Summary

Inducera akut lung skada hos möss genom direkt Intratracheal Lipopolysaccharide instillation

Published: July 06, 2019
doi:

Summary

Presenteras här är en steg-för-steg förfarande för att framkalla akut lung skada hos möss genom direkt intratrakeal lipopolysackarid instillation och att utföra FACS analys av blodprover, bronkoalveolära sköljning vätska, och lung vävnad. Minimal invasivitet, enkel hantering, god reproducerbarhet och titrering av sjukdomens svårighets grad är fördelar med denna metod.

Abstract

Luftvägs administrering av lipopolysackarid (LPs) är ett vanligt sätt att studera pulmonell inflammation och akut lung skada (Ali) i små djur modeller. Olika metoder har beskrivits, såsom inandning av aerosolized LPS samt nasal eller intratrakeal instillation. Det presenterade protokollet beskriver ett detaljerat steg-för-steg-förfarande för att inducera Ali hos möss genom direkt intratrakeal LPS instillation och utföra FACS analys av blodprover, bronkoalveolar sköljning (bal) vätska, och lung vävnad. Efter intraperitoneal sedering exponeras luft strupen och LPS administreras via en 22 G ven kateter. En robust och reproducerbar inflammatorisk reaktion med leukocytinvasion, uppreglering av proinflammatoriska cytokiner, och störningar av alveolo-kapillär barriären induceras inom några timmar till dagar, beroende på LPS dosering används. Insamling av blod prov, BAL vätska, och lung skörd, samt bearbetning för FACS analys, beskrivs i detalj i protokollet. Även om användningen av sterila LPS inte lämpar sig för att studera farmakologiska interventioner vid infektions sjukdomar, erbjuder den beskrivna metoden minimal invasivitet, enkel hantering och god reproducerbarhet för att besvara mekanistiska immunologiska frågor. Dessutom, dostitrering samt användning av alternativa LPS preparat eller mus stammar tillåta modulering av de kliniska effekterna, som kan uppvisa olika grader av ALI svårighets grad eller tidigt vs. sen debut av sjukdoms symtomen.

Introduction

Experimentella djur modeller är oumbärliga i grundläggande immun forskning. Administrering av hela bakterier eller mikrobiella komponenter har ofta använts i små djur modeller för att framkalla lokal eller systemisk inflammation1. Lipopolysaccharide (LPS, eller bakteriell endotoxin) är en cell vägg komponent och ytantigen av Gramnegativa bakterier (t. ex. Enterobacteriaceae, Pseudomonas spp., eller Legionella spp.). Termostabila och stora molekylen (molekyl vikt 1-4 x 106 kDa) består av en Lipiddel (lipid a), kärn region (oligosackarid) och en o-polysackarider (eller o-antigen). Lipid A, med sina hydrofoba fett syror kedjor, förankrar molekylen i ett bakterie membran och förmedlar (vid nedbrytning av bakterier) den immunologiska aktiviteten och toxiciteten hos LPS. Efter bindning till LPS bindande protein (LBP), LPS: LBP komplex ligera CD14/TLR4/MD2 receptor komplex ligger på ytan av många cell typer, inducera en stark proinflammatorisk reaktion med NF-κb nukleär translokationen och efterföljande uppreglering av cytokin uttryck2.

Akut lung skada (ALI) definieras som akut hypoxemisk respiratorisk svikt med bilateralt lungödem i avsaknad av hjärt svikt3. Luftvägs administrering av LPS är ett vanligt sätt att inducera pulmonell inflammation och Ali4,5,6,7. Även om det sterila ämnet inte lämpar sig för att studera farmakologiska interventioner vid infektions sjukdomar, kan mekanistiska immunologiska frågor besvaras med tillräcklig precision. Instillation av LPS i luft strupen inducerar en robust inflammatorisk reaktion med leukocytinvasion, uppreglering av proinflammatoriska cytokiner, och störningar av alveolo-kapillär barriären inom några timmar till dagar, beroende på LPS dosering3, 6,7.

Det presenterade protokollet beskriver en detaljerad steg-för-steg-procedur för att inducera Ali hos möss genom intratrakeal LPS instillation. Modellen har validerats genom att bedöma cytokin uttryck, neutrofila granulocyt invasion, och intra-alveolära albuminläckage som tidigare beskrivits8.

Protocol

Detta djur protokoll godkändes av den lokala kommittén för djur vård (LANUV, Recklinghausen, Tyskland; protokoll nr 84-02.04.2015) och utfördes i enlighet med de nationella hälso instituten rikt linjer för användning av levande djur (NIH-publikation Nr 85-23, reviderad 1996). 1. ALI-induktion Använd vuxen C57BL/6 möss i åldrarna ca 10-12 veckor. Hus djuren i individuellt ventilerade burar med fri till gång till vatten och standard gnagare Chow. Det är dock möjligt att u…

Representative Results

Den beskrivna metoden för att inducera ALI hos möss validerades genom att bedöma cytokin uttryck, neutrofila granulocyt infiltration, och alveolo-kapillär barriär störningar 24 h och 72 h efter LPS instillation. PBS-injicerade djur fungerade som kontroll. Intratracheal LPS administrering inducerade en robust pulmonell proinflammatorisk respons. Uttryck för TNF-α i lung vävnad var signifikant uppreglerad, uppnådde en ihållande och mer än 50-faldig ökning jämfört med kontroll djuren [RQ (TNF-α/18s); 24 h: 5…

Discussion

Minimal invasivitet, enkel hantering och god reproducerbarhet är viktiga inslag i den presenterade metoden för att inducera ALI i en liten gnagare modell. Användning av LPS i stället för hela bakterier i djur modeller har fördelar. Det är en stabil och ren förening och kan lagras i frystorkad form fram till användning. Det är en potent stimulerande för medfödda immun svar via TLR4 vägen, och dess biologiska aktivitet kan lätt kvantifieras, under lätta titrering av sjukdomens svårighets grad med god reprod…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Författarna vill tacka Jan Kleiner och Susanne Schulz för att ha tillhandahållit teknisk support. Författarna erkänner det utmärkta stöd av flödet cytometri kärnan anläggningen vid den medicinska fakulteten vid Bonns universitet. Författarna erhöll ingen finansiering från någon extern organisation.  En del av de uppgifter som lämnats i resultat sektionen och som skildras i figur 3 har redan visats i en tidigare publikation8.

Materials

1 ml syringes BD, Franklin Lakes, NJ, USA 300013
10 ml syringes BD, Franklin Lakes, NJ, USA 309110
Anti-CD115 (c-fms) APC Thermo Fisher, Waltham, MA, USA 17-1152-80
Anti-CD11b (M1/70) – FITC Thermo Fisher, Waltham, MA, USA 11-0112-81
Anti-CD45 (30-F11) – eF450 Thermo Fisher, Waltham, MA, USA 48-0451-82
Anti-F4/80 (BM-8) – PE Cy7 Thermo Fisher, Waltham, MA, USA 25-4801-82
Anti-Gr1 (RB6-8C5) BD Biosciences, Franklin Lakes, NJ, USA 552093
Anti-Ly6C (HK1.4) PerCP-Cy5.5 Thermo Fisher, Waltham, MA, USA 45-5932-82
Anti-Ly6G (1A8) APC/Cy7 Bio Legend, San Diego, CA 127623
Buprenorphine hydrochloride Indivior UK Limited, Berkshire, UK
C57BL/6 mice, female, 10 – 12 weeks old Charles River, Wilmongton, MA, USA
CaliBRITE APC-beads (6µm) BD Biosciences, Franklin Lakes, NJ, USA 340487
Canula 23 gauge 1'' BD, Franklin Lakes, NJ, USA 300800
Canula 26 gauge 1/2'' BD, Franklin Lakes, NJ, USA 303800
Cell strainer 70 µm BD Biosciences, Franklin Lakes, NJ, USA 352350
Collagenase Type I Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA 1148089
Deoxyribonuclease II Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA D8764 
Dulbecco's Phosphate Buffered Saline (PBS), sterile Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA D8662
Dulbecco’s Phosphate Buffered Saline (PBS), without calcium chloride and magnesium chloride, sterile Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA D8537
Ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) solution Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA E7889
FACS tubes, 5 ml Sarstedt, Nümbrecht, Germany 551579
Fetal calf serum (FCS) Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA F2442
Forceps Fine Science Tools, Heidelberg, Germany 11049-10
Isoflurane Baxter, Unterschleißheim, Germany
Ketamine hydrochloride Serumwerk Bernburg, Bernburg, Germany
Lipopolysaccharides (LPS) from Escherichia coli O111:B4 Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA L2630
LIVE/DEAD Fixable Dead Cell Green Kit Thermo Fisher, Waltham, MA, USA L23101
Purified Rat Anti-Mouse CD16/CD32 (Mouse BD Fc Block™), Clone 2.4G2 BD, Franklin Lakes, NJ, USA 553141
Red blood cell lysis buffer Thermo Fisher, Waltham, MA, USA 00-4333-57
RPMI-1640, with L-glutamine and sodium bicarbonate Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA R8758
Scissors Fine Science Tools, Heidelberg, Germany 14060-09
Sodium azide (NaN3) Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA S2002
Spring scissors Fine Science Tools, Heidelberg, Germany 15018-10
Tissue forceps Fine Science Tools, Heidelberg, Germany 11021-12
Tubes Eppendorf, Hamburg, Germany 30125150
Venous catheter, 22 gauge B.Braun, Melsungen, Germany 4268091B
Xylazine hydrochloride Serumwerk Bernburg, Bernburg, Germany

References

  1. Fink, M. P. Animal models of sepsis. Virulence. 5 (1), 143-153 (2014).
  2. Lu, Y. -. C., Yeh, W. -. C., Ohashi, P. S. LPS/TLR4 signal transduction pathway. Cytokine. 42 (2), 145-151 (2008).
  3. Matute-Bello, G., Frevert, C. W., Martin, T. R. Animal models of acute lung injury. American Journal of Physiology – Lung Cellular and Molecular Physiology. 295 (3), 379-399 (2008).
  4. Rabelo, M. A. E., et al. Acute Lung Injury in Response to Intratracheal Instillation of Lipopolysaccharide in an Animal Model of Emphysema Induced by Elastase. Inflammation. 41 (1), 174-182 (2018).
  5. Liu, F., Li, W., Pauluhn, J., Trübel, H., Wang, C. Lipopolysaccharide-induced acute lung injury in rats: comparative assessment of intratracheal instillation and aerosol inhalation. Toxicology. 304, 158-166 (2013).
  6. Rittirsch, D., et al. Acute Lung Injury Induced by Lipopolysaccharide Is Independent of Complement Activation. Journal of Immunology. 180 (11), 7664-7672 (2008).
  7. D’Alessio, F. R., et al. CD4+CD25+Foxp3+ Tregs resolve experimental lung injury in mice and are present in humans with acute lung injury. The Journal of Clinical Investigation. 119 (10), 2898-2913 (2009).
  8. Ehrentraut, H., Weisheit, C., Scheck, M., Frede, S., Hilbert, T. Experimental murine acute lung injury induces increase of pulmonary TIE2-expressing macrophages. Journal of Inflammation. 15, 12 (2018).
  9. Szarka, R. J., Wang, N., Gordon, L., Nation, P. N., Smith, R. H. A murine model of pulmonary damage induced by lipopolysaccharide via intranasal instillation. Journal of Immunological Methods. 202 (1), 49-57 (1997).
  10. Reutershan, J., Basit, A., Galkina, E. V., Ley, K. Sequential recruitment of neutrophils into lung and bronchoalveolar lavage fluid in LPS-induced acute lung injury. American Journal of Physiology. Lung Cellular and Molecular Physiology. 289 (5), 807-815 (2005).
  11. Hoegl, S., et al. Capturing the multifactorial nature of ARDS – approach to model murine acute lung injury. Physiological Reports. 6 (6), (2018).
  12. Weisheit, C., et al. Ly6Clow and Not Ly6Chigh Macrophages Accumulate First in the Heart in a Model of Murine Pressure-Overload. PLoS ONE. 9 (11), (2014).
  13. Grommes, J., Soehnlein, O. Contribution of Neutrophils to Acute Lung Injury. Molecular Medicine. 17 (3-4), 293-307 (2011).
  14. Müller-Redetzky, H. C., Suttorp, N., Witzenrath, M. Dynamics of pulmonary endothelial barrier function in acute inflammation: mechanisms and therapeutic perspectives. Cell and Tissue Research. 355 (3), 657-673 (2014).
  15. Fujita, M., et al. Endothelial cell apoptosis in lipopolysaccharide-induced lung injury in mice. International Archives of Allergy and Immunology. 117 (3), 202-208 (1998).
  16. Doyen, V., et al. Inflammation induced by inhaled lipopolysaccharide depends on particle size in healthy volunteers. British Journal of Clinical Pharmacology. 82 (5), 1371-1381 (2016).
  17. Stephens, R. S., Johnston, L., Servinsky, L., Kim, B. S., Damarla, M. The tyrosine kinase inhibitor imatinib prevents lung injury and death after intravenous LPS in mice. Physiological Reports. 3 (11), (2015).
  18. Yu, Y., Jing, L., Zhang, X., Gao, C. Simvastatin Attenuates Acute Lung Injury via Regulating CDC42-PAK4 and Endothelial Microparticles. Shock. 47 (3), 378-384 (2017).
check_url/59999?article_type=t&slug=inducing-acute-lung-injury-mice-direct-intratracheal

Play Video

Cite This Article
Ehrentraut, H., Weisheit, C. K., Frede, S., Hilbert, T. Inducing Acute Lung Injury in Mice by Direct Intratracheal Lipopolysaccharide Instillation. J. Vis. Exp. (149), e59999, doi:10.3791/59999 (2019).

View Video