Summary

Normothermic Negative Pressure Ventilation Ex Situ Lung Perfusion: 폐 기능 및 대사 평가

Published: February 14, 2022
doi:

Summary

이 논문은 맞춤형 플랫폼에서 조달, 부착 및 관리를 포함하여 음압 환기 현장 폐 관류의 돼지 모델을 설명합니다. 마취 및 수술 기술과 문제 해결에 중점을 둡니다.

Abstract

폐 이식(LTx)은 말기 폐 질환 치료의 표준으로 남아 있습니다. 적절한 기증자 장기의 부족과 과도한 지리적 운송 거리와 엄격한 기증자 장기 수용 기준으로 인해 악화된 기증자 장기 품질에 대한 우려는 현재 LTx 노력에 한계를 제기합니다. ESLP(Ex situ lung perfusion)는 이러한 한계를 완화할 수 있는 가능성을 보여준 혁신적인 기술입니다. 기증자 신체의 염증 환경 외부에 있는 폐의 생리학적 환기 및 관류는 ESLP에 전통적인 저온 정전기 보존(CSP)에 비해 몇 가지 이점을 제공합니다. 음압 환기(NPV) ESLP가 양압 환기(PPV) ESLP보다 우수하며 PPV가 인공호흡기 유발 폐 손상, 전염증성 사이토카인 생성, 폐부종 및 수포 형성을 더 많이 유발한다는 증거가 있습니다. NPV의 이점은 아마도 전체 폐 표면에 걸쳐 흉부 내압의 균일 한 분포 때문일 것입니다. 맞춤형 NPV-ESLP 장치의 임상적 안전성과 타당성은 증량제 기준 기증자(ECD) 인간 폐와 관련된 최근 임상 시험에서 입증되었습니다. 여기에서 이 맞춤형 장치의 사용은 관리 기술에 특히 주의를 기울여 12시간 동안 정상 체온 NPV-ESLP의 어린 돼지 모델에 설명되어 있습니다. ESLP 소프트웨어 초기화, ESLP 회로의 프라이밍 및 탈풍, 항혈전제, 항균제 및 항염증제 추가를 포함한 수술 전 준비가 지정됩니다. 중심선 삽입, 폐 생검, 출혈, 채혈, 심장 절제술 및 폐 절제술의 수술 중 기술에 대해 설명합니다. 또한, 마취 유도, 유지 관리 및 동적 수정이 설명된 마취 고려 사항에 특히 중점을 둡니다. 이 프로토콜은 또한 사용자 지정 장치의 초기화, 유지 관리 및 관류 및 환기 종료를 지정합니다. 장기 기능을 최적화하기 위한 환기 및 대사 매개변수의 변경을 포함한 동적 장기 관리 기술이 철저히 설명되어 있습니다. 마지막으로, 폐 기능의 생리학적 및 대사적 평가가 대표적인 결과에 특성화되고 묘사된다.

Introduction

폐 이식(LTx)은 말기 폐 질환 치료의 표준으로 남아 있습니다1; 그러나 LTx는 부적절한 기증자장기 이용2과 대기자 명단 사망률이 40%3로 다른 고형 장기 이식보다 높은 4,5 등 상당한 한계가 있습니다. 기증자 장기 이용률은 장기 품질 문제로 인해 낮습니다(20-30%). 엄격한 기증자 장기 수용 기준으로 인해 과도한 지리적 운송 거리가 복잡해지면 이러한 품질 문제가 악화됩니다. LTx는 또한 장기 이식 및 환자 결과 측면에서 다른 고형 장기 이식을 추적합니다2. 허혈성 재관류 손상(IRI)에 의해 가장 흔하게 발생하는 원발성 이식편 기능 장애(PGD)는 LTx 후 30일 사망률 및 이환율의 주요 원인을 나타내며 만성 이식편 기능 장애의 위험을 증가시킵니다 6,7. IRI를 줄이고 안전한 운송 시간을 연장하기 위한 노력은 환자 결과를 개선하는 데 가장 중요합니다.

ESLP(Ex situ lung perfusion)는 이러한 한계를 완화할 수 있는 가능성을 보여준 혁신적인 기술입니다. ESLP는 이식 전에 기증자 폐의 보존, 평가 및 재조정을 용이하게 합니다. 확장 기준 기증자(ECD) 폐 이식 후 만족스러운 장단기 결과를 나타내어 LTx에 적합한 기증자 폐 수의 증가에 기여했으며 일부 센터에서 장기 이용률이 20% 증가했습니다 8,9,10. LTx에 대한 현재의 임상 표준인 저온 정전기 보존(CSP)과 비교하여 ESLP는 몇 가지 이점을 제공합니다: 장기 보존 시간이 6시간으로 제한되지 않고, 이식 전에 장기 기능 평가가 가능하며, 지속적인 장기 관류로 인해 장기 기능을 최적화하는 관류액에 변형이 이루어질 수 있습니다11.

인간용으로 설계된 현재 ESLP 장치의 대다수는 양압 환기(PPV)를 사용합니다. 그러나 최근 문헌에 따르면 이 환기 전략은 음압 환기(NPV) ESLP보다 열등하며 PPV는 더 심각한 인공호흡기 유발 폐 손상을 유발합니다12,13,14,15. NPV-ESLP는 사람과 돼지의 폐 모두에서 전염증성 사이토카인 생성, 폐부종, 수포형성 등 다양한 생리학적 영역에서 양압 상피내외 폐 관류(PPV-ESLP)와 비교했을 때 우수한 장기 기능을 나타낸다15. NPV-ESLP에서 전체 폐 표면에 걸친 흉부내압의 균질한 분포는 이러한 이점의 기초가 되는 중요한 요인으로 제안되었습니다15,16. 전임상 효능 외에도 NPV-ESLP의 임상적 안전성과 타당성이 최근 임상 시험에서 입증되었습니다17. 새로운 NPV-ESLP 장치를 사용하여 12개의 확장 기준 기증자 인간 폐를 성공적으로 보존, 평가 한 후 100 % 30 일 및 1 년 생존으로 이식했습니다.

현재 원고의 목적은 12시간 동안 정상 체온 조건에서 어린 돼지 폐를 사용하는 우리 연구실의 NPV-ESLP 장치의 작동 프로토콜을 입증하는 것입니다. 외과적 회수에 대해 자세히 다루고 맞춤형 소프트웨어 플랫폼의 시작, 관리 및 종료에 대해서도 설명합니다. 조직 수집 및 샘플 관리 전략도 설명합니다.

Protocol

이 원고에서 수행되는 절차는 캐나다 동물 관리 위원회(Canadian Council on Animal Care)의 지침과 실험실 동물의 관리 및 사용 지침을 준수합니다. 앨버타 대학교 (University of Alberta)의 기관 동물 관리위원회 (Institutional Animal Care Committee)는 프로토콜을 승인했습니다. 35-50kg 사이의 암컷 어린 요크셔 돼지가 독점적으로 사용되었습니다. ESLP 절차에 관련된 모든 개인은 적절한 생물 안전 교육을 요구했습니다. …

Representative Results

폐 관류 및 환기(보존 모드)가 시작될 때 폐는 일반적으로 관류액이 정상체온증으로 따뜻해짐에 따라 폐동맥압이 낮고(< 10mmHg) 동적 순응도(< 10mL/mmHg)가 낮습니다. 체중이 35-50kg 인 요크셔 돼지는 일반적으로 폐의 무게가 350-500g입니다. NPV-ESLP의 첫 1시간 동안 측정된 호기 호흡량(TVe)은 0-2mL/kg이고 흡기 호흡량(TVi)은 100-200mL입니다. TVe는 일반적으로 3-6시간 이내에 4-6mL/kg에 도달하고 그 이후에는 계속…

Discussion

성공적인 ESLP 실행을 보장하는 데 필요한 문제 해결과 함께 몇 가지 중요한 수술 단계가 있습니다. 어린 돼지 폐는 성인 인간의 폐에 비해 매우 섬세하므로 조달 외과의는 돼지 폐를 다룰 때 주의해야 합니다. 폐를 해부할 때 외상과 무기폐를 유발하지 않도록 “노터치” 기술을 시도하는 것이 중요합니다. “노터치(No-touch)”는 조달 중에 최소한의 수동 조작을 사용하는 것을 의미합니다. 수술 중 인공 ?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

이 연구는 병원 연구 재단을 대신하여 자금을 지원받았습니다.

Materials

0 ETHIBOND Green 1 x 36" Endo Loop 0 ETHICON D8573
2-0 SILK Black 12" x 18" Strands ETHICON SA77G
ABL 800 FLEX Blood Gas Analyzer Radiometer 989-963
Adult-Pediatric Electrostatic Filter HME – Small Covidien 352/5877
Arterial Filter SORIN GROUP 01706/03
Backhaus Towel Clamp Pilling 454300
Biomedicus Pump Maquet BPX-80
Cable Ties – White 12” HUASU International HS4830001
Calcium Chloride Fisher Scientific C69-500G
Cooley Sternal Retractor Pilling 341162
CUSHING Gutschdressing Forceps Pilling 466200
D-glucose Sigma-Aldrich G5767-500G
Deep Deaver Retractor Pilling 481826
Debakey Straight Vascular Tissue Forceps Pilling 351808
Debakey-Metzenbaum Dissecting Pilling 342202
Scissors Pilling 342202
Endotracheal Tube 9.0mm CUFD Mallinckrodt 9590E Cuff removed for ESLP apparatus
Flow Transducer BIO-PROBE TX 40
Human Albumin Serum Grifols Therapeutics 2223708
Infusion Pump Baxter AS50
Inspire 7 M Hollow Fiber Membrane Oxygenator SORIN GROUP K190690
Intercept Tubing 1/4" x 1/16" x 8' Medtronic 3108
Intercept Tubing 3/8" x 3/32" x 6' Medtronic 3506
Intercept Tubing Connector 3/8" x 1/2" Medtronic 6013
MAYO Dissecting Scissors Pilling 460420
Medical Carbon Dioxide Tank Praxair 5823115
Medical Nitrogen Tank Praxair NI M-K
Medical Oxygen Tank Praxair 2014408
Organ Chamber Tevosol
PlasmaLyte A Baxter TB2544
Poole Suction Tube Pilling 162212
Potassium Phosphate Fischer Scientific P285-500G
Scale TANITA KD4063611
Silicon Support Membrane Tevosol
Sodium Bicarbonate Sigma-Aldrich 792519-1KG
Sodium Chloride 0.9% Baxter JB1324
Sorin XTRA Cell Saver SORIN GROUP 75221
Sternal Saw Stryker 6207
Surgical Electrocautery Device Kls Martin ME411
Temperature Sensor probe Omniacell Tertia Srl 1777288F
THAM Buffer Thermo Fisher Scientific 15504020 made from UltraPureTM Tris
TruWave Pressure Transducer Edwards VSYPX272
Two-Lumen Central Venous Catheter 7fr Arrowg+ard CS-12702-E
Vorse Tubing Clamp Pilling 351377
Willauer-Deaver Retractor Pilling 341720
Yankauer Suction Tube Pilling 162300

References

  1. Chambers, D. C., et al. The international thoracic organ transplant registry of the international society for heart and lung transplantation: Thirty-fifth adult lung and heart-lung transplant report-2018; focus theme: Multiorgan transplantation. The Journal of Heart and Lung Transplantation. 37 (10), 1169-1183 (2018).
  2. Valapour, M., et al. OPTN/SRTR 2017 annual data report: Lung. American Journal of Transplantation. 19, 404-484 (2019).
  3. Chambers, D. C., et al. The registry of the international society for heart and lung transplantation: Thirty-fourth adult lung and heart-lung transplantation report-2017; focus theme: Allograft ischemic time. The Journal of Heart and Lung Transplantation. 36 (10), 1047-1059 (2017).
  4. Klein, A. S., et al. Organ donation and utilization in the united states, 1999-2008. American Journal of Transplantation. 10 (4), 973-986 (2010).
  5. Singh, E., et al. Sequence of refusals for donor quality, organ utilization, and survival after lung transplantation. The Journal of Heart and Lung Transplantation. 38 (1), 35-42 (2019).
  6. Bhorade, S. M., Vigneswaran, W., McCabe, M. A., Garrity, E. R. Liberalization of donor criteria may expand the donor pool without adverse consequence in lung transplantation. The Journal of Heart and Lung Transplantation. 19 (12), 1199-1204 (2000).
  7. Snell, G. I., Griffiths, A., Levvey, B. J., Oto, T. Availability of lungs for transplantation: Exploring the real potential of the donor pool. The Journal of Heart and Lung Transplantation. 27 (6), 662-667 (2008).
  8. Cypel, M., et al. Normothermic ex vivo lung perfusion in clinical lung transplantation. The New England Journal of Medicine. 364 (15), 1431-1440 (2011).
  9. Wallinder, A., et al. Early results in transplantation of initially rejected donor lungs after ex vivo lung perfusion: A case-control study. European Journal of Cardio-Thoracic Surgery. 45 (1), 40-45 (2014).
  10. Cypel, M., et al. Experience with the first 50 ex vivo lung perfusions in clinical transplantation. The Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 144 (1), 1200-1206 (2012).
  11. Buchko, M. T., et al. Total parenteral nutrition in ex vivo lung perfusion: Addressing metabolism improves both inflammation and oxygenation. American Journal of Transplantation. 19 (12), 3390-3397 (2019).
  12. Andreasson, A. S. I., et al. Profiling inflammation and tissue injury markers in perfusate and bronchoalveolar lavage fluid during human ex vivo lung perfusion. European Journal of Cardio-Thoracic Surgery. 51 (3), 577-586 (2017).
  13. Sadaria, M. R., et al. Cytokine expression profile in human lungs undergoing normothermic ex-vivo lung perfusion. The Annals of Thoracic Surgery. 92 (2), 478-484 (2011).
  14. Ricard, J. D., Dreyfuss, D., Saumon, G. Ventilator-induced lung injury. European Respiratory Journal. 42, 2-9 (2003).
  15. Aboelnazar, N. S., et al. Negative pressure ventilation decreases inflammation and lung edema during normothermic ex-vivo lung perfusion. The Journal of Heart and Lung Transplantation. 37 (4), 520-530 (2018).
  16. Lai-Fook, S. J., Rodarte, J. R. Pleural pressure distribution and its relationship to lung volume and interstitial pressure. Journal of Applied Physiology. 70 (3), 967-978 (1991).
  17. Buchko, M. T., et al. Clinical transplantation using negative pressure ventilation ex situ lung perfusion with extended criteria donor lungs. Nature Communications. 11 (1), 5765 (2020).
  18. Buchko, M. T., et al. A low-cost perfusate alternative for ex vivo perfusion. Transplantation Proceedings. 52 (10), 2941-2946 (2020).
  19. Forgie, K. A., et al. Left lung orthotopic transplantation in a juvenile porcine model for ESLP. The Journal of Visualized Experiments. , (2021).
check_url/62982?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Forgie, K. A., Fialka, N., Buchko, M., Himmat, S., Hatami, S., Qi, X., Wang, X., Buswell, K., Edgar, R., Freed, D. H., Nagendran, J. Normothermic Negative Pressure Ventilation Ex Situ Lung Perfusion: Evaluation of Lung Function and Metabolism. J. Vis. Exp. (180), e62982, doi:10.3791/62982 (2022).

View Video