Summary

En musemodell for kronisk pankreatitt via gallekanal TNBS-infusjon

Published: February 28, 2021
doi:

Summary

Kronisk pankreatitt (CP) er en sykdom preget av betennelse og fibrose i bukspyttkjertelen, ofte forbundet med intractable magesmerter. Denne artikkelen fokuserer på å raffinere teknikken for å generere en musemodell av CP via gallekanalinfusjon med 2,4,6 -trinitrobenzensulfonsyre (TNBS).

Abstract

Kronisk pankreatitt (CP) er en kompleks sykdom som involverer bukspyttkjertelbetennelse og fibrose, kjertelatrofi, magesmerter og andre symptomer. Flere gnagermodeller er utviklet for å studere CP, hvorav gallekanalen 2,4,6 -trinitrobenzene sulfonsyre (TNBS) infusjonsmodell replikerer egenskapene til nevropatisk smerte sett i CP. Imidlertid er gallekanalinfusjon hos mus teknisk utfordrende. Denne protokollen demonstrerer prosedyren for gallekanal TNBS-infusjon for generering av en CP-musemodell. TNBS ble infundert i bukspyttkjertelen gjennom ampulla av Vater i tolvfingertarmen. Denne protokollen optimalisert narkotika volum, kirurgiske teknikker, og narkotika håndtering under prosedyren. TNBS-behandlede mus viste egenskaper ved CP som reflektert av kroppsvekt og vektreduksjoner i bukspyttkjertelen, endringer i smerterelatert atferd og unormal morfologi i bukspyttkjertelen. Med disse forbedringene var dødeligheten forbundet med TNBS-injeksjon minimal. Denne prosedyren er ikke bare kritisk for å generere kreft i bukspyttkjertelen sykdom modeller, men er også nyttig i lokal bukspyttkjertel narkotika levering.

Introduction

Kronisk pankreatitt (CP) er en kronisk inflammatorisk sykdom preget av atrofi i bukspyttkjertelen, fibrose, magesmerter og eventuelt tap av både eksokrine og endokrine funksjoner1. Nåværende medisinske og kirurgiske behandlinger er ikke kurative, men utføres for å lindre symptomer som er konsekvensen av sykdommen: ildfaste magesmerter, endokrine og eksokrine dysfunksjon. Derfor er det nødvendig med mer effektive behandlinger2. Dyremodeller gir et viktig verktøy for å utvikle en bedre forståelse av sykdommen og undersøke potensielle terapeutiskestoffer 3. Flere musemodeller for CP er utviklet, hvorav cerulein- og /eller alkoholmodeller ofte brukes. Cerulein, en oligopeptid stimulerende bukspyttkjertel sekresjon, har vist seg å reprodusere en CP-modell med pankreas atrofi, fibrose, blant andre4. En annen vanlig modell bruker serielle injeksjoner av L-arginin, som produserer eksokrininsuffisiens lik den som observeres hos humane pasienter5. CP kan også induseres ved fullstendig eller delvis ligasjon i bukspyttkjertelen, i tillegg til hypertensjon i bukspyttkjertelen6,7. Til tross for mangfoldet av dyremodeller som er tilgjengelige for CP, reproduserer ingen av disse modellene effektivt magesmerter som oppleves av CP-pasienter8.

Tidligere studier viste at lokal pankreas injeksjon av 2,4,6 -trinitrobenzen sulfonsyre (TNBS) gjenskaper vedvarende smerte opplevd av CP pasienter9,10,11. TNBS-behandlede mus viste abdominal overfølsomhet og økt smerterelatert atferd samt en “generalisert overfølsomhet” for smertefulle stimuli, et fenomen som har blitt observert hos CP-pasienter10. I tillegg til nøyaktig etterligning av CP-smerte, replikerer TNBS-modellen også andre patologiske egenskaper ved den menneskelige tilstanden som fibrose, mononukleær celleinfiltrasjon og erstatning av acinarceller med fettvev10,12. TNBS-infusjon via gallekanal er imidlertid en teknisk utfordrende prosedyre hos mus som kan forårsake død. Så vidt vi vet er det ingen visuell protokoll for å vise hvordan gallekanalinfusjon utføres. I denne artikkelen demonstrerer vi prosedyren for galleduksjonsinfusjonen av TNBS for å generere en CP-musemodell. Denne prosedyren vil bidra til å generere verdifulle dyremodeller for studiet av CP og andre bukspyttkjertelsykdommer og kan brukes til å tilføre andre materialer (f.eks. virus, celler) i bukspyttkjertelen13.

Protocol

Alle prosedyrer ble utført med godkjenning fra Institutional Animal Care and Use Committees ved Medical University of South Carolina og Ralph H. Johnson Medical Center. C57BL/6J hannmus mellom 8-10 uker ble brukt i denne studien. Mus ble plassert under en standard 12 lys / 12 mørk syklus med ad libitumaccess til mat og vann. 1. Fremstilling av TNBS injeksjonsvæske, oppløsning Forbered 10% etanol i 0,9% saltvann. Løs opp lager TNBS (se Materialtabell) i 10 % etan…

Representative Results

Gallekanalen infusjonsprosedyrene ble optimalisert for å redusere musedødelighet forbundet med denne prosedyren10. TNBS ble først gitt i et totalt volum på 35 μL eller 50 μL. Injeksjon av TNBS i et volum på 50 μL kan nå hele bukspyttkjertelen og indusere en mer homogen sykdom fenotype (Figur 1B). I tillegg kan injeksjon av TNBS ved hjelp av insulinsprøyte med 31G-nål bedre kontrollere infusjonshastigheten i forhold til vanlige sprøyter og nålestørrelser….

Discussion

Gallekanalinfusjon av TNBS for å indusere kronisk pankreatitt er teknisk utfordrende hos mus, da opptil 22,5% av musene kan dø innen 3-4 dager etter legemiddelinfusjon10. Her raffinerte denne rapporten prosedyren basert på tidligere studier og reduserte tidlig musedødelighet til <10%. For eksempel kan det økte legemiddelvolumet (fra 35 μL til 50μL) sikre at stoffene når hele bukspyttkjertelen. Bruk av en insulinsprøyte og en mindre nålstørrelse (31G) reduserer potensiell skade på buksp…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denne studien ble støttet av Department of Veterans Affairs (VA-ORD BLR&D Merit I01BX004536), og National Institute of Health grants # 1R01DK105183, DK120394 og DK118529 til HW. Vi takker Dr. Hongju Wu for å dele teknisk erfaring.

Materials

10% Neutral buffered formalin v/v Fisher Scientific 23426796
Alcohol prep pads, sterile Fisher Scientific 22-363-750
Animal Anesthesia system VetEquip, Inc. 901806
Buprenorphine hydrochloride, injection Par Sterile Products, LLC NDC 42023-179-05
Centrifuge tubes, 15 mL Fisher Scientific 0553859A
Ethanol, absolute (200 proof), molecular biology grade Fisher Scientific BP2818500
Extra fine Micro Dissecting scissors 4” straight sharp Roboz Surgical Instrument Co. RS-5882
Graefe forceps 4” extra delicate tip Roboz Surgical Instrument Co. RS-5136
Heated pad Amazon B07HMKMBKM
Hegar-Baumgartner Needle Holder 5.25” Roboz Surgical Instrument Co. RS-7850
Insulin syringe with 31-gauge needle BD 324909
Iodine prep pads Fisher Scientific 19-027048
Isoflurane Piramal Critical Care NDC 66794-017-25
Micro clip applying forceps 5.5” Roboz Surgical Instrument Co. RS-5410
Micro clip, straight strong curved 1x6mm Roboz Surgical Instrument Co. RS-5433
Micro clip, straight, 0.75mm clip width Roboz Surgical Instrument Co. RS-5420
Picrylsulfonic acid solution, TNBS, 1M in H2O Millipore Sigma 92822-1ML
Polypropylene Suture 4-0 Med-Vet International MV-8683
Polypropylene Suture 5-0 Med-Vet International MV-8661
Sodium chloride, 0.9% intravenous solution VWR 2B1322Q
Surgical drape, sterile Med-Vet International DR1826
Tissue Cassette Fisher Scientific 22-272416
Von Frey filaments Bioseb EB2-VFF

References

  1. Klauss, S., et al. Genetically induced vs. classical animal models of chronic pancreatitis: a critical comparison. The Federation of American Societies for Experimental Biology Journal. 32, 5778-5792 (2018).
  2. Liao, Y. H., et al. Histone deacetylase 2 is involved in µ-opioid receptor suppression in the spinal dorsal horn in a rat model of chronic pancreatitis pain. Molecular Medicine Reports. 17 (2), 2803-2810 (2018).
  3. Gui, F., et al. Trypsin activity governs increased susceptibility to pancreatitis in mice expressing human PRSS1R122H. The Journal of Clinical Investigation. 130 (1), 189-202 (2020).
  4. Sun, Z., et al. Adipose Stem Cell Therapy Mitigates Chronic Pancreatitis via Differentiation into Acinar-like Cells in Mice. Molecular Therapy. 25 (11), 2490-2501 (2017).
  5. Aghdassi, A. A., et al. Animal models for investigating chronic pancreatitis. Fibrogenesis and Tissue Repair. 4 (1), 26 (2011).
  6. Scoggins, C. R., et al. p53-dependent acinar cell apoptosis triggers epithelial proliferation in duct-ligated murine pancreas. American Journal of Physiology-Gastrointestinal and Liver Physiology. 279 (4), 827-836 (2000).
  7. Bradley, E. L. Pancreatic duct pressure in chronic pancreatitis. The American Journal of Surgery. 144 (3), 313-316 (1982).
  8. Zhao, J. B., Liao, D. H., Nissen, T. D. Animal models of pancreatitis: can it be translated to human pain study. World Journal of Gastroenterology. 19 (42), 7222-7230 (2013).
  9. Winston, J. H., He, Z. J., Shenoy, M., Xiao, S. Y., Pasricha, P. J. Molecular and behavioral changes in nociception in a novel rat model of chronic pancreatitis for the study of pain. Pain. 117 (1-2), 214-222 (2005).
  10. Cattaruzza, F., et al. Transient receptor potential ankyrin 1 mediates chronic pancreatitis pain in mice. American Journal of Physiology-Gastrointestinal and Liver Physiology. 304 (11), 1002-1012 (2013).
  11. Bai, Y., et al. Anterior insular cortex mediates hyperalgesia induced by chronic pancreatitis in rats. Molecular Brain. 12 (1), 76 (2019).
  12. Puig-Diví, V., et al. Induction of chronic pancreatic disease by trinitrobenzene sulfonic acid infusion into rat pancreatic ducts. Pancreas. 13 (4), 417-424 (1996).
  13. Zhang, Y., et al. PAX4 Gene Transfer Induces alpha-to-beta Cell Phenotypic Conversion and Confers Therapeutic Benefits for Diabetes Treatment. Molecular Therapy. 24 (2), 251-260 (2016).
  14. Ceppa, E. P., et al. Serine proteases mediate inflammatory pain in acute pancreatitis. American Journal of Physiology-Gastrointestinal and Liver Physiology. 300 (6), 1033-1042 (2011).
  15. Puig-Divi, V., et al. Induction of chronic pancreatic disease by trinitrobenzene sulfonic acid infusion into rat pancreatic ducts. Pancreas. 13 (4), 417-424 (1996).
  16. Xu, G. Y., Winston, J. H., Shenoy, M., Yin, H., Pasricha, P. J. Enhanced excitability and suppression of A-type K+ current of pancreas-specific afferent neurons in a rat model of chronic pancreatitis. American Journal of Physiology-Gastrointestinal and Liver Physiology. 291 (3), 424-431 (2006).
  17. Drewes, A. M., et al. Pain in chronic pancreatitis: the role of neuropathic pain mechanisms. Gut. 57 (11), 1616-1627 (2008).
check_url/62080?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Gou, W., Swaby, L., Wolfe, A. M., Lancaster, W. P., Morgan, K. A., Wang, H. A Mouse Model for Chronic Pancreatitis via Bile Duct TNBS Infusion. J. Vis. Exp. (168), e62080, doi:10.3791/62080 (2021).

View Video