Summary

Lab-on-a-CD plattform for generering flercellede tredimensjonal Spheroids

Published: November 07, 2019
doi:

Summary

Vi presenterer en motor drevet sentrifugal mikrovæskebasert innretning som kan dyrke celle spheroids. Ved hjelp av denne enheten, kan spheroids av én eller flere celletyper lett cocultured under høy gravitasjon forhold.

Abstract

En tredimensjonal spheroid cellekultur kan få mer nyttige resultater i celle eksperimenter fordi det kan bedre simulere celle microenvironments av den levende kroppen enn to-dimensjonal cellekultur. I denne studien, fabrikkert vi en elektrisk motor-drevet Lab-on-a-CD (Compact Disc) plattform, kalt en sentrifugal mikrovæskebasert-baserte spheroid (CMS) kultur system, for å lage tredimensjonale (3D) celle spheroids implementere høy sentrifugalkraft. Denne enheten kan variere rotasjonshastighet for å generere tyngdekraft forhold fra 1 x g til 521 x g. CMS-systemet er 6 cm i diameter, har 500 μm microwells, og er laget av molding med Polydimethylsiloxan i en polykarbonat mold forhåndslagde av en datamaskin numerisk kontroll maskin. En barriere vegg ved kanal inngangen til CMS-systemet bruker sentrifugalkraften til å spre celler jevnt inne i brikken. På slutten av kanalen, det er en skyve område det innrømmer cellene å gå inn det microwells. Som en demonstrasjon, spheroids ble generert av monokultur og coculture av menneskelig fett-avledet stamceller og menneskelige lunge fibroblaster under høy gravitasjon forhold ved hjelp av systemet. CMS-systemet brukte en enkel operasjon ordning for å produsere coculture spheroids av ulike strukturer i konsentriske, Janus, og sandwich. CMS-systemet vil være nyttig i cellebiologi og vev engineering studier som krever spheroids og organoid kultur av én eller flere celletyper.

Introduction

Det er lettere å simulere biologisk in vivo microenvironments med tredimensjonal (3D) spheroid cellekultur enn med to-dimensjonale (2D) cellekultur (for eksempel konvensjonelle Petri parabol cellekultur) for å produsere mer fysiologisk realistisk eksperimentell resultater1. Foreløpig tilgjengelig spheroid formasjon metoder inkluderer hengende slipp teknikk2, Liquid-overlay teknikk3, carboxymethyl cellulose teknikk4, magnetisk Force-baserte mikrovæskebasert teknikk5, og bruk av bioreaktorer6. Selv om hver metode har sine egne fordeler, er det nødvendig med ytterligere forbedring i reproduserbarhet, produktivitet og generering av coculture spheroids. For eksempel, mens den magnetiske Force-baserte mikrovæskebasert teknikk5 er relativt billig, effekten av sterke magnetiske felt på levende celler må vurderes nøye. Fordelene med spheroid kultur, spesielt i studiet av mesenchymal stilk cellen differensiering og spredning, er rapportert i flere studier7,8,9.

Sentrifugal mikrovæskebasert systemet, også kjent som Lab-on-a-CD (CD-plate), er nyttig for enkelt å kontrollere væsken inne og utnytte rotasjonen av underlaget og har dermed blitt utnyttet i biomedisinsk applikasjoner som immunanalyser10, fargemetrisk analyse for å oppdage biokjemiske markører11, nukleinsyre acid forsterkning (PCR) analyser, automatiserte blod analyse systemer12og alt-i-ett sentrifugal mikrovæskebasert enheter13. Drivkraften som kontrollerer væsken er den sentripetal kraften som skapes ved rotasjon. Ytterligere, mangfoldig funksjonene av blander, valving, og eksemplar splitting kan gjort bare i denne enkelt CD plattform. Men sammenlignet med de ovenfor nevnte biokjemiske analysemetoder, har det vært færre forsøk å bruke CD-plattformer til kultur celler, spesielt spheroids14.

I denne studien viser vi ytelsen til sentrifugal mikrovæskebasert-baserte spheroid (CMS)-systemet ved monokultur eller coculture av humane fett avledede stamceller (hASC) og humant lunge fibroblaster (MRC-5). Dette dokumentet beskriver i detalj vår gruppes forskningsmetode15. Således, det spheroid kulturen laboratorium-opp på-en-CD plattform kan lett reprodusert. En CMS genererer system bestående av et CMS kultur chip, en chip holder, en DC motor, en motor Mount, og en roterende plattform, er presentert. Motor braketten er 3D trykt med akrylnitril butadien styren (ABS). Chip holder og roterende plattform er CNC (datamaskin numerisk kontroll) bearbeidet med PC (polykarbonat). Rotasjonshastigheten til motoren styres fra 200 til 4 500 RPM ved å kode en PID (proporsjonal-Integral-derivat) algoritme basert på puls-bredde moduleringshjul. Dens dimensjoner er 100 mm x 100 mm x 150 mm og den veier 860 g, noe som gjør det enkelt å håndtere. Ved hjelp av CMS-systemet, kan spheroids genereres under ulike tyngdekraften forhold fra 1 x g til 521 x g, så studiet av celle differensiering forfremmelse under høy gravitasjon kan utvides fra 2D-celler16,17 til 3D spheroid. Coculture av ulike typer celler er også en viktig teknologi for effektivt å etterligne in vivo miljø18. Det CMS system kanne lett utvikle monokultur spheroids, likeledes idet coculture spheroids av forskjellige struktur typer (e.g., konsentrisk, Janus, og sandwich). CMS-systemet kan utnyttes ikke bare i enkle spheroid studier, men også i 3D-organoid studier, for å vurdere menneskelige organ strukturer.

Protocol

1. sentrifugal mikrovæskebasert-basert spheroid (CMS) kultur chip fabrikasjon Lag PC muggsopp for toppen og bunnen lag av CMS kulturen chip av CNC maskinering. Detaljerte dimensjoner av brikken er gitt i figur 1. Bland PDMS base og PDMS herding agent i forholdet 10:1 (w/w) i 5 min og plasser i en desikator for 1 t for å fjerne luftbobler. Etter støping av PDMS blandingen i formene av CMS kultur chip, fjerne luftbobler for 1 t mer og kur i et varme kammer ved …

Representative Results

Den 6 cm diameter CMS kultur chip (figur 2) ble vellykket gjort etter ovennevnte protokollen. Først ble brikken laget separat fra et topplag og et nederste lag, og deretter limt sammen av plasma binding. Resulterende spheroids kan enkelt samles ved å løsne chip. Kanalen for CMS kultur chip består av en innløps port og sentrale, slide, og mikrotiterplateleser regioner (Figur 3). Celle-, medium-og pluronic-løsninger injiseres gjennom et innløps hull med en …

Discussion

CMS er et lukket system der alle injisert celler inn i mikrotiterplateleser uten avfall, noe som gjør den mer effektiv og økonomisk enn konvensjonelle mikrotiterplateleser-baserte spheroid generasjon metoder. I CMS-systemet erstattes mediene hver 12 – 24 h gjennom et suge hull som er utformet for å fjerne mediene i brikken (figur 3a). Under Media suge prosessen, unnslipper knapt noen medier fra innsiden av mikrotiterplateleser på grunn av overflatespenningen mellom mediene og veggen av…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denne forskningen ble støttet av Basic Science Research program (2016R1D1A1B03934418) og bio & Medical Technology Development program (2018M3A9H1023141) av NRF, og finansiert av den koreanske regjeringen, MSIT.

Materials

3D printer Cubicon 3DP-210F
Adipose-derived mesenchymal stem cells (hASC) ATCC PCS-500-011
Antibiotic-Antimycotic Gibco 15240-062 Contained 1% of completed medium and buffer
CellTracker Green CMFDA Thermo Fisher Scientific C2925 10 mM
CellTracker Red CMTPX Thermo Fisher Scientific C34552 10 mM
Computer numerical control (CNC) rotary engraver Roland DGA EGX-350
DC motor Nurielectricity Inc. MB-4385E
Dimethylsulfoxide (DMSO) Sigma Aldrich D2650
Dulbecco's modified eaggle's medium (DMEM) ATCC 30-2002
Dulbecco's phosphate buffered saline (D-PBS) ATCC 30-2200
Fetal bovine serum ATCC 30-2020 Contained 10% of completed medium
human lung fibroblasts (MRC-5) ATCC CCL-171
Inventor 2019 Autodesk 3D computer-aided design program
Petri dish Φ 150 mm JetBiofill CAD010150 Surface Treated
Plasma cleaner Harrick Plasma PDC-32G
Pluronic F-127 Sigma Aldrich 11/6/9003 Dilute with phosphate buffered saline to 4% (w/v) solution
Polycarbonate (PC) Acrylmall AC15PC 200 x 200 x 15 mm
Polydimethylsiloxane (PDMS) Dowcorning Sylgard 184
Trypsin Gibco 12604021

References

  1. Ravi, M., Paramesh, V., Kaviya, S. R., Anuradha, E., Paul Solomon, F. D. 3D cell culture systems: Advantages and applications. Journal of Cellular Physiology. 230 (1), 16-26 (2015).
  2. Tung, Y. C., et al. High-throughput 3D spheroid culture and drug testing using a 384 hanging drop array. Analyst. 136 (3), 473-478 (2011).
  3. Sutherland, R., Carlsson, J., Durand, R., Yuhas, J. Spheroids in Cancer Research. Cancer Research. 41 (7), 2980-2984 (1981).
  4. Korff, T., Krauss, T., Augustin, H. G. Three-dimensional spheroidal culture of cytotrophoblast cells mimics the phenotype and differentiation of cytotrophoblasts from normal and preeclamptic pregnancies. Experimental Cell Research. 297 (2), 415-423 (2004).
  5. Yaman, S., Anil-Inevi, M., Ozcivici, E., Tekin, H. C. Magnetic force-based microfluidic techniques for cellular and tissue bioengineering. Frontiers in Bioengineering and Biotechnology. 6, (2018).
  6. Lin, R. Z., Chang, H. Y. Recent advances in three-dimensional multicellular spheroid culture for biomedical research. Biotechnology Journal. 3 (9-10), 1172-1184 (2008).
  7. Cesarz, Z., Tamama, K. Spheroid Culture of Mesenchymal Stem Cells. Stem Cells International. 2016, (2016).
  8. Li, Y., et al. Three-dimensional spheroid culture of human umbilical cord mesenchymal stem cells promotes cell yield and stemness maintenance. Cell and Tissue Research. 360, 297-307 (2015).
  9. Yamaguchi, Y., Ohno, J., Sato, A., Kido, H., Fukushima, T. Mesenchymal stem cell spheroids exhibit enhanced in-vitro and in-vivo osteoregenerative potential. Bmc Biotechnology. 14 (1), 105 (2014).
  10. Koh, C. Y., et al. Centrifugal microfluidic platform for ultrasensitive detection of botulinum toxin. Analytical Chemistry. 87 (2), 922-928 (2015).
  11. Steigert, J., et al. Direct hemoglobin measurement on a centrifugal microfluidic platform for point-of-care diagnostics. Sensors and Actuators, A: Physical. 130-131, 228-233 (2006).
  12. Park, Y. -. S., et al. Fully automated centrifugal microfluidic device for ultrasensitive protein detection from whole blood. Journal of Visualized Experiments. (110), e1 (2016).
  13. Lee, A., et al. All-in-one centrifugal microfluidic device for size-selective circulating tumor cell isolation with high purity. Analytical Chemistry. 86 (22), 11349-11356 (2014).
  14. Gorkin, R., et al. Centrifugal microfluidics for biomedical applications. Lab on a Chip. 10 (14), 1758-1773 (2010).
  15. Park, J., Lee, G. H., Yull Park, J., Lee, J. C., Kim, H. C. Hypergravity-induced multicellular spheroid generation with different morphological patterns precisely controlled on a centrifugal microfluidic platform. Biofabrication. 9 (4), (2017).
  16. Rocca, A., et al. Barium titanate nanoparticles and hypergravity stimulation improve differentiation of mesenchymal stem cells into osteoblasts. International Journal of Nanomedicine. 10, 433-445 (2015).
  17. Genchi, G. G., et al. Hypergravity stimulation enhances PC12 neuron-like cell differentiation. BioMed Research International. 2015, (2015).
  18. Bhatia, S. N., Ingber, D. E. Microfluidic organs-on-chips. Nature Biotechnology. 32 (8), 760-772 (2014).

Play Video

Cite This Article
Kim, D., Lee, G., Park, J., Lee, J. C., Park, J. Y. Lab-on-a-CD Platform for Generating Multicellular Three-dimensional Spheroids. J. Vis. Exp. (153), e60399, doi:10.3791/60399 (2019).

View Video