Summary

En forsinket inokulasjonmodell av kroniskpseudomonas aeruginosa sårinfeksjon

Published: February 20, 2020
doi:

Summary

Vi beskriver en forsinket inokulasjonsprotokoll for generering av kroniske sårinfeksjoner hos immunkompetente mus.

Abstract

Pseudomonas aeruginosa (P. aeruginosa) er et stort nosocomial patogen av økende relevans for menneskers helse og sykdom, spesielt i innstillingen av kroniske sårinfeksjoner hos diabetikere og innlagte pasienter. Det er et presserende behov for kroniske infeksjonsmodeller for å hjelpe til med undersøkelsen av sårpatogenogenese og utvikling av nye terapier mot dette patogenet. Her beskriver vi en protokoll som bruker forsinket inokulasjon 24 timer etter eksisjonssåret i full tykkelse. Infeksjonen i den provisoriske sårmatrisen som finnes på denne tiden skogaller enten rask clearance eller formidling av infeksjon og i stedet etablerer kronisk infeksjon som varer 7-10 dager uten behov for implantasjon av fremmedlegemer eller immunundertrykkelse. Denne protokollen etterligner et typisk timelig kurs av postoperativ infeksjon hos mennesker. Bruk av en selvlysende P. aeruginosa stamme (PAO1:lux) gir kvantitativ daglig vurdering av bakteriell byrde for P. aeruginosa sårinfeksjoner. Denne nye modellen kan være et nyttig verktøy i undersøkelsen av bakteriell patogenese og utvikling av nye terapier for kroniske P. aeruginosa sårinfeksjoner.

Introduction

Pseudomonas aeruginosa (P. aeruginosa) er en Gram-negativ stangformet bakterie med økende relevans for menneskers helse og sykdom. Det er ansvarlig for omfattende sykelighet og dødelighet i nosocomial-miljøer, spesielt med sårinfeksjoner hos immunkompromitterte pasienter1,2. Fremveksten av multiresistente stammer av dette patogenet har gitt ytterligere drivkraft for undersøkelse av faktorer som bidrar til P. aeruginosa virulence, mekanismer for P. aeruginosa antibiotikaresistens, og nye metoder for forebygging og behandling av denne dødeligeinfeksjonen 3. Som sådan har behovet for dyremodeller av kronisk sårinfeksjon som verktøy for å undersøke disse forskningsspørsmålene aldri vært større.

Dessverre har mange dyremodeller av P. aeruginosa infeksjon en tendens til å simulere akutt infeksjon med rask infeksjonsoppløsning eller rask nedgang på grunn av sepsis4,5, som ikke tilstrekkelig simulerer ofte kronisk natur disse infeksjonene. For å løse denne ulempen, bruker noen modeller implantasjon av fremmedlegemer som agarperler, silikonimplantater eller alginatgeler6,7,8. Andre modeller bruker mus som er immunkompromittert på grunn av avansert alder, fedme eller diabetes, eller gjennom farmakologiske midler som cyklofosfamidindusert nøytropeni9,10,11,12. Imidlertid endrer enten bruk av fremmedlegemer eller immunkompromitterte verter sannsynligvis den lokale inflammatoriske prosessen, noe som gjør det vanskelig å få en forståelse av patofysiologien involvert i kroniske sårinfeksjoner hos verter med ellers normale immunsystem.

Vi har utviklet en kronisk modell av P. aeruginosa sårinfeksjon hos mus som innebærer forsinket inokulasjon med bakterier etter excisional såret. Forsinket inokulasjon gjør det mulig for eksperimenter som vurderer bakteriell byrde som strekker seg ut til minst 7 dager. Denne modellen åpner opp nye muligheter for å undersøke både patogenesen og nye behandlinger av P. aeruginosa kroniske infeksjoner.

Protocol

Alle metoder som er beskrevet her, er godkjent av Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) ved Stanford University. 1. Forberedelse og vekst av bakterier Gjennomføre alt arbeid med P. aeruginosa og dyr med BSL-2 forholdsregler i henhold til forskerens institusjonelle biosikkerhetskomité og retningslinjer for dyrebrukskomité. Gjør alle skritt som er beskrevet her som involverer P. aeruginosa, inkludert mus inokulasjon, i et biosikkerhetsskap. <li…

Representative Results

Ved hjelp av en selvlysende stamme av PAO1 med en plasmid koding av luxABCDE reportersystem (PAO1:lux), utførte vi excisional såret på mus, inokulerte disse sårene med planktononp 24 timer senere, og måltbakteriell byrde over tid (Figur 1 og figur 2). Et representativt bilde innhentet ved hjelp av et optisk bildesystem viser at denne modellen resulterer i påvisbar luminescens (figur 3…

Discussion

Vi har utviklet en ny forsinket inokulasjon P. aeruginosa sår infeksjon modell. Strategien om å forsinke inokulasjon med bakterier til 24 timer etter eksisional såret muliggjør evaluering av sårinfeksjoner over en 1-ukers tidsramme. Ved å bruke en selvlysende stamme av P. aeruginosa, er det mulig å spore infeksjonsprogresjon gjennom infeksjonskurset. Jo lenger infeksjonsforløpet sammenlignet med andre P. aeruginosa infeksjonsmodeller vil tillate nye muligheter for å studere host-patoge…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Den pUT-Tn5-EM7-lux-Km1 selvlysende konvektoren var en nådig gave fra J. Hardy. Skjemaer ble opprettet med BioRender.com. Vi takker laboratoriet til G. Gurtner for deres råd om sårinfeksjonsmodellen. Vi takker også T. Doyle fra Stanford Center for Innovation in In Vivo Imaging for hans tekniske ekspertise. Dette arbeidet ble støttet av tilskudd R21AI133370, R21AI133240, R01AI12492093, og tilskudd fra Stanford SPARK, Falk Medical Research Trust og Cystic Fibrosis Foundation (CFF) til P.L.B. C.R.D ble støttet av T32AI007502. En Gabilan Stanford Graduate Fellowship for Science and Engineering og en Lubert Stryer Bio-X Stanford Interdisciplinary Graduate Fellowship støttet J.M.S.

Materials

0.9% Sodium Chloride injection Hospira 2484457
18 G x 1 sterile needle BD 305195
25 G x 1 1/5 sterile needle BD 305127
Alcohol swab BD 326895
Aura Imaging Software Spectral Instruments Imaging n/a
Betadine Purdue Frederick Company 19-065534
Buprenorphine SR LAB Zoopharm n/a
C57BL/6J male mice The Jackson Laboratory 000664
Disposable biopsy punch, 6mm Integra 33-36
Fine scissors – Tungsten Carbide Fine Science Tools 14568-09
Glass Bead Dry Sterilizer Harvard Apparatus 61-0183
Granulated Agar Fisher BioReagents BP9744
Heating Pad Milliard 804879481218
Insulin syringe with 28 G needle BD 329461
Lago X Imaging System Spectral Instruments Imaging n/a
LB broth Fisher BioReagents BP1426
Leur-Lok 1 mL syringe BD 309628
Mini Arco Animal Trimmer Wahl Professional 919152
Nair Hair Removal Lotion with Baby Oil Church and Dwight n/a Available at any pharmacy
Octagon Forceps Fine Science Tools 11041-08
Petri dish Falcon 351029
Phosphate Buffered Saline (PBS) 1x Corning 21-040-CV
Press and Seal Cling Wrap Glad n/a
SafetyGlide Insulin syringe with 30 G needle BD 305934
Safetyglide Insulin syringe, 1/2 mL, 30 G x 5/16 TW BD 305934
Scale Ohaus Scout Pro SP202
Supplical Nutritional Supplement Henry Schein Animal Health 29908
Tegaderm, 6 cm x 7 cm 3M 1624W

References

  1. Sen, C. K., et al. Human skin wounds: a major and snowballing threat to public health and the economy. Wound Repair and Regeneration. 17 (6), 763-771 (2009).
  2. Serra, R., et al. Chronic wound infections: the role of Pseudomonas aeruginosa and Staphylococcus aureus. Expert Review of Anti-infective Therapy. 13 (5), 605-613 (2015).
  3. Obritsch, M. D., Fish, D. N., MacLaren, R., Jung, R. Nosocomial infections due to multidrug-resistant Pseudomonas aeruginosa: epidemiology and treatment options. Pharmacotherapy. 25 (10), 1353-1364 (2005).
  4. Secor, P. R., et al. Filamentous Bacteriophage Produced by Pseudomonas aeruginosa Alters the Inflammatory Response and Promotes Noninvasive Infection In Vivo. Infection and Immunity. 85 (1), (2017).
  5. Rice, S. A., et al. The biofilm life cycle and virulence of Pseudomonas aeruginosa are dependent on a filamentous prophage. The ISME Journal. 3 (3), 271-282 (2009).
  6. Bayes, H. K., Ritchie, N., Irvine, S., Evans, T. J. A murine model of early Pseudomonas aeruginosa lung disease with transition to chronic infection. Scientific Reports. 6, 35838 (2016).
  7. van Gennip, M., et al. Interactions between polymorphonuclear leukocytes and Pseudomonas aeruginosa biofilms on silicone implants in vivo. Infection and Immunity. 80 (8), 2601-2607 (2012).
  8. Trøstrup, H., et al. Pseudomonas aeruginosa biofilm aggravates skin inflammatory response in BALB/c mice in a novel chronic wound model. Wound Repair and Regeneration. 21 (2), 292-299 (2013).
  9. Zhao, G., et al. Time course study of delayed wound healing in a biofilm-challenged diabetic mouse model. Wound Repair and Regeneration. 20 (3), 342-352 (2012).
  10. Brubaker, A. L., Rendon, J. L., Ramirez, L., Choudhry, M. A., Kovacs, E. J. Reduced neutrophil chemotaxis and infiltration contributes to delayed resolution of cutaneous wound infection with advanced age. Journal of Immunolology. 190 (4), 1746-1757 (2013).
  11. Watters, C., et al. Pseudomonas aeruginosa biofilms perturb wound resolution and antibiotic tolerance in diabetic mice. Medical Microbiology and Immunology. 202 (2), 131-141 (2013).
  12. Lee, C., Kerrigan, C. L., Picard-Ami, L. A. Cyclophosphamide-induced neutropenia: effect on postischemic skin-flap survival. Plastic and Reconstructive Surgery. 89 (6), 1092-1097 (1992).
  13. Sweere, J. M., et al. The immune response to Chronic Pseudomonas aeruginosa wound infection in immunocompetent mice. Advances in Wound Care. , (2019).
  14. Sweere, J. M., et al. Bacteriophage trigger antiviral immunity and prevent clearance of bacterial infection. Science. 363 (6434), (2019).

Play Video

Cite This Article
de Vries, C. R., Sweere, J. M., Ishak, H., Sunkari, V., Bach, M. S., Liu, D., Manasherob, R., Bollyky, P. L. A Delayed Inoculation Model of Chronic Pseudomonas aeruginosa Wound Infection. J. Vis. Exp. (156), e60599, doi:10.3791/60599 (2020).

View Video