Summary

Stereotoksisk kirurgisk tilnærming til mikroinjekt Caudal Brainstem og Øvre Cervical Ryggmarg via Cisterna Magna i mus

Published: January 21, 2022
doi:

Summary

Stereotoksisk kirurgi for å målrette hjernesteder hos mus innebærer vanligvis tilgang gjennom skallebenene og styres av hodeskallelandemerker. Her skisserer vi en alternativ stereotaxisk tilnærming for å målrette kaudal hjernestamme og øvre cervical ryggmarg via cisterna magna som er avhengig av direkte visualisering av brainstem landemerker.

Abstract

Stereotoksisk kirurgi for å målrette hjernesteder hos mus styres ofte av hodeskallelandemerker. Tilgang oppnås deretter via burrhull boret gjennom skallen. Denne standardtilnærmingen kan være utfordrende for mål i kaudal hjernestamme og øvre livmorhalsledning på grunn av spesifikke anatomiske utfordringer, da disse stedene er fjernt fra hodeskallelandemerker, noe som fører til upresise. Her skisserer vi en alternativ stereotaxisk tilnærming via cisterna magna som har blitt brukt til å målrette diskrete regioner av interesse for kaudal hjernestamme og øvre cervical ledning. Cisterna magna strekker seg fra occipital bein til atlaset (dvs. det andre vertebrale beinet), er fylt med cerebrospinalvæske, og er dekket av dura mater. Denne tilnærmingen gir en reproduserbar vei for tilgang til utvalgte sentralnervesystem (CNS) strukturer som ellers er vanskelig å nå på grunn av anatomiske barrierer. Videre gir det mulighet for direkte visualisering av brainstem landemerker i nærheten av målstedene, noe som øker nøyaktigheten når du leverer små injeksjonsvolumer til begrensede interesseområder i kaudal hjernestamme og øvre livmorhalsledning. Til slutt gir denne tilnærmingen en mulighet til å unngå cerebellum, noe som kan være viktig for motoriske og sensoriske studier.

Introduction

Standard stereotaxisk kirurgi for å målrette hjernesteder hos mus1 innebærer vanligvis fiksering av skallen ved hjelp av et sett med ørestenger og en munnstang. Koordinater estimeres deretter basert på referanseatlaser 2,3, og hodeskalle landemerker, nemlig bregma (punktet der suturene i frontal og parietal bein kommer sammen) eller lambda (punktet der suturene i parietal og occipital bein kommer sammen; Figur 1A,B). Gjennom et burrhull inn i skallen over det estimerte målet, kan målområdet nås, enten for levering av mikroinjeksjoner eller instrumentering med kanyler eller optiske fibre. På grunn av variasjon i anatomien til disse suturene og feilene i lokaliseringen av bregma eller lambda 4,5, varierer posisjonen til nullpunkter i forhold til hjernen fra dyr til dyr. Selv om små feil i målretting, som følge av denne variasjonen, ikke er et problem for store eller nærliggende mål, er deres innvirkning større for mindre interesseområder som er fjernt fra nullpunktene i anteroposterior eller dorsoventral fly og / eller når de studerer dyr av varierende størrelse på grunn av alder, belastning og / eller kjønn. Det er flere ekstra utfordringer som er unike for medulla oblongata og øvre livmorhalsledning. For det første er små endringer i anteroposteriorkoordinater forbundet med betydelige endringer i dorsoventralkoordinater i forhold til dura, på grunn av cerebellumets posisjon og form (figur 1Bi)2,6,7. For det andre er den øvre livmorhalsledningen ikke inneholdt i skallen2. For det tredje gjør den skråstillingen til oksipitalt bein og overliggende lag av nakkemuskler2 standard stereotaxisk tilnærming enda mer utfordrende for strukturer som ligger nær overgangen mellom hjernestammen og ryggmargen (figur 1Bi). Til slutt er mange mål av interesse for kaudal hjernestamme og livmorhalsledning liten2, noe som krever presise og reproduserbare injeksjoner 8,9.

En alternativ tilnærming gjennom cisterna magna omgår disse problemene. Cisternamagnaten er et stort rom som strekker seg fra oksipitalbenet til atlaset (figur 1A, dvs. det andre vertebrale beinet)10. Den er fylt med cerebrospinalvæske og dekket av dura mater10. Dette rommet mellom occipitalbenet og atlaset åpnes når anteroflexing hodet. Det kan nås ved å navigere mellom de overliggende parrede magene i longus capitis-muskelen, og utsette dorsaloverflaten til kaudal hjernestamme. Regioner av interesse kan da målrettes basert på landemerkene i disse regionene selv hvis de ligger nær dorsaloverflaten; eller ved å bruke obex, punktet der den sentrale kanalen åpner inn i IV ventrikelen, som et nullpunkt for koordinater for å nå dypere strukturer. Denne tilnærmingen har blitt brukt i en rekke arter, inkludert rotte11, katt12, mus 8,9 og ikke-menneskelig primat13 for å målrette den ventrale respiratoriske gruppen, medullær medial retikulær formasjon, kjernen i den ensomme kanalen, området postrema eller hypoglossale kjernen. Denne tilnærmingen er imidlertid ikke mye brukt, da den krever kunnskap om anatomi, et spesialisert verktøysett og mer avanserte kirurgiske ferdigheter sammenlignet med standard stereotakaxisk tilnærming.

Her beskriver vi en trinnvis kirurgisk tilnærming for å nå hjernestammen og øvre livmorhalssnor via cisternamagnaten, visualisere landemerker, sette nullpunktet (figur 2) og estimere og optimalisere målkoordinater for stereotoksisk levering av mikroinjeksjoner i de diskrete hjernestamme- og ryggmargsregionene av interesse (figur 3). Vi diskuterer deretter fordelene og ulempene knyttet til denne tilnærmingen.

Protocol

Forfatteren erklærer at protokollen følger retningslinjene til Institutional Animal Care and Use Committee ved Beth Israel Deaconess Medical Center. 1. Fremstilling av kirurgiske instrumenter og stereotaxisk ramme MERK: Operasjonen utføres under aseptiske forhold. Steriliteten opprettholdes ved hjelp av den sterile spissteknikken. Monter den stereotaktiske armen med en mikropipette eller sprøyte fylt med en injiserbar valgbar (adeno-as…

Representative Results

Cisterna magna tilnærming gjør det mulig å målrette caudal hjernestamme og øvre Cervical ledning strukturer som ellers er vanskelig å nå via standard stereotaxic tilnærminger eller er utsatt for inkonsekvent målretting. Operasjonen for å nå cisterna magna krever snitt i huden, et tynt lag av trapesmuskel og åpning av dura mater og tolereres derfor godt av mus. Det er spesielt effektivt og mindre invasivt når man målretter mot flere (langsgående spredte eller bilaterale) steder, da det ikke krever …

Discussion

Standard stereotaxic kirurgi er vanligvis avhengig av hodeskalle landemerker for å beregne koordinatene til målsteder i CNS1. Målsteder nås deretter via burrhull som bores gjennom skallen1. Denne metoden er ikke ideell for kaudal hjernestamme, da målsteder ligger fjernt fra skallen landemerker i anteroposterior og dorsoventral fly2 og som anatomien til skallen og overliggende muskler gjør tilgang utfordrende6 (<…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av R01 NS079623, P01 HL149630 og P01 HL095491.

Materials

Alcohol pad Med-Vet International SKU: MDS090735Z skin preparation for the prevention of surgical site infection
Angled forceps, Dumont #5/45 FST 11251-35 only to grab dura
Betadine pad Med-Vet International SKU:PVP-PAD skin preparation for the prevention of surgical site infection
Cholera toxin subunit-b, Alexa Fluor 488/594 conjugate Thermo Fisher Scientific 488: C34775, 594: C22842 Fluorescent tracer
Clippers Wahl Model MC3, 28915-10 for shaving fur at surgical site
Electrode holder with corner clamp Kopf 1770 to hold glass pipette
Flowmeter Gilmont instruments model # 65 MM to regulate flow of isoflurane and oxygen to mouse on the surgical plane
Fluorescent microspheres, polystyrene Thermo Fisher Scientific F13080 Fluorescent tracer
Heating pad Stoelting 53800M thermoregulation
Induction chamber with port hook up kit Midmark Inc 93805107 92800131 chamber providing initial anasthesia
Insulin Syringe Exelint International 26028 to administer saline and analgesic
Isoflurane Med-Vet International SKU:RXISO-250 inhalant anesthetic
Isoflurane Matrix VIP 3000 vaporizer Midmark Inc 91305430 apparatus for inhalant anesthetic delivery
Laminectomy forceps, Dumont #2 FST 11223-20 only to clean dura
Medical air, compressed Linde UN 1002 used with stimulator & PicoPump for providing air for precision solution injection
Meloxicam SR Zoo Pharm LLC Lot # MSR2-211201 analgesic
Microhematocrit borosilicate glass pre calibrated capillary tube Globe Scientific Inc 51628 for transfection of material to designated co-ordinates
Mouse adaptor Stoelting 0051625  adapting rat stereotaxic frame for mouse surgery
Needle holder, Student Halsted- Mosquito Hemostats FST 91308-12 for suturing
Oxygen regulator Life Support Products S/N 909328, lot 092109 regulate oxygen levels from oxygen tank
Oxygen tank, compressed Linde USP UN 1072 provided along with isoflurane anasthesia
Plastic card not applicable not applicable any firm plastic card, cut to fit the stereotactic frame (e.g. ID card)
Pneumatic PicoPump ( or similar) World Precision Instruments (WPI) SYS-PV820 For precision solution injection
Saline, sterile Mountainside Medical Equipment H04888-10 to replace body fluids lost during surgery
Scalpel handle, #3 FST 10003-12 to hold scalpel
Scissors, Wagner FST 14070-12 to cut polypropylene suture
Spring scissors, Vannas 2.5mm with accompanying box FST 15002-08 scissors only to open dura, box to elevate body
Stereotactic micromanipulator Kopf 1760-61 attached to electrode holder to adjust position based on co-ordinates
Stereotactic 'U' frame assembly and intracellular base plate Kopf 1730-B, 1711 frame for surgery
Sterile cotton tipped applicators Puritan 25-806 10WC absorbing blood from surgical field
Sterile non-fenestrated drapes Henry Schein 9004686 for sterile surgical field
Sterile opthalmic ointment Puralube P1490 ocular lubricant
Stimulator & Tubing Grass Medical Instruments S44 to provide controlled presurred air for precision solution injection
Surgical Blade #10 Med-Vet International SKU: 10SS for skin incision
Surgical forceps, Extra fine Graefe FST 11153-10 to hold skin
Surgical gloves Med-Vet International MSG2280Z for asceptic surgery
Surgical microscope Leica Model M320/ F12 for 5X-40X magnification of surgical site
Suture 5-0 polypropylene Oasis MV-8661 to close the skin
Tegaderm 3M 3M ID 70200749250 provides sterile barrier
Universal Clamp and stand post Kopf 1725 attached to stereotactic U frame and intracellular base plate
Wound hook with hartman hemostats FST 18200-09, 13003-10 to separate muscles and provide surgical window

References

  1. JoVE. Rodent Stereotaxic Surgery. JoVE Science Education Database. , (2021).
  2. Paxinos, G., Franklin, K. B. J. . The Mouse Brain in Stereotaxic Coordinates. , (2001).
  3. Lein, E. S., et al. Genome-wide atlas of gene expression in the adult mouse brain. Nature. 445 (7124), 168-176 (2007).
  4. Rangarajan, J. R., et al. Image-based in vivo assessment of targeting accuracy of stereotactic brain surgery in experimental rodent models. Scientific Reports. 6 (1), 38058 (2016).
  5. Blasiak, T., Czubak, W., Ignaciak, A., Lewandowski, M. H. A new approach to detection of the bregma point on the rat skull. Journal of Neuroscience Methods. 185 (2), 199-203 (2010).
  6. Popesko, P., Rajtova, V., Horak, J. . A Colour Atlas of the Anatomy of Small Laboratory Animals, Volume 2: Rat, Mouse and Golden Hamster. 2, (1992).
  7. Allen Mouse Brain Atlas. Allen Institute for Brain Science Available from: https://mouse.brain-map.org/experiment/thumbnails/100042147?image_type=atlas (2004)
  8. Vanderhorst, V. G. J. M. Nucleus retroambiguus-spinal pathway in the mouse: Localization, gender differences, and effects of estrogen treatment. The Journal of Comparative Neurology. 488 (2), 180-200 (2005).
  9. Yokota, S., Kaur, S., VanderHorst, V. G., Saper, C. B., Chamberlin, N. L. Respiratory-related outputs of glutamatergic, hypercapnia-responsive parabrachial neurons in mice. Journal of Comparative Neurology. 523 (6), 907-920 (2015).
  10. Anselmi, C., et al. Ultrasonographic anatomy of the atlanto-occipital region and ultrasound-guided cerebrospinal fluid collection in rabbits (Oryctolagus cuniculus). Veterinary Radiology & Ultrasound. 59 (2), 188-197 (2018).
  11. Herbert, H., Moga, M. M., Saper, C. B. Connections of the parabrachial nucleus with the nucleus of the solitary tract and the medullary reticular formation in the rat. The Journal of Comparative Neurology. 293 (4), 540-580 (1990).
  12. Vanderhorst, V. G., Holstege, G. Caudal medullary pathways to lumbosacral motoneuronal cell groups in the cat: evidence for direct projections possibly representing the final common pathway for lordosis. The Journal of Comparative Neurology. 359 (3), 457-475 (1995).
  13. Vanderhorst, V. G., Terasawa, E., Ralston, H. J., Holstege, G. Monosynaptic projections from the nucleus retroambiguus to motoneurons supplying the abdominal wall, axial, hindlimb, and pelvic floor muscles in the female rhesus monkey. The Journal of Comparative Neurology. 424 (2), 233-250 (2000).
  14. Wall, N. R., Wickersham, I. R., Cetin, A., De La Parra, M., Callaway, E. M. Monosynaptic circuit tracing in vivo through Cre-dependent targeting and complementation of modified rabies virus. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 107 (50), 21848-21853 (2010).
  15. Krashes, M. J., et al. Rapid, reversible activation of AgRP neurons drives feeding behavior in mice. The Journal of Clinical Investigation. 121 (4), 1424-1428 (2011).
  16. Ganchrow, D., et al. Nucleus of the solitary tract in the C57BL/6J mouse: Subnuclear parcellation, chorda tympani nerve projections, and brainstem connections. The Journal of Comparative Neurology. 522 (7), 1565-1596 (2014).
  17. Ung, K., Arenkiel, B. R. Fiber-optic implantation for chronic optogenetic stimulation of brain tissue. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (68), e50004 (2012).
check_url/63344?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Joshi, K., Kirby, A., Niu, J., VanderHorst, V. Stereotaxic Surgical Approach to Microinject the Caudal Brainstem and Upper Cervical Spinal Cord via the Cisterna Magna in Mice. J. Vis. Exp. (179), e63344, doi:10.3791/63344 (2022).

View Video