Summary

Akkumulering og distribusjon av fluorescerende mikroplast i de tidlige livsstadiene av sebrafisk

Published: July 04, 2021
doi:

Summary

Sebrafisk embryoer/larver utvikler seg eksternt og er optisk gjennomsiktige. Bioakkumulering av mikroplast hos fisk i tidlige livsstadier vurderes lett med fluorescerende merkede mikrober.

Abstract

Som en ny type miljøgift har mikroplast blitt mye funnet i vannmiljøet og utgjør en høy trussel mot vannlevende organismer. Bioakkumulering av mikroplast spiller en nøkkelrolle i deres toksiske effekter; Men som et partikkel er deres bioakkumulering forskjellig fra mange andre miljøgifter. Beskrevet her er en mulig metode for å visuelt bestemme akkumulering og distribusjon av mikroplast i sebrafisk embryoer eller larver ved hjelp av fluorescerende mikroplast. Embryoer er utsatt for forskjellige konsentrasjoner (0,1, 1 og 10 mg / l) fluorescerende mikroplast med en diameter på 500 nm i 120 timer. Det er vist i resultatene at mikroplast kan bioakkumulere i sebrafiskembryoer/larver på en konsentrasjonsavhengig måte. Før klekking finnes sterk fluorescens rundt den embryonale korionen; mens i sebrafisk larver, eggeplomme sac, perikardium og mage-tarmkanalen er de viktigste akkumulerte stedene for mikroplast. Resultatene viser opptak og internalisering av mikroplast i sebrafisk i tidlige livsstadier, noe som vil gi grunnlag for bedre forståelse av effekten av mikroplast på akvatiske dyr.

Introduction

Siden første syntetisert på 1900-tallet, er plast mye brukt på ulike felt, noe som resulterer i rask vekst av global produksjon1. I 2018 ble det produsert ca. 360 millioner tonn plast over hele verden2. Plasten i det naturlige miljøet vil forringes til fine partikler på grunn av kjemiske, fysiske eller biologiske prosesser3. Vanligvis er fine plastpartikler <5 mm i størrelse definert som mikroplast4. Mikroplast er også utviklet for spesifikke bruksområder, for eksempel mikrober fra kosmetiske produkter5. Som nesten permanente forurensninger akkumuleres mikroplast i miljøet, og har tiltrukket seg økende oppmerksomhet fra forskere, beslutningstakere og publikum1,6. Tidligere studier dokumenterte at mikroplast kan forårsake bivirkninger hos fisk, for eksempel gastrointestinal skade7, nevrotoksisitet8, endokrineforstyrrelser 9, oksidativt stress10 og DNA-skade11. Imidlertid har toksisiteten til mikroplast ikke blitt fullstendig avslørt så langt12,13.

Sebrafiskembryoer gir mange eksperimentelle fordeler, inkludert liten størrelse, ekstern befruktning, optisk gjennomsiktighet og store clutcher, og regnes som en ideell modellorganisme for in vivo som studerer effekten av miljøgifter på fisk i tidlige livsstadier. I tillegg er det bare nødvendig med begrensede mengder teststoffer for evaluering av biologiske responser. Her er sebrafiskembryoer utsatt for forskjellige konsentrasjoner av mikroplast (0,1, 1, 10 mg / L) i 5 dager, og bioakkumulering og distribusjon av mikroplast i sebrafiskembryoer / larver evalueres. Dette resultatet vil fremme vår forståelse av toksisiteten av mikroplast til fisk, og metoden beskrevet her kan potensielt generaliseres for å bestemme akkumulering og distribusjon av andre typer fluorescerende materialer i de tidlige livsstadiene av sebrafisk.

Protocol

Voksen sebrafisk stammer fra China Zebrafish Resource Center (Wuhan, Kina). Forsøkene ble utført i samsvar med den nasjonale veilederen “Laboratory Animal Guideline for Ethical Review of Animal Welfare (GB/T35892-2018). 1. Embryo samling Vedlikehold fisk i 20 L glasstanker med resirkulering av kullfiltrert vann fra springen (pH 7,0 ± 0,2) ved konstant temperatur (28 ± 0,5 °C) på en fotoperiod på 14:10 t lys: mørkt. Fôr fisk to ganger daglig med Artemia nauplii<…

Representative Results

Fordelingen og akkumuleringen av fluorescerende mikroplast er vist i figur 1 og tabell 1. Ingen synlig fluorescens observeres i den ueksponerte gruppen (kontroll). Imidlertid er det funnet en opphopning av fluorescens rundt koret etter eksponering for forskjellige konsentrasjoner av mikroplast (24 hkf). Grønn fluorescens oppdages også i larver, og fluorescensnivåene ser ut til å øke på en konsentrasjons- og tidsavhengig måte. Eggeplommesekken, perikardiumet og mage-ta…

Discussion

I henhold til retningslinjene for beskyttelse av dyr som brukes til vitenskapelige formål, for eksempel EU-direktiv 2010/63/EU, er dyreetisk tillatelse ikke obligatorisk for et eksperiment med tidlige livsstadier av sebrafisk til scenen for å kunne selvstendig fôre (5 dager etter befruktning)17. Beste velferdspraksis er imidlertid viktig for å optimalisere bruken av sebrafisk, og for eksempel bør humane metoder for anestesi og eutanasi være av bekymring. Etyl 3-aminobenzoat metansulfat (MS-2…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble finansiert av National Natural Science Foundation of China (21777145, 22076170), og Program for Changjiang Scholars and Innovative Research Team in University (IRT_17R97).

Materials

Fluorescent microscope Nikon, Japan Eclipse Ti-S
Green fluorescently labeled polystyrene beads Phosphorex, USA 2103A
Tricaine Sigma-Aldrich, USA A5040

References

  1. SAPEA (Science Advice for Policy by European Academies). . A Scientific Perspective on Microplastics in Nature and Society. , (2019).
  2. Plastics Europe. . Plastics-the facts 2019. , (2019).
  3. Andrady, A. L. Microplastics in the marine environment. Marine Pollution Bulletin. 62, 1596-1605 (2011).
  4. Arthur, C., Baker, J., Bamford, H. Proceedings of the International Research Workshop on the Occurrence, Effects and Fate of Microplastic Marine Debris. National Oceanic and Atmospheric Administration Technical Memorandum. , (2009).
  5. Ivleva, N. P., Wiesheu, A. C., Niessner, R. Microplastic in aquatic ecosystems. Angewandte Chemie International Edition. 56, 1720-1739 (2017).
  6. Lu, T., et al. Pollutant toxicology with respect to microalgae and cyanobacteria. Journal of Environmental Sciences. 99, 175-186 (2021).
  7. Huang, J. N., et al. Exposure to microplastics impairs digestive performance, stimulates immune response and induces microbiota dysbiosis in the gut of juvenile guppy (Poecilia reticulata). Science of the Total Environment. 733, 138929 (2020).
  8. Prüst, M., Meijer, J., Westerink, R. H. S. The plastic brain: neurotoxicity of micro- and nanoplastics. Particle and Fibre Toxicology. 17, 24 (2020).
  9. Jakubowska, M., et al. Effects of chronic exposure to microplastics of different polymer types on early life stages of sea trout Salmo trutta. Science of the Total Environment. 740, 139922 (2020).
  10. Qiang, L., Cheng, J. Exposure to polystyrene microplastics impairs gonads of zebrafish (Danio rerio). Chemosphere. 263, 128161 (2021).
  11. Hamed, M., Soliman, H. A. M., Osman, A. G. M., Sayed, A. E. H. Antioxidants and molecular damage in Nile Tilapia (Oreochromis niloticus) after exposure to microplastics. Environmental Science and Pollution Research. 27, 14581-14588 (2020).
  12. Burns, E. E., Boxall, A. B. A. Microplastics in the aquatic environment: Evidence for or against adverse impacts and major knowledge gaps. Environmental Toxicology and Chemistry. 37, 2776-2796 (2018).
  13. Ma, H., Pu, S., Liu, S., Bai, Y., Mandal, S., Xing, B. Microplastics in aquatic environments: Toxicity to trigger ecological consequences. Environmental Pollution. 261, 114089 (2020).
  14. Westerfield, M. . The Zebrafish Book: A Guide for the Laboratory Use of Zebrafish (Danio reio). 4th ed. , (2000).
  15. Kimmel, C. B., Ballard, W. W., Kimmel, S. R., Ullmann, B., Schilling, T. F. Stages of embryonic development of the zebrafish. Developmental Dynamics. 203, 253-310 (1995).
  16. Pikuda, O., Xu, E. G., Berk, D., Tufenkji, N. Toxicity assessments of micro- and nanoplastics can be confounded by preservatives in commercial formulations. Environmental Science & Technology Letters. 6, 21-25 (2019).
  17. Lidster, K., Readman, G. D., Prescott, M. J., Owen, S. F. International survey on the use and welfare of zebrafish Danio rerio in research. Journal of Fish Biology. 90, 1891-1905 (2017).
  18. Pitt, J. A., et al. Uptake, tissue distribution, and toxicity of polystyrene nanoparticles in developing zebrafish (Danio rerio). Aquatic Toxicology. 194, 185-194 (2018).
  19. Lin, S. J., Zhao, Y., Nel, A. E., Lin, S. Zebrafish: An in vivo model for nano EHS studies. Small. 9, 1608-1618 (2013).
check_url/62117?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Xu, C., Guo, H., Wang, R., Li, T., Gu, L., Sun, L. Accumulation and Distribution of Fluorescent Microplastics in the Early Life Stages of Zebrafish. J. Vis. Exp. (173), e62117, doi:10.3791/62117 (2021).

View Video