Summary

En 3D sfäroid modell för Glioblastoma

Published: April 09, 2020
doi:

Summary

Här beskriver vi en lätt att använda invasionsanalys för glioblastom. Denna analys är lämplig för glioblastom stamceller-liknande celler. Ett fijitenma makro för enkel kvantifiering av invasion, migration och spridning beskrivs också.

Abstract

Tvådimensionella (2D) cell kulturer inte efterlikna in vivo tumör tillväxt tillfredsställande. Därför utvecklades tredimensionella (3D) kultur sfäroid modeller. Dessa modeller kan vara särskilt viktiga inom neuro-onkologi. Faktum är att hjärntumörer har en tendens att invadera den friska hjärnmiljön. Vi beskriver häri en idealisk 3D glioblastoma sfäroid-baserade analys som vi utvecklat för att studera tumör invasion. Vi tillhandahåller alla tekniska detaljer och analysverktyg för att framgångsrikt utföra denna analys.

Introduction

I de flesta studier med primära eller kommersiellt tillgängliga cellinjer utförs analyser på celler som odlas på plastytor som monolagerkulturer. Hantera cellkultur i 2D representerar nackdelar, eftersom det inte efterliknar en in vivo 3D-cellmiljö. I 2D-kulturer är hela cellytan direkt i kontakt med mediet, förändrar celltillväxt och ändrar läkemedelstillgänglighet. Dessutom utlöser den ickefysiologiska plastytan celldifferentiering1. Tredimensionella kulturmodeller har utvecklats för att övervinna dessa svårigheter. De har fördelen av att härma den flercelliga arkitekturen och heterogeniteten hos tumörer2, och kan därför anses vara en mer relevant modell för solida tumörer3. Den komplexa morfologi av sfäroider bidrar till att bättre utvärdera läkemedlet penetrance och resistens4. Tumören heterogenitet i sfäroiden påverkar spridningen av syre och näringsämnen, och svaret på farmakologiska medel (figur 1A). Diffusion av syre ändras när sfäroidstorleken når 300 μm, vilket leder till en hypoxisk miljö i mitten av sfäroiden (figur 1A,C). Metaboliter är också mindre genomträngande genom cellskikten och kompensera metaboliska reaktioner sker5. När diametern på sfäroiden ökar, nekrotiska kärnor kan observeras, ytterligare härma egenskaper som finns i många fasta cancerformer, inklusive den aggressiva hjärncancer glioblastoma (GBM)6.

Flera 2D eller 3D invasion analyser för glioblastoma har rapporterats i litteraturen7,8. Tvådimensionella analyser är främst avsedda för att studera invasion i ett horisontellt plan på ett tunt matrisskikt eller i en Boyden kammare analys9. Tredimensionella analyser har beskrivits med 3D sfäroid kulturer med klassisk glioblastoma cellinjer10. Mer komplexa varianter representeras av invasion av hjärnan organoider av tumör sfäroider i konfrontation kulturer11. Det är dock fortfarande viktigt att utveckla en lätt att använda och reproducerbara analyser tillgängliga för alla laboratorium. Vi har utvecklat ett protokoll för att generera glioblastoma stamceller från patientprover. Kvantifieringen av dessa analyser är lätt hanterbar och kräver endast öppen online-programvara. Kortfattat skärs tumörbitar i små bitar och enzymmatiskt smält. Enstaka celler som härrör från matsmältningen odlas i neurobasal medium. Efter 4-7 dagar bildas sfäriska strukturer spontant. Vid intrakraniell implantation i möss modeller, de bildar tumörer uppvisar en nekrotisk kärna omgiven av pseudo-palisading celler12. Detta liknar nära de egenskaper som finns i GBM patienter.

I den här artikeln beskriver vi vårt protokoll för att producera sfäroider från ett fastställt antal celler för att säkerställa reproducerbarhet. Två kompletterande matriser kan användas för detta ändamål: Matrigel och kollagen typ I. Matrigel är berikad i tillväxtfaktorer och härmar däggdjur basala membran som krävs för cellen fastsättning och migration. Å andra sidan, kollagen typ I, ett strukturellt inslag av stroma, är den vanligaste fibrillary extracellulär matris och används i cell invasion analyser. Häri illustrerar vi vår GBM sfäroid modell genom att utföra migration och spridning analyser. Analys gjordes inte bara vid fasta tidpunkter utan också genom att övervaka sfäroid expansion och cell rörelse av levande bildbehandling. Dessutom gjordes elektronmikroskopi för att visualisera morfologiska detaljer.

Protocol

Informerat skriftligt medgivande erhölls från alla patienter (från Haukeland Hospital, Bergen, Norge enligt lokala etiska kommittébestämmelser). Vårt protokoll följer riktlinjerna i vår institutions kommitté för mänsklig forskningik. 1. Generering av enhetlig storlek tumör sfäroider OBS: Stamceller-liknande celler odlas i neurobasal medium kompletteras med B27 tillägg, heparin, FGF-2, penicillin, och streptomycin, som beskrivs i tidigare artiklar<sup cla…

Representative Results

Sfäroider utarbetades som beskrivs i protokoll avsnitt och observationer gjordes om migration, invasion, spridning och mikroskopi. För att mäta hypoxi i olika områden av sfärisk struktur användes karboxad anhydras IX-färgning för att bestämma hypoxisk aktivitet (figur 1A-C). Fler CAIX-positiva celler observerades i sfäroidcentrum (figur 1A-C). Hypoxiska celler som ligger i sfäroidkärn…

Discussion

Tumör sfäroid analyser är väl anpassade för att studera tumör egenskaper inklusive spridning, invasion, och migration, samt celldöd och läkemedelsrespons. Cancerceller invaderar 3D-matrisen och bildar en invasiv mikrotumör, vilket ses i figur 4B,C. Under den invasiva processen kan matrismetalloproteinaser (MMP) smälta matriser kring tumörceller13och MMP-hämmare (t.ex.14 Migration och invasion innebär överlappande …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete stöddes av Transcan 2017, ARC 2017, Ligue Contre le Cancer (Comité de la Gironde et de la Charente-Maritime). Joris Guyon är en mottagare av stipendium från Toulouse University Hospital (CHU Toulouse).

Materials

96 well round-bottom plate Falcon 08-772-212
Accutase Gibco A11105-01 Stored at 4 °C, sphere dissociation enzyme
B27 Gibco 12587 Stored at -20 °C, defrost before use
Basic Fibroblast Growth Factor Peprotech 100-18B Stored at -20 °C, defrost before use
Countess Cell Counting Chamber Slides Invitrogen C10283
DPBS 10X Pan Biotech P04-53-500 Stored at 4 °C
Fiji software ImageJ Used to analyze pictures
Flask 75 cm2 Falcon 10497302
Matrigel Corning 354230 Stored at -20 °C, diluted to a final concentration of 0.2 mg/mL in cold NBM
Methylcellulose Sigma M0512 Diluted in NBM for a 2% final concentration
NBM Gibco 21103-049 Stored at 4 °C
Neurobasal medium Gibco 21103049 Stored at 4 °C
Penicillin – Streptomycin Gibco 15140-122 Stored at 4 °C
Trypan blue 0.4% ThermoFisher T10282 Used to cell counting
Type I Collagen Corning 354236 Stored at 4 °C

References

  1. Pelissier, F. A., et al. Age-related dysfunction in mechanotransduction impairs differentiation of human mammary epithelial progenitors. Cell Reports. 7, 1926-1939 (2014).
  2. Ishiguro, T., et al. Tumor-derived spheroids: Relevance to cancer stem cells and clinical applications. Cancer Science. 108, 283-289 (2017).
  3. Sutherland, R. M. Cell and environment interactions in tumor microregions: the multicell spheroid model. Science. 240, 177-184 (1988).
  4. Desoize, B., Jardillier, J. Multicellular resistance: a paradigm for clinical resistance?. Critical Reviews in Oncology/Hematology. 36, 193-207 (2000).
  5. Corbet, C., Feron, O. Tumour acidosis: from the passenger to the driver’s seat. Nature Reviews Cancer. 17, 577-593 (2017).
  6. Hirschhaeuser, F., et al. Multicellular tumor spheroids: an underestimated tool is catching up again. Journal of Biotechnology. 148, 3-15 (2010).
  7. Berens, E. B., Holy, J. M., Riegel, A. T., Wellstein, A. A Cancer Cell Spheroid Assay to Assess Invasion in a 3D Setting. Journal of Visualized Experiments. (105), e53409 (2015).
  8. Cavaco, A. C. M., Eble, J. A. A 3D Spheroid Model as a More Physiological System for Cancer-Associated Fibroblasts Differentiation and Invasion In Vitro Studies. Journal of Visualized Experiments. (150), e60122 (2019).
  9. Boye, K., et al. The role of CXCR3/LRP1 cross-talk in the invasion of primary brain tumors. Nature Communications. 8, 1571 (2017).
  10. Dejeans, N., et al. Autocrine control of glioma cells adhesion and migration through IRE1alpha-mediated cleavage of SPARC mRNA. Journal of Cell Science. 125, 4278-4287 (2012).
  11. Golembieski, W. A., Ge, S., Nelson, K., Mikkelsen, T., Rempel, S. A. Increased SPARC expression promotes U87 glioblastoma invasion in vitro. International Journal of Developmental Neuroscience. 17, 463-472 (1999).
  12. Daubon, T., et al. Deciphering the complex role of thrombospondin-1 in glioblastoma development. Nature Communications. 10, 1146 (2019).
  13. Friedl, P., Wolf, K. Tube travel: the role of proteases in individual and collective cancer cell invasion. Cancer Research. 68, 7247-7249 (2008).
  14. Das, A., Monteiro, M., Barai, A., Kumar, S., Sen, S. MMP proteolytic activity regulates cancer invasiveness by modulating integrins. Scientific Reports. 7, 14219 (2017).
  15. Schaeffer, D., Somarelli, J. A., Hanna, G., Palmer, G. M., Garcia-Blanco, M. A. Cellular migration and invasion uncoupled: increased migration is not an inexorable consequence of epithelial-to-mesenchymal transition. Molecular and Cellular Biology. 34, 3486-3499 (2014).
  16. de Gooijer, M. C., Guillen Navarro, M., Bernards, R., Wurdinger, T., van Tellingen, O. An Experimenter’s Guide to Glioblastoma Invasion Pathways. Trends in Molecular Medicine. 24, 763-780 (2018).
  17. Daubon, T., et al. The invasive proteome of glioblastoma revealed by laser-capture microdissection. Neuro-Oncology Advances. 1 (1), vdz029 (2019).
check_url/60998?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Guyon, J., Andrique, L., Pujol, N., Røsland, G. V., Recher, G., Bikfalvi, A., Daubon, T. A 3D Spheroid Model for Glioblastoma. J. Vis. Exp. (158), e60998, doi:10.3791/60998 (2020).

View Video