Summary

En planarisk motilitetsanalyse for å måle de biomodulerende egenskapene til naturlige produkter

Published: May 30, 2020
doi:

Summary

Planarian motilitet brukes til å måle stimulerende og abstinensegenskaper av naturlige produkter sammenlignet med bevegelsen av dyrene i kildevann alene.

Abstract

En enkel, kontrollerbar måte å bruke ikke-parasittiske planarian, Dugesia tigrina, en frittlevende akvatisk flatworm, å studere stimulerende og abstinens egenskaper av naturlige produkter er beskrevet. Eksperimentelle analyser som drar nytte av unike aspekter ved planarian fysiologi har blitt brukt på studier på sårheling, regenerering og tumorigenesis. I tillegg, fordi planarianere viser følsomhet for en rekke miljøstimuli og er i stand til å lære og utvikle bevisste svar, kan de brukes i atferdsstudier som undersøker læring og minne. Planarianere har en grunnleggende bilateral symmetri og et sentralnervesystem som bruker nevrotransmittersystemer mottagelige for studier som undersøker effekten av nevromuskulære biomodulatorer. Derfor er eksperimentelle systemer overvåking planarian bevegelse og motilitet utviklet for å undersøke stoffavhengighet og tilbaketrekking. Fordi planarisk motilitet gir potensialet for et følsomt, lett standardisert motilitetsanalysesystem for å overvåke effekten av stimuli, ble den planariske lokomotoriske hastighetstesten (pLmV) tilpasset for å overvåke både stimulering og abstinensatferd av planarianere gjennom fastsettelse av antall rutenettlinjer krysset av dyrene med tiden. Her er teknikken og dens anvendelse demonstrert og forklart.

Introduction

Protokollen som beskrives bruker planær motilitet for å gi et middel til å vurdere de biomodulerende effektene av naturlige stoffer. Det ble spesielt tilpasset for å avgjøre om disse stoffene fungerer som sentralstimulerende midler, og hvis de da var forbundet med en målbar uttaksatferd1. Denne analysen, kjent som den planariske lokomotoriske hastighetstesten (pLmV), ble først brukt til å teste kjente farmakologiskemidler 2,3. Anvendelsen av denne planære motilitetsbaserte analysen har siden vokst i popularitet og har blitt vedtatt av forskjellige laboratorier som er interessert i andre stoffer enn naturligeprodukter 4,5. For denne analysen er en planarian plassert i en petriskål som inneholder kildevann eller kildevann som inneholder en oppløst biomodulator. Fordi selve fatet er plassert på grafpapir, kan antall rutenettlinjer krysset av dyret med tiden når den beveger seg om beholderen, brukes til å bestemme bevegelseshastigheten i hver tilstand. Den lyse/mørke testen, ellers referert til som den bedede stedspreferansetesten (CPP), er en annen variasjon på temaet overvåking av planær motilitet, og vurderer hvor raskt dyrene reagerer og migrerer til et mørkt miljø6,7. Videosporing av planære bevegelser kan også analyseres ved hjelp av dataprogrammer og senter for massesporing (COM)sporing 8,,9,,10,,11.

Å bruke planarian som dyremodell for slike studier gir flere fordeler fremfor andre dyr ved at eksperimentereren enkelt kan kontrollere analysemiljøet. Spesielt, sulte planarians før eksperimentering kan hindre deres eksponering for andre ernæringsmessige eller farmakologiske midler som ellers kan forvirre resultatene, og den spesifikke biomodulatoren under undersøkelse kan innføres til planarianerne bare ved å legge den direkte til kulturvannet, og dermed standardisere eksponering. Siden planarianere har et nervesystem og nevrotransmittere som minner om “høyere orden” dyr, fysiologi og eksperimentelle reaksjoner av disse dyrene til nevromuskulære stimuli anses biologisk relevant for andreorganismer 12,13,14,15,16. Også, fordi planarianere er relativt billig og grei å vedlikeholde i laboratoriet, tilbyr de en tilgjengelig biologisk modell for mange etterforskere.

Som et eksperimentelt dyr er planarianere egnet til et bredt spekter av studier. For eksempel bruker vår gruppe, samt andre forskere planarianere til å studere tumorigenesis17,18,19. Planarians viser også en rekke responsatferd til kjemiske, termiske, gravitasjons-, elektriske, foto- og magnetiske stimuli som har dannet grunnlaget for andre analysesystemer. Noen av disse effektene har blitt brukt til å studere læring og minne hos disse dyrene20,21,22,23,24,25,26,27. Den primære bruken av den planære modellen i litteraturen i dag fokuserer på aktiviteten til planære pluripotente stamceller, kalt neoblaster, og deres rolle iregenerering 28,29,30. Ved å vedta modellen som er beskrevet her, kan det derfor muliggjøre videre studier ved hjelp av andre planære analyser for å gi en bredere forståelse av hvordan naturlige produkter og andre biomodulatorer påvirker organismen.

Protocol

1. Planarisk husdyrhold Bruk planarianere kjøpt fra et biologisk forsyningsselskap eller villfanget om nødvendig. Planarianerne som brukes i denne protokollen er Dugesia tigrina, som oppført i forsyningslisten. Denne arten er også referert til som Girardia tigrina31. Andre akvatiske planære arter er ogsåakseptable 2,3.MERK: Protokollen som er beskrevet er rettet mot dyr kjøpt fra et biologisk forsynin…

Representative Results

Laboratoriet som er konfigurert og klargjøring av arbeidsområdet for å kjøre pLmV-analysen, bør fullføres før eksperimenteringen begynner. Dette inkluderer utarbeidelse av habituation container, skyll beholder om nødvendig (for uttak eksperimenter), Petri parabolen over laminert rutenett papir, og riktig plassert kamera (Figur 1). Når alle videoene er tatt, er det tilrådelig å bruke et felles dataark for å standardisere datainnsamling og presentasjon mellom undersøkere (<strong …

Discussion

En enkel og tilgjengelig planarisk motilitetsanalyse er beskrevet for å bestemme stimulerende og abstinenseffekter av naturlige produkter. Som atferdsmodell er det nødvendig å ha strenge protokoller for å score bevegelse og klare definisjoner av atferd for å standardisere observasjoner mellom ulike eksperimenterere. Ideene som presenteres, gir en demonstrasjon av hvordan dette kan oppnås. Hvert laboratorium som bruker denne protokollen, bør tilpasse den presenterte informasjonen slik at den passer til effekten av …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne ønsker å anerkjenne kontoret til Institutional Advancement, og Morrisville College Foundation for et publikasjonsstipend for å støtte dette arbeidet, samt SUNY Morrisville Collegiate Science and Technology Entry Program (CSTEP) for deres pågående hjelp og støtte til lavere forskning ved SUNY Morrisville. Vi ønsker også å takke Sophia Hutchens for nyttige kommentarer til teknikken som er beskrevet.

Materials

Bottled Water – 1 Gal. Poland Spring N/A Spring water for planarian culture and to prepare solutions
Brown Planaria (Dugesia tigrina) Carolina Biological Supply Company 132954 Brown planaria living (other species are acceptable)
Flat Paintbrush Royal Crafter's Choice 9159 Flat watercolor paintbrushes for cleaning planarian culture containers
Glass Petri Dish – 10 cm Kimax N/A 10 cm diameter (glass) Petri dishes for pLmV assay
Glass Petri Dish – 5 cm Kimax N/A 5 cm and Petri dishes for rinsing planarians during withdrawal experiments and for stimulant habituation
Grid Paper Any N/A Standard 0.5 cm grid paper for pLmV assay
iPEVO Visualizer (software) iPEVO https://www.ipevo.com/software/visualizer Document camera software for video capture and recording
Metalware Set with Support Stand and Retort Ring Any N/A Standard chemistry lab ring stand to hold a cell phone camera if used
Organic Egg Any N/A Organic egg or beef liver for feeding planarains
Polycarbonate Bottle w/ Screw-on Cap – 10 mL Beckman N/A Plastic vials to hold 5 to 10 mL volumes for stimulant habituation
Round Storage Container – 10 cm Ziploc N/A 10 cm Round food storage containers for approximately 90 planarians or fewer
Round Water Paint Brush LOEW-Cornell N/A Small round watercolor paint brushes (numbers 3 to 6) – soft
Transfer Pipette Any N/A Wide bore (5 mL) plastic transfer pipettes to move planarians
USB Document Camera iPEVO CDVU-06IP Document camera (or other camera or cell phone camera)

References

  1. Moustakas, D. Guarana provides additional stimulation over caffeine alone in the planarian model. PloS One. 10 (4), 0123310 (2015).
  2. Raffa, R. B., Valdez, J. M. Cocaine withdrawal in Planaria. European Journal of Pharmacology. 430 (1), 143-145 (2001).
  3. Raffa, R. B., Holland, L. J., Schulingkamp, R. J. Quantitative assessment of dopamine D2 antagonist activity using invertebrate (Planaria) locomotion as a functional endpoint. Journal of Pharmacology and Toxicological Methods. 45 (3), 223-226 (2001).
  4. Thumé, I. S., Frizzo, M. E. Sertraline induces toxicity and behavioral alternations in planarians. Biomedical Research International. 2017, 5792621 (2017).
  5. Aggarwal, S., et al. Identification of a novel allosteric modulator of the human dopamine transporter. ACS Chemical Neuroscience. 10 (8), 3718-3730 (2019).
  6. Zhang, C., Tallarida, C. S., Raffa, R. B., Rawls, S. M. Sucrose produces withdrawal and dompamine-sensitive reinforcing effects in planarians. Physiology & Behavior. , 8-13 (2013).
  7. Zewde, A. M., et al. PLDT (planarian light/dark test): an invertebrate assay to quantify defensive responding and study anxiety-like effects. Journal of Neuroscience Methods. 293, 284-288 (2018).
  8. Risse, B., Otto, N., Berh, D., Jiang, X., Klämbt, C. FIM Imaging and FIMtrack: two new tools allowing high-throughput and cost effective locomotion analysis. Journal of Visualized Experiments. (94), e52207 (2014).
  9. Inoue, T., Hoshino, H., Yamashita, T., Shimoyama, S., Agata, K. Planarian shows decision-making behavior in response to multiple stimuli by integrative brain function. Zoological Letters. 1, 7 (2015).
  10. Hastrom, D., Cochet-Escartin, O., Zhang, S., Khuu, C., Collins, E. M. S. Freshwater planarians as an alternative animal model for neurotoxicology. Toxicological Sciences. 147 (1), 270-285 (2015).
  11. Risse, B., Berh, D., Otto, N., Klämbt, C., Jiang, X. FIMtrack: an open source tracking and locomotion analysis software for small animals. PLoS One Computational Biology. 13 (5), 100553 (2017).
  12. Pagán, O. R. Planaria: an animal model that integrates development, regeneration and pharmacology. International Journal of Developmental Biology. 61, 519-529 (2017).
  13. Palladini, G. A pharmacological study of cocaine activity in planaria. Comparative Biochemistry and Physiology. 115 (1), 41-45 (1996).
  14. Buttarelli, F. R., Pellicano, C., Pontieri, F. E. Neuropharmacology and behavior in planarians: translation to mammals. Comparative Biochemistry and Physiology Part C. Toxicology & Pharmacology. 147 (4), 399-408 (2008).
  15. Nishimura, K., et al. Identification of glutamic acid decarboxylase gene and distribution of GABAergeric nervous system in the planarian Dugesia japonica. Neuroscience. 153 (4), 1103-1114 (2008).
  16. Raffa, R. B., Rawls, S. M. . A model for drug action and abuse. , (2008).
  17. Hall, F., Morita, M., Best, J. B. neoplastic transformation in the planarian: I cocarcinogenesis and histopathology. The Journal of Experimental Zoology. 240 (2), 211-227 (1986).
  18. Voura, E. B., et al. Planarians as models of cadmium-induced neoplasia provide measurable benchmarks for mechanistic studies. Ecotoxicology and Environmental Safety. 142, 544-554 (2017).
  19. Van Roten, A., et al. A carcinogenic trigger to study the function of tumor suppressor genes in Schmedtea mediterranea. Disease Models and Mechanisms. 11 (9), 032573 (2018).
  20. Mason, P. R. Chemo-klino-kinesis in planarian food location. Animal Behaviour. 23 (2), 460-469 (1975).
  21. Van Huizen, A. V., et al. Weak magnetic fields alter stem cell-mediated growth. Science Advances. 5 (1), 7201 (2019).
  22. Brown, H. M., Ogden, T. E. The electrical response of the planarian ocellus. Journal of General Physiology. 51 (2), 255-260 (1968).
  23. Inoue, T., Yamashita, T., Agata, K. Thermosensory signaling by TRPM is processed by brain serotonergic neurons to produce planarian thermotaxis. The Journal of Neuroscience. 34 (47), 15701-15714 (2014).
  24. Byrne, T. Effects of ethanol on negative phototaxis and motility in brown planarians (Dugesia tigrina). Neuroscience Letters. 685, 102-108 (2018).
  25. de Sousa, N., et al. Transcriptomic analysis of planarians under simulated microgravity or 8g demonstrates that alteration of gravity induces genomic and cellular alterations that could facilitate tumoral transformation. International Journal of Molecular Sciences. 20 (3), 720 (2019).
  26. Best, J. B., Rubinstein, I. Maze learning and associated behavior in planaria. Journal of Comparative and Physiological Psychology. 55, 560-566 (1962).
  27. Shomrat, T., Levin, M. An automated training paradigm reveals long-term memory in planarians and its persistence through head regeneration. The Journal Experimental Biology. 216, 3799-3810 (2013).
  28. Robarts-Galbraith, R. H., Newmark, P. A. On the organ trail: insights into organ regeneration in the planarian. Current Opinion in Genetics & Development. 32, 37-46 (2015).
  29. Ivancovic, M., et al. Model systems for regeneration: planarians. Development. 146 (17), 167684 (2019).
  30. Herath, S., Lobo, D. Cross-inhibition of Turing patterns explains the self-organized regulatory mechanism of planarian fission. Journal of Theoretical Biology. 485, 110042 (2019).
  31. Itoh, M. T., Shinozawa, T., Sumi, Y. Circadian rhythms of melatonin-synthesizing enzyme activities and melatonin levels in planarians. Brain Research. 830 (1), 165-173 (1999).
  32. Itoh, M. T., Igarashi, J. Circadian rhythm of serotonin levels in planarians. Neuroreports. 11 (3), 473-476 (2000).
  33. Hinrichsen, R. D., et al. Photosensitivity and motility in planarian Schmedtea mediterranea vary diurnally. Chronobiology International. 36 (12), 1789-1793 (2019).
  34. Raffa, R. B., Desai, P. Description and quantification of cocaine withdrawal signs in planaria. Brain Research. 1032 (1-2), 200-202 (2005).
  35. Pagán, O. R., et al. A cembranoid from tobacco prevents the expression of induced withdrawal behavior in planarian worms. European Journal of Pharmacology. 615 (1-3), 118-124 (2009).
  36. Rawls, S. M., Patil, T., Yuvasheva, E., Raffa, R. B. First evidence that drugs of abuse produce behavioral sensitization and cross-sensitization in planarians. Behavioural Pharmacology. 21 (4), 301-313 (2010).
  37. Venturini, G., et al. A pharmacological study of dopaminergic receptors in planaria. Neuropharmacology. 28 (12), 1377-1382 (1989).
  38. Ouyang, K., et al. Behavioral effects of Spenda, Equal and sucrose: Clues from planarians on sweeteners. Neuroscience Letters. 636, 213-217 (2017).
  39. Pagán, O. R., Montgomery, E., Deats, S., Bach, D., Baker, D. Evidence of nicotine-induced, curare-sensitive, behavior in planarians. Neurochemical Research. 40 (10), 2087-2090 (2015).
  40. Shibata, N., Agata, K. RNA interference in planarians: feeding and injection of synthetic dsRNA. Methods in Molecular Biology. 1774, 455-466 (2018).
  41. Pagán, O. R., et al. Reversal of cocaine-induced planarian behavior by parthenolide and related sesquiterpene lactones. Pharmacology Biochemistry and Behavior. 89 (2), 160-170 (2008).
  42. Vouga, A., et al. Stereochemistry and neuropharmacology of a ‘bath salt’ cathinone: S-enantiomer of mephedrone reduces cocaine-induced reward and withdrawal in invertebrates. Neuropharmacology. 91, 109-116 (2015).
  43. Chan, J. D., Marchant, J. S. Pharmacological and functional genetic assays to manipulate regeneration of the planarian Dugesia japonica. Journal of Visualized Experiments. (54), e3058 (2011).
check_url/61070?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Voura, E. B., Pulquerio, C. H., Fong, R. A. M. V., Imani, Z., Rojas, P. J., Pratt, A. M., Shantel, N. M., Livengood, E. J. A Planarian Motility Assay to Gauge the Biomodulating Properties of Natural Products. J. Vis. Exp. (159), e61070, doi:10.3791/61070 (2020).

View Video