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Articolo metodologico

Microwaving e Fluorophore-Tyramide per l'immunostainizzazione multiplex sulle intendire del mouse - Utilizzo di anticorpi primari non conformi della stessa specie ospite

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DOI:

10.3791/60868

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21 febbraio 2020

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In questo articolo

Sommario

Sono stati stabiliti diversi metodi per l'immunostaining multiplex utilizzando anticorpi primari della stessa specie ospite. Qui, descriviamo l'uso di anticorpi mediati a microonde e di fluoroforo-tiramide per bloccare la reattività incrociata dell'anticorpo durante l'immunostaining multiplex su sezioni adrenali del topo con paraffina fissata in formalina.

Abstract

L'immunostazione è ampiamente utilizzata nella ricerca biomedica per mostrare il modello di espressione cellulare di una data proteina. L'immunostaining multiplex consente l'etichettatura utilizzando più anticorpi primari. Per ridurre al minimo la reattività incrociata degli anticorpi, l'immunostaining multiplex che utilizza la colorazione indiretta richiede anticorpi primari senza etichetta provenienti da diverse specie ospiti. Tuttavia, la combinazione appropriata di diversi anticorpi di specie non è sempre disponibile. Qui, descriviamo un metodo di utilizzo di anticorpi primari non etichettati provenienti dalla stessa specie ospite (ad esempio, in questo caso entrambi gli anticorpi provengono dal coniglio) per l'immunofluorescenza multiplex sulle sezioni surrenali con paraffina fissata a formalina (FFPE). Questo metodo utilizza la stessa procedura e reagenti utilizzati nella fase di recupero dell'antigene per rimuovere l'attività del complesso anticorpale primario precedentemente macchiato. I vetrini sono stati macchiati con il primo anticorpo primario utilizzando un protocollo di immunostaining generale seguito da un passo di legame con un anticorpo secondario biotinylato. Poi, un metodo di sviluppo del segnale avidina-biotina-perossidasi è stato utilizzato con fluoroforo-tiramide come substrato. L'immunoattività del primo complesso di anticorpi primari è stata ridotta attraverso l'immersione in una soluzione di citrato di sodio bollente a microonde per 8 min. La deposizione insolubile fluoroforo-tiramide è rimasta sul campione, il che ha permesso di colorare la diapositiva con altri anticorpi primari. Anche se questo metodo elimina la maggior parte dei segnali falsi positivi, alcuni sfondi da anticorpo reattività incrociata può rimanere. Se i campioni sono arricchiti con biotina endogena, un anticorpo secondario coniugato perossidia può essere utilizzato per sostituire l'anticorpo secondario biotinylato per evitare il falso positivo dalla biotina endogena recuperata.

Introduzione

Nell'immunostaining multiplex, la colorazione diretta che utilizza anticorpi primari coniugati può fornire risultati informativi. Senza l'uso di anticorpi secondari, il metodo di colorazione diretta ha un basso rischio di falsi segnali di co-localizzazione da reattività incrociata degli anticorpi. Tuttavia, i reporter coniugati (fluoroforo, enzimi) o biotina sull'anticorpo primario ne limitano l'uso futuro. In alternativa, l'immunostaining indiretto di solito fornisce segnali più forti utilizzando un anticorpo primario non coniugato con un anticorpo secondario etichettato. Idealmente, gli anticorpi primari non coniugati utilizzati nell'immunostaining multiplex dovrebb....

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Protocollo

1. Colorazione con il primo anticorpo

  1. Dewax e reidratato FFPE vetrini con 5 min assegnati a ciascuno dei seguenti passaggi: xilene o reagenti equivalenti 3x, 100% etanolo 2x, 95% etanolo 1x, 70% etanolo 1x, 50% etanolo 1x, e acqua distillata 2x.
    NOTA: I vetrini devono rimanere umidi a partire da questa fase di reidratazione fino al montaggio nella fase finale.
  2. Per il recupero dell'antigene opzionale, posizionare i vetrini in 275 mL di soluzione di citrato di sodio bollente (10 mM, pH e 6,0) per 8 min. Per mantenere la soluzione bollente, posizionare i vetrini piatti sul fondo di una scatola di punta pipetta 14 x 9 x 9 cm3 (W x L x H) ....

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Risultati

I risultati sono stati ottenuti da campioni trattati con tutti i passaggi descritti, incluso il passaggio 1.2 di recupero dell'antigene. Tutti gli anticorpi secondari utilizzati qui sono stati biotinylati. Fluorophore-tyramide è stato utilizzato per sviluppare segnali dal primo e dal secondo anticorpo primario. Le immagini sono state catturate utilizzando un microscopio a fluescenza dotato di cubo FITC (per la fluorescenza verde), un cubo TxRED (per Cy3) e un cubo DAPI (per DAPI).

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Discussione

L'immunostaining multiplex è utile per esaminare la co-localizzazione cellulare di due o più antigeni. Questa tecnica ampiamente utilizzata fornisce risultati convincenti di co-localizzazione quando gli anticorpi primari sono coniugati con diversi reporter (colorazione diretta). Tuttavia, la colorazione diretta di solito fornisce segnali più deboli rispetto alla colorazione indiretta, che coinvolge anticorpi secondari coniugati per rilevare gli anticorpi primari. Nella colorazione indiretta, un risultato immunostaining m.......

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Dichiarazioni

Gli autori non hanno nulla da rivelare.

Ringraziamenti

Questo lavoro è supportato da NIH R00 HD032636.

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Antifade Montaggio MediumVector LaboratoriesH-1000
Asino biotinilato anti-topoJacksonImmuno715-066-151Diluizione 1:500 Asino
biotinilato anti-coniglioJacksonImmuno711-066-152Diluizione 1:500
DAPIBioLegend4228012 μ g/mL in acqua distillata
Microscopio a fluorescenzaECHORevolve 4
Streptavidina coniugata con perossidasi di rafanoJacksonImmuno016-030-084diluizione 1:1.000
Forno a microonde, 700 WGeneral ElectricJEM3072DH1BB
Topo anti-CYP2F2Santa CruzSC-374540Diluizione 1:250
Topo anti-THSanta CruzSC-25269Diluizione 1:1.000
Siero d'asino normaleJacksonImmuno017-000-1212% siero in PBST
Coniglio anti-20&alfa; HSDKerafastEB4002diluizione 1:500
Coniglio anti-3β HSDTransGenicKO607Diluizione 1:250
Coniglio anti-THNOVUSNB300-109Diluizione 1:1.000
Coniglio anti-β-cateninaAbcamab32572Diluizione 1:500
Streptavidina Perossidasi di rafano (SA-HRP)JacksonImmuno016-303-084Diluizione 1:1.000
TSA Cy3 TiramidePerkinElmerSAT704B001EADiluizione 1:100
TSA Fluoresceina TiramidePerkinElmerSAT701001EAdiluizione 1:100

Riferimenti

  1. Lewis Carl, S. A., Gillete-Ferguson, I., Ferguson, D. G. An indirect immunofluorescence procedure for staining the same cryosection with two mouse monoclonal primary antibodies. Journal of Histochemistry and Cytochemistry. 41 (8), 1273-1278 (1993).
  2. Lan, H. Y., Mu, W., Nikolic-Paterson, D. J., Atkins, R. C.

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Ristampe e permessi

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