, E. V., Ley, K. Sequential recruitment of neutrophils into lung and bronchoalveolar lavage fluid in LPS-induced acute lung injury. American Journal of Physiology. Lung Cellular and Molecular Physiology. 289 (5), 807-815 (2005).
  11. Hoegl, S., et al. Capturing the multifactorial nature of ARDS – approach to model murine acute lung injury. Physiological Reports. 6 (6), (2018).
  12. Weisheit, C., et al. Ly6Clow and Not Ly6Chigh Macrophages Accumulate First in the Heart in a Model of Murine Pressure-Overload. PLoS ONE. 9 (11), (2014).
  13. Grommes, J., Soehnlein, O. Contribution of Neutrophils to Acute Lung Injury. Molecular Medicine. 17 (3-4), 293-307 (2011).
  14. Müller-Redetzky, H. C., Suttorp, N., Witzenrath, M. Dynamics of pulmonary endothelial barrier function in acute inflammation: mechanisms and therapeutic perspectives. Cell and Tissue Research. 355 (3), 657-673 (2014).
  15. Fujita, M., et al. Endothelial cell apoptosis in lipopolysaccharide-induced lung injury in mice. International Archives of Allergy and Immunology. 117 (3), 202-208 (1998).
  16. Doyen, V., et al. Inflammation induced by inhaled lipopolysaccharide depends on particle size in healthy volunteers. British Journal of Clinical Pharmacology. 82 (5), 1371-1381 (2016).
  17. Stephens, R. S., Johnston, L., Servinsky, L., Kim, B. S., Damarla, M. The tyrosine kinase inhibitor imatinib prevents lung injury and death after intravenous LPS in mice. Physiological Reports. 3 (11), (2015).
  18. Yu, Y., Jing, L., Zhang, X., Gao, C. Simvastatin Attenuates Acute Lung Injury via Regulating CDC42-PAK4 and Endothelial Microparticles. Shock. 47 (3), 378-384 (2017).
check_url/59999?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Ehrentraut, H., Weisheit, C. K., Frede, S., Hilbert, T. Inducing Acute Lung Injury in Mice by Direct Intratracheal Lipopolysaccharide Instillation. J. Vis. Exp. (149), e59999, doi:10.3791/59999 (2019).

View Video