Summary

הדפסה ביולוגית תלת-ממדית של אסטרוציטים קליפת המוח מורין לרקמה דמוית עצב הנדסית

Published: July 16, 2021
doi:

Summary

כאן אנו מדווחים על שיטה של אסטרוציטים קליפת המוח הדפסה ביולוגית 3D עבור biofabricating רקמות עצביות כדי ללמוד את הפונקציונליות של אסטרוציטים במערכת העצבים המרכזית ואת המנגנונים מעורבים תאי גליה במחלות נוירולוגיות וטיפולים.

Abstract

אסטרוציטים הם תאי גליה עם תפקיד חיוני במערכת העצבים המרכזית (מערכת העצבים המרכזית), כולל תמיכה עצבית ופונקציונליות. תאים אלה מגיבים גם לפציעות עצביות ופועלים כדי להגן על הרקמה מפני אירועים ניווניים. אין ויטרו מחקרים על תפקוד אסטרוציטים חשובים כדי לבהיר את המנגנונים המעורבים באירועים כאלה ולתרום לפיתוח טיפולים לטיפול בהפרעות נוירולוגיות. פרוטוקול זה מתאר שיטה לביו-פטרייתית מבנה רקמות דמוי עצב עשיר באסטרוציטים על ידי ביו-סינק עתיר אסטרוציטים תלת-ממדי. נעשה שימוש בביו-הדפסה תלת-ממדית מבוססת שחול בעבודה זו, ואסטרוציטים חולצו מגורי המוח של עכברי C57Bl/6. הביו-וינק הוכן על ידי ערבוב אסטרוציטים קליפת המוח ממעבר 3 לתמיסה ביו-חומרית המורכבת מג’לטין, ג’לטין-מתיאקרילויל (GelMA) ופיברינוגן, בתוספת למינין, שהציג תנאי הדפסה ביולוגית אופטימליים. תנאי הביוהדפסה בתלת-ממד מזערו את הלחץ בתאים, ותרמו לבישאיות הגבוהה של האסטרוציטים במהלך התהליך, שבו 74.08% ± 1.33% מהתאים היו ברי קיימא מיד לאחר הדפסה ביולוגית. לאחר שבוע אחד של דגירה, הכדאיות של אסטרוציטים גדלה באופן משמעותי ל 83.54% ± 3.00%, המציין כי המבנה 3D מייצג microenvironment מתאים לצמיחת התא. ההרכב הביו-חומריםי אפשר חיבור תאים והתנהגות אסטרוציטית מגורה, עם תאים המבטאים את החלבון חומצי פרברילית גליה סמן ספציפי (GFAP) ובעל מורפולוגיה אסטרוציטית טיפוסית. פרוטוקול רבייה זה מספק שיטה בעלת ערך לביו-פבריקט של רקמה דמוית עצב תלת-ממדית עשירה באסטרוציטים הדומים למיקרו-סביבה הטבעית של התאים, שימושית לחוקרים שמטרתם להבין את תפקודם של אסטרוציטים ואת יחסם למנגנונים המעורבים במחלות נוירולוגיות.

Introduction

אסטרוציטים הם סוג התא הנפוץ ביותר במערכת העצבים המרכזית (מערכת העצבים המרכזית) וממלאים תפקיד מפתח בהומאוסטזיס במוח. בנוסף לתמיכה עצבית מתמשכת, אסטרוציטים אחראים על ויסות ספיגת נוירוטרנסמיטורים, שמירה על שלמות מחסום הדם – מוח, ווויסות סינפטוגנזה עצבית1,2. אסטרוציטים יש גם תפקיד חיוני דלקת מערכת העצבים, תגובה לפציעות במוח בתהליך שמוביל תגובתיות אסטרוקטריקטית או אסטרוגליוזיס תגובתי3,4, יצירת צלקת גליה המונעת תערוכת רקמות בריאה סוכנים ניווניים5. אירוע זה גורם לשינויים בביטוי הגנים, המורפולוגיה והפונקציה6,7של אסטרוציטים . לכן, מחקרים המערבים את הפונקציונליות של אסטרוציטים מועילים לפיתוח טיפולים לטיפול בהפרעות נוירולוגיות.

מודלים במבחנה חיוניים לחקר מנגנונים הקשורים לפציעות נוירולוגיות, ולמרות שבידוד מוצלח ותרבות דו-ממדית (2D) של אסטרוציטים קליפת המוח הוקמו8, מודל זה אינו מצליח לספק סביבה מציאותית המחקה התנהגות תאים מקורית ולשכפל את המורכבות של המוח9 . במצב 2D, התמיכה המכנית והביוכימית הירודה, אינטראקציות נמוכות בין תאים לתאים ולמטריצת תאים, ושיטוח תאים המוביל להיעדר קוטביות בזאלית-אפית, משפיעים על דינמיקת איתות התא ועל התוצאות הניסיוניות המובילות לשינוי מורפולוגיה של תאים וביטוי גנים, אשר פוגעים בתגובה לטיפולים10. לכן, חשוב לפתח חלופות המספקות סביבה עצבית מציאותית יותר, במטרה לתרגם את התוצאות למרפאה.

תרבית תאים תלת מימדית (תלת-ממדית) מייצגת מודל מתקדם יותר המשיב את תכונות הנאמנות המוגברות של איברים ורקמות, כולל CNS11. לגבי תרבות גליה, מודלים תלת-ממדיים תורמים לשמירה על מורפולוגיה אסטרוציטים, קוטביות בזאלית-אפית של תאים, ואיתות תאים12,13. טכנולוגיית הביו-הדפסה בתלת-ממד התפתחה ככלי רב עוצמה לביו-פבריות של רקמות חיות תלת-ממדיות באופן מבוקר באמצעות תאים וביו-חומרים כדי לשחזר את המבנה והמאפיינים של רקמות מקומיות. השימוש בטכנולוגיה זו הוביל לשיפור משמעותי בחיזוי התוצאות ותרם לרפואה רגנרטיבית המיושמת ב- CNS14,15,16.

הפרוטוקול המתואר כאן מפרט את הבידוד והתרבות של אסטרוציטים קליפת המוח. הפרוטוקול מפרט גם שיטה לשחזור אסטרוציטים ביו-הדפסה מוטבע ג’לטין / ג’לטין מתאקרילויל (GelMA)/פיברינוגן, בתוספת למינין. בעבודה זו, ביו-הדפסה מבוססת שחול שימשה להדפסת ההרכב הביו-חומרי המכיל אסטרוציטים קליפת המוח בצפיפות של 1 x 106 תאים/מ”ל. לחץ הגיוטה של ביו-הדפסה צומצם על ידי שליטה במהירות ההדפסה, ואסטרוציטים הראו כדאיות גבוהה לאחר התהליך. מבנים מודפסים ביו-מודפסים היו מתורבתים במשך שבוע אחד, ואסטרוציטים הצליחו להתפשט, לצרף ולשרוד בתוך ההידרוג’ל, לשמור על המורפולוגיה האסטרוציטית ולהביע סמן ספציפי של חלבון חומצי גליה (GFAP)4.

הליך זה תואם עם ביו-הדפסה מונחית בוכנה וניתן להשתמש בו כדי לבצע אסטרוציטים בהדפסה ביולוגית שמקורם במקורות שונים. המודל המודפס בתלת-ממד המוצע כאן מתאים למגוון רחב של יישומי הנדסה עצבית, כגון מחקרים של המנגנונים המעורבים בפונקציונליות אסטרוציטים ברקמות בריאות והבנת התקדמות הפתולוגיות הנוירולוגיות ופיתוח הטיפול.

Protocol

כל ההליכים הנוגעים לבעלי חיים פעלו על פי הנחיות בינלאומיות לשימוש בבעלי חיים במחקר (http://www.iclas.org) ואושרו על ידי הוועדה לאתיקה בחקר הממשלה הפדרלית של סאו פאולו (CEUA 2019/ 9292090519). 1. ניתוח מוח עכברים העבר 10 מ”ל של תמיסת מלח חוצץ Hanks קר (HBSS) לצלחת תרבות 100 מ”מ ו 1 מ”ל למיקרו-טיוב של 1.5 ?…

Representative Results

עבודה זו נועדה לפתח רקמה דמוית עצב באמצעות טכנולוגיית הדפסה ביולוגית תלת-ממדית להפקדת ביונק ג’לטין ראשי עמוס אסטרוציטים/גלמה/פיברינוגן. אסטרוציטים חולצו ובודדו מקליפת המוח של גורי עכברים (איור 1), נוספו להרכב ביו-חומרי, המאפשר ביו-פיכחון של מבנה תלת-ממדי חי. ?…

Discussion

טכנולוגיית הביו-הדפסה התת-ממדית התפתחה כחלופה ביו-פיברית המאפשרת הנדסת מבנים מעודנים הדומים מבחינה מבנית ופיזיולוגית לרקמות מקומיות22, כולל המוח23. biofabrication של רקמות דמויי עצבים מאפשר הנדסה במבחנה מיקרו-וירוסמנט מקומי מודלים, להיות כלי חשוב להבנת המנגנונים ה…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

עבודה זו נתמכה על ידי קרן המחקר של סאו פאולו (FAPESP), מספרי מענקים 2018/23039-3 ו-2018/12605-8; המועצה הלאומית לפיתוח מדעי וטכנולוגי (CNPq), מספרי מענקים 465656/2014-5 ו-309679/2018-4; ותיאום לשיפור כוח האדם להשכלה גבוהה (CAPES), קוד פיננסי 001.

Materials

3D Bioprinter 3D Biotechnology Solutions Extrusion-based bioprinter
Blunt-tip forceps Integra Miltex 6–30 Forceps for brain dissection previously sterilized
Bovine serum albumin Sigma-Aldrich 9048-46-8 Protease free, fatty acid free, essentially globulin free
CaCl2 Sigma-Aldrich 10043-52-4
Cell culture flask Fisher Scientific 156340 Culture flask T25
Cell strainer Corning Incorporated 352340 Cell strainer 40 µm
Confocal microscope Leica Confocal TCS SP8 microscopy coupled with an Olympus FluoView 300 confocal system
Conical tubes Thermo Scientific 339651, 339652 Sterile tubes of 15 mL and 50 mL
DAPI Abcam ab224589 DAPI staining solution
DMEM/F12 Gibco; Life Technologies Corporation 12500062 DMEM/F-12 50/50, 1X (Dulbecco's Mod. Of Eagle's Medium/Ham's F12 50/50 Mix) with L-glutamine
Dyalisis tubing Sigma-Aldrich D9527 Molecular weight cut-off = 14 kDa
Ethanol Fisher Scientific 64-15-5 Reagent grade
Fetal Bovine Serum Gibco; Life Technologies Corporation 12657011 Research Grade
Fibrinogen Sigma-Aldrich 9001-32-5 Fibrinogen cristalline powder from bovine plasma
Gelatin Sigma-Aldrich 9000-70-8 Gelatin powder from porcine skin
Glycine Sigma-Aldrich 56-40-6 Glycine powder
Hanks Buffered Salt Solution (HBSS) Gibco; Life Technologies Corporation 14175095 No calcium, no magnesium, no phenol red
L-Glutamine Sigma-Aldrich 56-85-9 L-Glutamine crystalline powder
Laminin Sigma-Aldrich 114956-81-9 Laminin 1-2 mg/mL L in 50 mM Tris-HCl
Live dead kit cell imaging kit Thermo Scientific R37601 Green fluorescence in live cells (ex/em 488 nm/515 nm). Red fluorescence in dead cells (ex/em 570 nm/602 nm)
Methacrylic anhydride Sigma-Aldrich 760-93-0 For GelMA preparation
Microtubes Corning Incorporated MCT-150-C Microtubes of 1,5 mL
NaCl Sigma-Aldrich 7647-14-5
Needle 22G Fisher Scientific NC1362045 Sterile blunt needle
Operating scissor Integra Miltex 05–02 Sharp scissor for brain dissection previously sterilized
Paraformaldehyde Sigma-Aldrich 30525-89-4 Paraformaldehyde powder
Penicillin/Streptomycin Gibco; Life Technologies Corporation 15070063 Pen Strep (5,000 Units/ mL Penicillin; 5,000 ug/mL Streptomycin)
Petri dish Corning Incorporated 430591, 430588 Sterile petri dishes of 35 and 100 mm
Phalloidin Abcam ab176753 iFluor 488 reagent
Photoinitiator Sigma-Aldrich 106797-53-9 2-Hydroxy-4′-(2-hydroxyethoxy)-2-methylpropiophenone
Phosphate buffer saline (PBS) Gibco; Life Technologies Corporation 10010023 PBS 1 x, culture grade, no calcium, no magnesium
Poly-L-lysine Sigma-Aldrich 25988-63-0 Poly-L-lysine hydrobromide mol wt 30,000-70,000
Primary antobody Abcam ab4674 Chicken polyclonal to GFAP
Secondary antibody Abcam ab150176 Alexa fluor 594 anti-chicken
Spatula Miltex V973-70 Number 24 cement spatula previously sterilized
Stereomicroscope Fisherbrand 3000038 Microscope for brain dissection
Syringe 5 mL BD 1222C84 Sterile syringe
Syringe filter 2 µm Fisher Scientific 09-740-105 Polypropylene filter for sterilization
Thrombin Sigma-Aldrich 9002–04-4 Thrombin cristalline powder from bovine plasma
Triton X-100 Sigma-Aldrich 9002-93-1 Laboratory grade
Trypsin-EDTA Gibco; Life Technologies Corporation 15400054 Trypsin no phenol red 1 x diluted in PBS
Versene solution Gibco; Life Technologies Corporation 15040066 Versene Solution (0.48 mM) formulated as 0.2 g EDTA(Na4) per liter of PBS
Well plate Thermo Scientific 144530 Sterile 24-well plate

References

  1. Di, L., Mannelli, C., Cuzzocrea, S. Astrocytes: Role and functions in brain pathologies. Frontiers in Pharmacology. 10, 1114 (2019).
  2. Kimelberg, H. K., Nedergaard, M. Functions of astrocytes and their potential as therapeutic targets. Neurotherapeutics. 7 (4), 338-353 (2010).
  3. Giovannoni, F., Quintana, F. J. The role of astrocytes in CNS inflammation. Trends in Immunology. 41 (9), 805-819 (2020).
  4. Escartin, C., et al. Reactive astrocyte nomenclature, definitions, and future directions. Nature Neuroscience. 24 (3), 312-325 (2021).
  5. Carson, M. J., Thrash, J. C., Walter, B. The cellular response in neuroinflammation: The role of leukocytes, microglia and astrocytes in neuronal death and survival. Clinical Neuroscience Research. 6 (5), 237-245 (2006).
  6. Liddelow, S. A., Barres, B. A. Reactive astrocytes: Production, function, and therapeutic potential. Immunity. 46 (6), 957-967 (2017).
  7. Clarke, L. E., et al. Normal aging induces A1-like astrocyte reactivity. Proceedings of the National Academy of Sciences of the Unied States of America. 115 (8), 1896-1905 (2018).
  8. Schildge, S., Bohrer, C., Beck, K., Schachtrup, C. Isolation and culture of mouse cortical astrocytes isolation and culture of mouse cortical astrocytes. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (71), e50079 (2013).
  9. Duval, K., et al. Modeling physiological events in 2D vs. 3D cell culture. Physiology. 32 (4), 266-277 (2017).
  10. Knight, E., Przyborski, S. Advances in 3D cell culture technologies enabling tissue-like structures to be created in vitro. Journal of Anatomy. 227 (6), 746-756 (2015).
  11. Zhuang, P., Sun, A. X., An, J., Chua, C. K., Chew, S. Y. 3D neural tissue models: From spheroids to bioprinting. Biomaterials. 154, 113-133 (2018).
  12. Balasubramanian, S., Packard, J. A., Leach, J. B., Powell, E. M. Three-dimensional environment sustains morphological heterogeneity and promotes phenotypic progression. Tissue Engineering. Part A. 22 (11-12), 885-898 (2016).
  13. Watson, P. M. D., Kavanagh, E., Allenby, G., Vassey, M. Bioengineered 3D glial cell culture systems and applications for neurodegeneration and neuroinflammation. SLAS Discovery. 22 (5), 583-601 (2017).
  14. Li, Y. E., Jodat, Y. A., Samanipour, R., Zorzi, G., Zhu, K. Toward a neurospheroid niche model: optimizing embedded 3D bioprinting for fabrication of neurospheroid brain-like co-culture constructs. Biofabrication. , (2020).
  15. Zhou, X., et al. Three-dimensional-bioprinted dopamine-based matrix for promoting neural regeneration. ACS Applied Materials & Interfaces. 10 (10), 8993-9001 (2018).
  16. de la Vega, L., et al. 3D bioprinting human induced pluripotent stem cell-derived neural tissues using a novel lab-on-a-printer technology. Applied Sciences. 8 (12), 2414 (2018).
  17. Scheraga, H. A. The thrombin-fibrinogen interaction. Biophysical Chemistry. 112 (2-3), 117-130 (2004).
  18. Ariens, R. A. S., Lai, T., Weisel, J. W., Greenberg, C. S., Grant, P. J. Role of factor XIII in fibrin clot formation and effects of genetic polymorphisms. Blood. 100 (3), 743-754 (2002).
  19. Yue, K., et al. Synthesis, properties, and biomedical applications of Gelatin Methacryloyl (GelMA) hydrogels. Biomaterials. 73, 254-271 (2015).
  20. de Melo, B. A. G., et al. Strategies to use fibrinogen as bioink for 3D bioprinting fibrin-based soft and hard tissues. Acta Biomaterialia. 117, 60-76 (2020).
  21. Wang, X., et al. Gelatin-based hydrogels for organ 3D bioprinting. Polymers (Basel). 9 (9), 401 (2017).
  22. Murphy, S. V., Atala, A. 3D bioprinting of tissues and organs. Naure. Biotechnology. 32 (8), 773-785 (2014).
  23. de la Vega, L., Lee, C., Sharma, R., Amereh, M., Willerth, S. M. 3D bioprinting models of neural tissues: The current state of the field and future directions. Brain Research Bulletin. 150, 240-249 (2019).
  24. Clavreul, S., et al. Cortical astrocytes develop in a plastic manner at both clonal and cellular levels. Nature Communications. 10 (1), 4884 (2019).
  25. Hanu, R., et al. Monocarboxylic acid transporters, MCT1 and MCT2, in cortical astrocytes in vitro and in vivo. American Journal of Physiology. Cell Physiology. 278 (5), 921-930 (2000).
  26. Liu, R., Wang, Z. h., Gou, L., Xu, H. A cortical astrocyte subpopulation inhibits axon growth in vitro and in vivo. Molecular Medicine Reports. 12 (2), 2598-2606 (2015).
  27. Winter, C. C., Cullen, D. K., Donnell, J. C. O., Song, Y. J., Hernandez, N. S. Three-dimensional tissue engineered aligned astrocyte networks to recapitulate developmental mechanisms and facilitate nervous system regeneration. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (131), e55848 (2018).
  28. East, E., Golding, J. P., Phillips, J. B. A versatile 3D culture model facilitates monitoring of astrocytes undergoing reactive gliosis. Journal of Tissue Engineering and Regenerative Medicine. 3 (8), 634-646 (2009).
  29. Hawkinsn, B. T., Grego, S., Sellgren, K. L. Three-dimensional culture conditions differentially affect astrocyte modulation of brain endothelial barrier function in response to transforming growth factor B1. Brain Research. 1608, 167-176 (2015).
  30. Abelseth, E., et al. 3D printing of neural tissues derived from human induced pluripotent stem cells using a fibrin-based bioink. ACS Biomaterials Science and Engineering. 5 (1), 234-243 (2019).
  31. Filippo, T. R. M., et al. CXCL12 N-terminal end is sufficient to induce chemotaxis and proliferation of neural stem/progenitor cells. Stem Cell Research. 11 (2), 913-925 (2013).
  32. Galindo, L. T., et al. Chondroitin sulfate impairs neural stem cell migration through ROCK activation. Molecular Neurobiology. 55 (4), 3185-3195 (2018).
  33. Groll, J., et al. A definition of bioinks and their distinction from biomaterial inks. Biofabrication. 11 (1), 03001 (2018).
  34. Kyle, S., Jessop, Z. M., Al-sabah, A., Whitaker, I. S. Printability of candidate biomaterials for extrusion-based 3D printing: state-of-the-art. Advanced Healthcare Materials. 6 (16), (2017).
  35. Blaeser, A., et al. Controlling shear stress in 3D bioprinting is a key factor to balance printing resolution and stem cell integrity. Advanced Healthcare Materials. 5 (3), 326-333 (2016).
  36. Miyawaki, O., Omote, C., Matsuhira, K. Thermodynamic analysis of sol-gel transition of gelatin in terms of water activity in various solutions. Biopolymers. 103 (12), 685-691 (2015).
  37. Shirahama, H., Lee, B. H., Tan, L. P., Cho, N. Precise tuning of facile one-pot Gelatin Methacryloyl (GelMA) synthesis. Science Reports. 6, 31036 (2016).
  38. Antonovaite, N., Beekmans, S. V., Hol, E. M., Wadman, W. J., Iannuzzi, D. Regional variations in stiffness in live mouse brain tissue determined by depth-controlled indentation mapping. Science Reports. 8 (1), 12517 (2018).
  39. Iwashita, M., et al. Comparative analysis of brain stiffness among amniotes using glyoxal fixation and atomic force microscopy. Frontiers in Cell and Developmental Biology. 8, 574619 (2020).
  40. Guimarães, C. F., Gasperini, L., Marques, A. P., Reis, R. L. The stiffness of living tissues and its implications for tissue engineering. Nature Reviews. 5, 351-370 (2010).
  41. Ye, W., et al. 3D printing of gelatin methacrylate-based nerve guidance conduits with multiple channels. Materials and Design. 192, 108757 (2020).
  42. Wu, Y., et al. The influence of the stiffness of GelMA substrate on the outgrowth of PC12 cells. Bioscience Reports. 39 (1), 1-9 (2019).
  43. Edgar, J. M., Robinson, M., Willerth, S. M. Fibrin hydrogels induce mixed dorsal/ventral spinal neuron identities during differentiation of human induced pluripotent stem cells. Acta Biomaterialia. 51, 237-245 (2017).
  44. Arulmoli, J., et al. Combination scaffolds of salmon fibrin, hyaluronic acid, and laminin for human neural stem cell and vascular tissue engineering. Acta Biomaterialia. 43, 122-138 (2016).
  45. Brenner, M. Role of GFAP in CNS Injuries. Neuroscience. Letters. 565, 7-13 (2014).
check_url/62691?article_type=t

Play Video

Cite This Article
de Melo, B. A. G., Cruz, E. M., Ribeiro, T. N., Mundim, M. V., Porcionatto, M. A. 3D Bioprinting of Murine Cortical Astrocytes for Engineering Neural-Like Tissue. J. Vis. Exp. (173), e62691, doi:10.3791/62691 (2021).

View Video