Summary

En effektiv metod för riktad hepatocytliknande cellinduktion från mänskliga embryonala stamceller

Published: May 06, 2021
doi:

Summary

Detta manuskript beskriver ett detaljerat protokoll för differentiering av mänskliga embryonala stamceller (hESCs) till funktionella hepatocytliknande celler (HLCs) genom att kontinuerligt komplettera Activin A och CHIR99021 under hESC-differentiering till slutgiltig endokderm (DE).

Abstract

De potentiella funktionerna hos hepatocytliknande celler (HLC) som härrör från mänskliga embryonala stamceller (hESCs) håller stora löften om sjukdomsmodellering och läkemedelsscreeningsapplikationer. Här tillhandahålls en effektiv och reproducerbar metod för differentiering av hESC:er till funktionella HLC:er. Upprättandet av en endoderm-härstamning är ett viktigt steg i differentieringen till HLCs. Med vår metod reglerar vi de viktigaste signalvägarna genom att kontinuerligt komplettera Activin A och CHIR99021 under hESC differentiering till slutgiltig endokderm (DE), följt av generering av lever stamceller, och slutligen HLCs med typiska hepatocyt morfologi i ett stegvis metod med helt definierade reagenser. HESC-härledda HLC som produceras med denna metod uttrycker scenspecifika markörer (inklusive albumin, HNF4α nukleär receptor och natriumtaurocholate cotransporting polypeptide (NTCP)), och visa särskilda egenskaper relaterade till mogna och funktionella hepatocyter (inklusive indocyanin grön färgning, glykogen lagring, hematoxylin-eosin färgning och CYP3 verksamhet), och kan ge en plattform för utveckling av HLC-baserade tillämpningar i studien av leversjukdomar.

Introduction

Levern är ett mycket metaboliskt organ som spelar flera roller, inklusive deoxidation, lagring av glykogen och utsöndring och syntes avproteiner 1. Olika patogener, droger och äreditet kan orsaka patologiska förändringar i levern och påverka dess funktioner2,3. Hepatocyter, som leverns huvudsakliga funktionella enhet, spelar en viktig roll i artificiella leverstödsystem och läkemedelstoxicitet eliminering. Resursen för primära mänskliga hepatocyter är dock begränsad i cellbaserad terapi, liksom i leversjukdomsforskning. Därför är utveckling av nya källor till funktionella mänskliga hepatocyter en viktig forskningsriktning inom regenerativ medicin. Sedan 1998 när hESCs har etablerats4, hESCs har allmänt övervägts av forskare på grund av deras överlägsna differentiering potential (de kan differentiera i olika vävnader i en lämplig miljö) och hög grad av självförnyelse, och därmed ge idealiska källceller för bioartificial lever, hepatocyt transplantation och även levervävnadsteknik5.

För närvarande kan leverdifferenseffektiviteten ökas kraftigt genom att berika endodermen6. I härstamning differentiering av stamceller till endoderm, nivåer av den transformerande tillväxtfaktorn β (TGF-β) signalering och WNT signalering vägar är de viktigaste faktorerna i noden i endoderm bildandet steg. Aktivering av en hög nivå av TGF-β och WNT signalering kan främja utvecklingen av endoderm7,8. Activin A är en cytokin som tillhör TGF-β superfamilj. Därför används Activin A ofta vid induktion av mänskliga inducerade pluripotenta stamceller (hiPSCs) och hESCs9,10. GSK3 är ett serin-treoninproteinkinas. Forskare har funnit att CHIR99021, en specifik hämmare av GSK3β, kan stimulera typiska WNT-signaler och kan främja stamcellsdifferimering under vissa förhållanden, vilket tyder på att CHIR99021 har potential att inducera stamcells differentiering till endoderm 11,12,13.

Här rapporterar vi en effektiv och reproducerbar metod för att effektivt inducera differentiering av hESCs till funktionella HLCs. Den sekventiella tillsatsen av Activin A och CHIR99021 producerade cirka 89,7±0,8% SOX17 (DE-markör)-positiva celler. Efter att ha mognat in vitrouttryckte dessa celler leverspecifika markörer och utövade hepatocytliknande morfologi (baserat på hematoxylin-eosinfärgning (H & E)) och funktioner, såsom upptag av indocyaningrön (ICG), glykogenlagring och CYP3-aktivitet. Resultaten visar att hESCs framgångsrikt kan differentieras till mogna funktionella HLCs med denna metod och kan ge en grund för leversjukdomsrelaterad forskning och in vitro-läkemedelsscreening.

Protocol

1. Underhåll av stamceller OBS: Cellunderhållsprotokollet som beskrivs nedan gäller för hES03-cellinjen som upprätthålls i ett vidhäftande monoskikt. För alla följande protokoll i detta manuskript bör celler hanteras under ett biologiskt säkerhetsskåp. Förbered 1x mTesR stamcellskulturmedium genom att späda ut 5x extra medium till mTesR basmedium. Förbered 30x hESC-kvalificerat Matrigel-medium genom att späda ut 5 ml hESC-kvalificerad Matrigel med 5 ml DMEM/…

Representative Results

Det schematiska diagrammet över HLC-induktion från hESCs och representativa ljusfältsbilder av varje differentieringssteg visas i figur 1. I steg I tillsattes Activin A och CHIR99021 i 3 dagar för att inducera stamceller att bilda endodermceller. I steg II differentierade endodermcellerna till lever stamceller efter att ha behandlats med differentiering medium i 5 dagar. I steg III hade tidiga hepatocyter mognat och differentierats till CHLC efter 10 dagar i HGF och OSM<strong class="xfi…

Discussion

Här presenterar vi en stegvis metod som inducerar HLCs från hESCs i tre steg. I det första steget användes Activin A och CHIR99021 för att differentiera hESC till DE. I den andra etappen användes KO-DMEM och DMSO för att differentiera DE till lever stamceller. I den tredje etappen användes HZM plus HGF, OSM och hydrocortisone 21-hemisuccinate natrium salt för att fortsätta att differentiera lever stamceller i HLCs.

Följande kritiska steg måste beaktas när protokollet används. Cel…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete stöddes av National Natural Science Foundation of China (nr 81870432 och 81570567 till X.L.Z.), (nr 81571994 till P.N.S.); Natural Science Foundation i Guangdong-provinsen, Kina (nr 2020A1515010054 till P.N.S.), Li Ka Shing Shantou University Foundation (nr. L1111 2008 till P.N.S.). Vi vill tacka professor Stanley Lin från Shantou University Medical College för användbar rådgivning.

Materials

2-Mercaptoethanol Sigma M7522 For hepatic progenitor differentiation
488 labeled goat against mouse IgG ZSGB-BIO ZF-0512 For IF,second antibody
488 labeled goat against Rabbit IgG ZSGB-BIO ZF-0516 For IF,second antibody
Accutase Stem Cell Technologies 7920 For cell passage
Activin A peproTech 120-14E For definitive endoderm formation
Anti – Albumin (ALB) Sigma-Aldrich A6684 For IF and WB, primary antibody
Anti – Human Oct4 Abcam Ab19587 For IF, primary antibody
Anti – α-Fetoprotein (AFP) Sigma-Aldrich A8452 For IF and WB, primary antibody
Anti -SOX17 Abcam ab224637 For IF, primary antibody
Anti-Hepatocyte Nuclear Factor 4 alpha (HNF4α) Sigma-Aldrich SAB1412164 For IF, primary antibody
B-27 Supplement Gibco 17504-044 For definitive endoderm formation
BSA Beyotime ST023-200g For cell blocking
CHIR99021 Sigma-Aldrich SML1046 For definitive endoderm formation
DAPI Beyotime C1006 For nuclear staining
DEPC-water Beyotime R0021 For RNA dissolution
DM3189 MCE HY-12071 For definitive endoderm formation
DMEM/F12 Gibco 11320-033 For cell culture
DMSO Sigma-Aldrich D5879 For hepatic progenitor differentiation
DPBS Gibco 14190-144 For cell culture
GlutaMAX Gibco 35050-061 For hepatic progenitor differentiation
H&E staining kit Beyotime C0105S For H&E staining
Hepatocyte growth factor (HGF) peproTech 100-39 For hepatocyte differentiation
HepatoZYME-SFM (HZM) Gibco 17705-021 For hepatocyte differentiation
Hydrocortisone-21-hemisuccinate Sigma-Aldrich H4881 For hepatocyte differentiation
Indocyanine Sangon Biotech A606326 For Indocyanine staining
Knock Out DMEM Gibco 10829-018 For hepatic progenitor differentiation
Knock Out SR Multi-Species Gibco A31815-02 For hepatic progenitor differentiation
Matrigel hESC-qualified Corning 354277 For cell culture
MEM NeAA Gibco 11140-050 For hepatic progenitor differentiation
mTesR 5X Supplement Stem Cell Technologies 85852 For cell culture
mTesR Basal Medium Stem Cell Technologies 85851 For cell culture
Oncostatin (OSM) peproTech 300-10 For hepatocyte differentiation
P450 – CYP3A4 (Luciferin – PFBE) Promega V8901 For CYP450 activity
PAS staining kit Solarbio G1281 For PAS staining
Pen/Strep Gibco 15140-122 For cell differentiation
Peroxidase-Conjugated Goat anti-Mouse IgG ZSGB-BIO ZB-2305 For WB,second antibody
Primary Antibody Dilution Buffer for Western Blot Beyotime P0256 For primary antibody dilution
ReverTraAce qPCR RT Kit TOYOBO FSQ-101 For cDNA Synthesis
RNAiso Plus TaKaRa 9109 For RNA Isolation
RPMI 1640 Gibco 11875093 For definitive endoderm formation
Skim milk Sangon Biotech A600669 For second antibody preparation
SYBR Green Master Mix Thermo Fisher Scientific A25742 For RT-PCR Analysis
Torin2 MCE HY-13002 For definitive endoderm formation
Tween Sigma-Aldrich WXBB7485V For washing buffer preparation

References

  1. Hou, Y., Hu, S., Li, X., He, W., Wu, G. Amino Acid Metabolism in the Liver: Nutritional and Physiological Significance. Advances in Experimental Medicine and Biology. 1265, 21-37 (2020).
  2. Huang, C., Li, Q., Xu, W., Chen, L. Molecular and cellular mechanisms of liver dysfunction in COVID-19. Discovery Medicine. 30, 107-112 (2020).
  3. Todorovic Vukotic, N., Dordevic, J., Pejic, S., Dordevic, N., Pajovic, S. B. Antidepressants- and antipsychotics-induced hepatotoxicity. Archives of Toxicology. , (2021).
  4. Thomson, J. A., et al. Embryonic stem cell lines derived from human blastocysts. Science. 282, 1145-1147 (1998).
  5. Li, Z., et al. Generation of qualified clinical-grade functional hepatocytes from human embryonic stem cells in chemically defined conditions. Cell Death & Disease. 10, 763 (2019).
  6. Rassouli, H., et al. Gene Expression Patterns of Royan Human Embryonic Stem Cells Correlate with Their Propensity and Culture Systems. Cell Journal. 21, 290-299 (2019).
  7. Loh, K. M., et al. Efficient endoderm induction from human pluripotent stem cells by logically directing signals controlling lineage bifurcations. Cell Stem Cell. 14, 237-252 (2014).
  8. Mukherjee, S., et al. Sox17 and beta-catenin co-occupy Wnt-responsive enhancers to govern the endoderm gene regulatory network. Elife. 9, (2020).
  9. Ang, L. T., et al. A Roadmap for Human Liver Differentiation from Pluripotent Stem Cells. Cell Reports. 22, 2190-2205 (2018).
  10. Carpentier, A., et al. Engrafted human stem cell-derived hepatocytes establish an infectious HCV murine model. Journal of Clinical Investigation. 124, 4953-4964 (2014).
  11. Gomez, G. A., et al. Human neural crest induction by temporal modulation of WNT activation. Developmental Biology. 449, 99-106 (2019).
  12. Lee, J., Choi, S. H., Lee, D. R., Kim, D. S., Kim, D. W. Generation of Isthmic Organizer-Like Cells from Human Embryonic Stem Cells. Molecules and Cells. 41, 110-118 (2018).
  13. Matsuno, K., et al. Redefining definitive endoderm subtypes by robust induction of human induced pluripotent stem cells. Differentiation. 92, 281-290 (2016).
  14. Mathapati, S., et al. Small-Molecule-Directed Hepatocyte-Like Cell Differentiation of Human Pluripotent Stem Cells. Current Protocols in Stem Cell Biology. 38, 1-18 (2016).
  15. Hay, D. C., et al. Highly efficient differentiation of hESCs to functional hepatic endoderm requires ActivinA and Wnt3a signaling. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 105, 12301-12306 (2008).
  16. Siller, R., Greenhough, S., Naumovska, E., Sullivan, G. J. Small-molecule-driven hepatocyte differentiation of human pluripotent stem cells. Stem Cell Reports. 4, 939-952 (2015).
  17. Yu, J. S., et al. PI3K/mTORC2 regulates TGF-beta/Activin signalling by modulating Smad2/3 activity via linker phosphorylation. Nature Communications. 6, 7212 (2015).
  18. Borowiak, M., et al. Small molecules efficiently direct endodermal differentiation of mouse and human embryonic stem cells. Cell Stem Cell. 4, 348-358 (2009).
  19. Tahamtani, Y., et al. Treatment of human embryonic stem cells with different combinations of priming and inducing factors toward definitive endoderm. Stem Cells and Development. 22, 1419-1432 (2013).
  20. Song, Z., et al. Efficient generation of hepatocyte-like cells from human induced pluripotent stem cells. Cell Research. 19, 1233-1242 (2009).
  21. Sullivan, G. J., et al. Generation of functional human hepatic endoderm from human induced pluripotent stem cells. Hepatology. 51, 329-335 (2010).
  22. Xia, Y., et al. Human stem cell-derived hepatocytes as a model for hepatitis B virus infection, spreading and virus-host interactions. Journal of Hepatology. 66, 494-503 (2017).
  23. Li, S., et al. Derivation and applications of human hepatocyte-like cells. World Journal of Stem Cells. 11, 535-547 (2019).
  24. Ogawa, S., et al. Three-dimensional culture and cAMP signaling promote the maturation of human pluripotent stem cell-derived hepatocytes. Development. 140, 3285-3296 (2013).
  25. Kim, D. E., et al. Prediction of drug-induced immune-mediated hepatotoxicity using hepatocyte-like cells derived from human embryonic stem cells. Toxicology. 387, 1-9 (2017).
check_url/62654?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Zhou, Q., Xie, X., Zhong, Z., Sun, P., Zhou, X. An Efficient Method for Directed Hepatocyte-Like Cell Induction from Human Embryonic Stem Cells. J. Vis. Exp. (171), e62654, doi:10.3791/62654 (2021).

View Video