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Methodenartikel

Visualisierung von Verschiebungen auf dem Neuron-Glia-Schaltkreis mit der Kalzium-Bildgebungstechnik

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DOI:

10.3791/63338

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8. April 2022

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In diesem Artikel

Zusammenfassung

Die Zellkalziumbildgebung ist eine vielseitige Methodik zur Untersuchung der dynamischen Signalgebung einzelner Zellen, an gemischten Populationen in Kultur oder sogar an erwachten Tieren, basierend auf der Expression von kalziumdurchlässigen Kanälen / Rezeptoren, die einzigartige funktionelle Signaturen ergeben.

Zusammenfassung

Hier berichten wir über selektive In-vitro-Modelle von Schaltkreisen, die auf Glia-Schaltkreisen (Astrozyten, Oligodendrozyten und Mikroglia) und/oder Neuronen aus peripheren (dorsale Wurzelganglien) und zentralen Geweben (Kortex, subventrikuläre Zone, Organoid) basieren, die dynamisch in Bezug auf Kalziumverschiebungen untersucht werden. Das Modell, das zur Veranschaulichung der Ergebnisse gewählt wurde, ist die Netzhaut, ein einfaches Gewebe mit komplexen zellulären Interaktionen. Kalzium ist ein universeller Botenstoff, der an den meisten wichtigen zellulären Rollen beteiligt ist. Wir erklären in einem Schritt-für-Schritt-Protokoll, wie retinale Neuron-Gliazellen in Kultur vorbereitet und ausgewertet werden können, wobei wir uns Kalziumverschiebungen vorstellen. In diesem Modell unterscheiden wir Neuronen von Glia basierend auf ihrer selektiven Reaktion auf KCl und ATP. Kalziumpermeable Rezeptoren und Kanäle werden selektiv in verschiedenen Kompartimenten exprimiert. Um Kalziumreaktionen zu analysieren, verwenden wir ratiometrische fluoreszierende Matrizen wie Fura-2. Diese Sonde quantifiziert die freie Ca2+-Konzentration basierend auf Ca2+-freien und Ca2+-gebundenen Formen und zeigt zwei verschiedene Peaks, die auf der Fluoreszenzintensität basieren, die auf zwei Wellenlängen wahrgenommen wird.

Einleitung

Aufgrund der universellen Eigenschaften von Kalzium als zweiter Botenstoff ist dieses Ion an einer Vielzahl von Signalaktivitäten beteiligt: Gentranskription, Geburt und Tod, Proliferation, Migration und Differenzierung, synaptische Übertragung und Plastizität. Daher würde eine Methode, die in der Lage ist, die Dynamik der Kalziumaktivierung mit Genauigkeit und Beweglichkeit zu verfolgen, eine Möglichkeit bieten, einzigartige räumlich-zeitliche Reaktionen zu beobachten. Eine solche Methode ist die zelluläre Kalzium-Bildgebungstechnik, die funktionelle Daten mit spezifischen Zellphänotypen korreliert, basierend auf ihren unterschiedlichen Reaktionen.

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Protokoll

Alle Tierversuche wurden von den Richtlinien des Institutional Animal Care and Use Committee der Federal University of Rio de Janeiro nach den "Principles of Laboratory Animal Care" (NIH, Bethesda, USA) genehmigt und durchgeführt. Genehmigungsnummer IBCCF-035 für befruchtete Hühnereier aus Weißem Leghorn.

1. Vorbereitung von Lösungen

  1. Krebslösung vorbereiten: (132 mM NaCl, 4 mM KCl, 1,4 mM MgCl2, 2,5 mM CaCl2, 6 mM Glukose, 10 mM HEPES, pH 7,4, 373 mOsm).
  2. Salzpuffer (Ca2+ und Mg2+ freie Lösung - CMF): 76,55 g/L NaCl, 3,05 g/L KCl, 1,65 g/L Na2HPO4, 0,610 g/L KH2....

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Ergebnisse

Hier verwendeten wir Netzhautzellen in Kultur ab embryonalen Küken am 8. Tag, um zu untersuchen, wie Neuronen und Glia in Bezug auf Kalziumverschiebungen signalisieren. Kulturen wurden im Wesentlichen wie beschrieben15,19 als gemischte Neuron-Gliazellen (bei einer Dichte von ≥ 1 x 106 Zelle/Schale) in einem Stadium von 7 Tagen in vitro hergestellt (Abbildung 1A). Alternativ können angereicherte neuronale Zellen, die in nie.......

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Diskussion

Wir haben das Netzhautgewebe verwendet, um zu zeigen, dass Kalziumreaktionen, die durch KCl oder ATP vermittelt werden, eindeutig in neuronale bzw. gliale Reaktionen unterteilt sind (Abbildung 1). Obwohl einige Daten in der Literatur darauf hindeuten, dass P2X7-Rezeptoren in Neuronen exprimiert werden, die die neuronale Aktivität und die freisetzung synaptischer Neurotransmitter regulieren20, stellen andere Autoren die Existenz neuronaler P2X7-Rezeptoren in Frage. Tat.......

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Offenlegungen

Die Autoren haben nichts offenzulegen.

Danksagungen

Zuschüsse, Sponsoren und Finanzierungsquellen: MH erhält ein PhD CNPq-Stipendium. HRF ist Empfänger eines Postdoc-Stipendiums, das von CNPq unterstützt wird (HRF-Fördernummer 152071/2020-2). RAMR wird von CNPq und FAPERJ (Fördernummern E-26/202.668/2018, E-26/010.002215/2019, 426342/2018-6 und 312157/2016-9 und INCT-INNT (National Institute for Translational Neuroscience) unterstützt.

....

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
15 mm DeckglasPaul Marienfeld GmbH & Co. KG111550Zellunterstützung
510 nm LangpassfilterCarl Zeiss
ATPSigmaA1852
B-27 ErgänzungGibco17504044Ergänzung
CaCl2Sigma-AldrichC8106
CoolSNAP digital KameraRoper Scientific, Trenton, NJ
D-(+)-GlukoseNeon1466
DMEM/ F-12Gibco12400-24Zellkulturmedium
Excel SoftwareMicrosoft
Fötales KälberserumSigma-AldrichF9665Suplement
FluoreszenzmikroskopAxiovert 200; Carl ZeissB 40-080
Fura-2 AMMolekulare SondenF1221Ratiometrisch Ca2+ Indikator
Gentamicin SulfatCalbiochem1405-41-0Antibiotika
HEPESSigmaH4034
KClSigmaP5405
KH2PO4SigmaP5655
Lambda DG-4 GerätSutter Instrument, Novato, CADG-4PLUS/OF30
LamininGibco23017-015Hilfe Zelladhäsion
Metafluor SoftwareUniversal Imaging Corp. West Chester, PA
MgCl2SigmaM4880
Na2HPO4Vetec129
NaClIsofar310
NaHCO3Vetec306
PH3 PlattformWarner Instruments, Hamden, CT64-0286
Pluronic F-127Molecular ProbesP6866nichtionisch, Tensid
Poly-L-LysinSigma-AldrichP8920Hilfe bei der Zelladhäsion
Trypsin-EDTA 0,25%Gibco25200056Dissoziationsenzym

Referenzen

  1. Tsien, R. Y., Pozzan, T., Rink, T. J. Calcium homeostasis in intact lymphocytes: cytoplasmic free calcium monitored with a new, intracellularly trapped fluorescent indicator. Journal of Cell Biology. 94 (2), 325-334 (1982).
  2. Paredes, R. M., Etzler, J. C., Watts, L. T., Zheng, W., Lechleiter, J. D.

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Nachdrucke und Genehmigungen

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