Summary

Måling mitokondrie substrat flux i rekombinant perfringolysin O-Permeabilized celler

Published: August 13, 2021
doi:

Summary

I dette arbejde beskriver vi en modificeret protokol til test af mitokondriesubstratstrømpe ved hjælp af rekombinant perfringolysin O i kombination med mikropladebaseret respirometri. Med denne protokol viser vi, hvordan metformin påvirker mitokondrie respiration af to forskellige tumorcellelinjer.

Abstract

Mitokondrie substrat flux er et kendetegn ved hver celletype, og ændringer i dens komponenter såsom transportører, kanaler eller enzymer er involveret i patogenesen af flere sygdomme. Mitokondrie substrat flux kan studeres ved hjælp af intakte celler, permeabilized celler, eller isolerede mitokondrier. Undersøgelse af intakte celler støder på flere problemer på grund af samtidig oxidation af forskellige substrater. Desuden indeholder flere celletyper interne lagre af forskellige substrater, der komplicerer resultatfortolkning. Metoder såsom mitokondrie isolation eller ved hjælp af permeabilizing agenter er ikke let reproducerbare. Isolering af ren mitokondrier med intakte membraner i tilstrækkelige mængder fra små prøver er problematisk. Brug af ikke-selektive permeabilizers forårsager forskellige grader af uundgåelige mitokondrie membran skader. Rekombinant perfringolysin O (rPFO) blev tilbudt som en mere passende permeabilizer, takket være sin evne til selektivt permeabilize plasmamembran uden at påvirke mitokondrie integritet. Når det bruges i kombination med mikroplade respirometri, det gør det muligt at teste flux af flere mitokondrie substrater med nok replikerer inden for et eksperiment, mens du bruger et minimalt antal celler. I dette arbejde beskriver protokollen en metode til at sammenligne mitokondriesubstrat flux af to forskellige cellulære fænotyper eller genotyper og kan tilpasses til at teste forskellige mitokondrie substrater eller hæmmere.

Introduction

Mikropladebaseret respirometri har revolutioneret mitokondrieforskning ved at muliggøre studiet af cellulært åndedræt af en lille prøvestørrelse1. Cellulær respiration betragtes generelt som en indikator for mitokondriefunktion eller ‘dysfunktion’, på trods af at mitokondriespektret af funktioner strækker sig ud over energiproduktion2. Under aerobe forhold udvinder mitokondrier den energi, der lagres i forskellige substrater, ved at nedbryde og omdanne disse substrater til metaboliske mellemprodukter, der kan give næring tilcitronsyrecyklussen 3 (Figur 1). Den kontinuerlige flux af substrater er afgørende for strømmen af citronsyre cyklus til at generere høj energi ‘elektron donorer’, som leverer elektroner til elektron transport kæde, der genererer en proton gradient på tværs af den indre mitokondriemembran, gør det muligt ATP-synthase at fosforylatere ADP til ATP4. Derfor skal et eksperimentelt design til analyse af mitokondrie respiration omfatte prøven naturen (intakte celler, permeabilized celler, eller isolerede mitokondrier) og mitokondrie substrater.

Celler holder et lager af indfødte substrater5, og mitokondrier oxiderer flere typer substrater samtidigt6, hvilket komplicerer fortolkningen af resultater fra eksperimenter udført på intakte celler. En fælles tilgang til at undersøge mitokondrie evne til at oxidere et udvalgt substrat er at isolere mitokondrier eller permeabilize de undersøgte celler5. Selvom isolerede mitokondrier er ideelle til kvantitative undersøgelser, er isolationsprocessen besværlig. Det står over for tekniske vanskeligheder såsom behovet for stor prøvestørrelse, renhed af udbyttet og reproducerbarhed af teknikken5. Permeabiliserede celler tilbyder en løsning til ulemperne ved mitokondrieisolering; rutinemæssige permeabiliseringsmidler af vaskemiddelkarakter er dog ikke specifikke og kan beskadige mitokondriemembraner5.

Rekombinant perfringolysin O (rPFO) blev tilbudt som et selektivt plasmamembranpermeabiliserende middel7, og det blev anvendt med succes i kombination med en ekstracellulær fluxanalysator i flere undersøgelser7,8,9,10. Vi har ændret en protokol ved hjælp af rPFO til at screene mitokondrie substrat flux ved hjælp af XFe96 ekstracellulære flux analysator. I denne protokol sammenlignes fire forskellige substratoxiderende veje i to cellulære fænotyper, mens der er tilstrækkelige replikater og den korrekte kontrol for hvert testet materiale.

Protocol

1. En dag før analysen Fremstilling af reagenser og substrater. Mitokondrieanalyseopløsning (MAS): Udarbejde lageropløsninger af alle reagenser som beskrevet i tabel 1. Varm lagrene af mannitol og saccharose til 37 °C for at opløses fuldstændigt. Bland reagenserne til fremstilling af 2x MAS, og varm derefter blandingen til 37 °C. Juster pH med 5N KOH til 7,4 (~7 mL), tilsæt derefter vand for at bringe volumen op til 1 L. Filtersterilisation og opbevar aliquots ved -20 °C indti…

Representative Results

Start med at normalisere resultaterne til den anden måling af baseline respiration for at vise værdier som iltforbrugsprocent (OCR%). Resultaterne af analysen er vist i figur 5, figur 6, figur 7 og figur 8. Det er vigtigt at tildele de rigtige baggrunds brønde for hver gruppe og inaktivere baggrunds brønde i andre grupper. Figur 5 vise…

Discussion

Denne protokol er en ændring af tidligere offentliggjorte undersøgelser7,8,9,10 og produktbrugervejledningen. I modsætning til producentens protokol anvendes 2x MAS i stedet for 3x MAS, da 2× MAS er lettere at opløse og ikke danner nedbør efter frysning. Frosne 2x MAS aliquots kan opbevares op til seks måneder og vise ensartede resultater. En anden forskel er at inkludere ADP i komponent…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne takker de ansatte på Institut for Fysiologi på Det Sundhedsvidenskabelige Fakultet i Hradec Králové og Institut for Patofysiologi på Det Tredje Sundhedsvidenskabelige Fakultet for hjælp til fremstilling af kemikalier og prøver. Dette arbejde blev støttet af Charles University tilskud programmer PROGRES Q40/02, tjekkiske sundhedsministerium tilskud NU21-01-00259, Tjekkisk Videnskab Foundation tilskud 18-10144 og INOMED projekt CZ.02.1.01/0.0/0.0/18_069/0010046 finansieret af Ministeriet for Uddannelse, Ungdom og Sport i Tjekkiet og af Den Europæiske Union.

Materials

Adinosine 5′ -diphosphate monopotassium salt dihydrate Merck A5285 store at -20 °C
Antimycin A Merck A8674 store at -20 °C
Bovine serum albumin Merck A3803 store at 2 – 8 °C
Carbonyl cyanide 4-(trifluoromethoxy)phenylhydrazone Merck C2920 store at -20 °C
Dimethyl sulfoxide Merck D8418 store at RT
D-Mannitol Merck 63559 store at RT
Dulbecco's phosphate buffered saline Gibco 14190-144 store at RT
Ethylene glycol-bis(2-aminoethylether)-N,N,N′,N′-tetraacetic acid Merck 03777 store at RT
HEPES Merck H7523 store at RT
L(-)Malic acid disodium salt Merck M9138 store at RT
L-Glutamic acid sodium salt hydrate Merck G5889 store at RT
Magnissium chloride hexahydrate Merck M2670 store at RT
Oligomycin Merck O4876 store at -20 °C
Palmitoyl-DL-carnitine chloride Merck P4509 store at -20 °C
Potassium hydroxide Merck 484016 store at RT
Potassium phosphate monobasic Merck P5655 store at RT
Rotenone Merck R8875 store at -20 °C
Seahorse Wave Desktop Software Agilent technologies Download from www.agilent.com
Seahorse XFe96 Analyzer Agilent technologies
Seahorse XFe96 FluxPak Agilent technologies 102416-100 XFe96 sensor cartridges and XF96 cell culture microplates
Sodium pyruvate Merck P2256 store at 2 – 8 °C
Sodium succinate dibasic hexahydrate Merck S2378 store at RT
Sucrose Merck S7903 store at RT
Water Merck W3500 store at RT
XF calibrant Agilent technologies 100840-000 store at RT
XF Plasma membrane permeabilizer Agilent technologies 102504-100 Recombinant perfringolysin O (rPFO) – Aliquot and store at -20 °C

References

  1. Gerencser, A. A., et al. Quantitative microplate-based respirometry with correction for oxygen diffusion. Analytical Chemistry. 81 (16), 6868-6878 (2009).
  2. Murphy, E., et al. Mitochondrial function, biology, and role in disease: A scientific statement from the American Heart Association. Circulation Research. 118 (12), 1960-1991 (2016).
  3. Owen, O. E., Kalhan, S. C., Hanson, R. W. The key role of anaplerosis and cataplerosis for citric acid cycle function. Journal of Biological Chemistry. 277 (34), 30409-30412 (2002).
  4. Nicholls, D. G., Ferguson, S. J. . Bioenergetics 3. , (2002).
  5. Brand, M. D., Nicholls, D. G. Assessing mitochondrial dysfunction in cells. Biochemical Journal. 435 (2), 297-312 (2011).
  6. Staňková, P., et al. Adaptation of mitochondrial substrate flux in a mouse model of nonalcoholic fatty liver disease. International Journal of Molecular Sciences. 21 (3), 1101 (2020).
  7. Salabei, J. K., Gibb, A. A., Hill, B. G. Comprehensive measurement of respiratory activity in permeabilized cells using extracellular flux analysis. Nature Protocols. 9 (2), 421-438 (2014).
  8. Divakaruni, A. S., et al. Thiazolidinediones are acute, specific inhibitors of the mitochondrial pyruvate carrier. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 110 (14), 5422-5427 (2011).
  9. Divakaruni, A. S., Rogers, G. W., Murphy, A. N. Measuring mitochondrial function in permeabilized cells using the seahorse XF analyzer or a Clark-type oxygen electrode. Current Protocols in Toxicology. 60, 1-16 (2014).
  10. Elkalaf, M., Tůma, P., Weiszenstein, M., Polák, J., Trnka, J. Mitochondrial probe Methyltriphenylphosphonium (TPMP) inhibits the Krebs cycle enzyme 2-Oxoglutarate dehydrogenase. PLoS One. 11 (8), 0161413 (2016).
  11. Rogers, G. W., et al. High throughput microplate respiratory measurements using minimal quantities of isolated mitochondria. PLoS One. 6 (7), 21746 (2011).
check_url/62902?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Elkalaf, M., Vaněčková, K., Staňková, P., Červinková, Z., Polák, J., Kučera, O. Measuring Mitochondrial Substrate Flux in Recombinant Perfringolysin O-Permeabilized Cells. J. Vis. Exp. (174), e62902, doi:10.3791/62902 (2021).

View Video