Summary

Lokomotorisk bedömning av 6-hydroxydopamininducerad vuxen zebrafiskbaserad Parkinsons sjukdomsmodell

Published: December 28, 2021
doi:

Summary

Det föreliggande protokollet beskriver intracerebroventrikulär (ICV) injektion av vuxna zebrafiskar med neurotoxisk 6-hydroxigopamin (6-OHDA) vid ventral diencephalon (Dn) och bedömningen av försämringen och efterföljande återhämtning av simbeteendepostlesion genom att använda det öppna tanktestet, som åtföljs av analys med hjälp av en videospårningsprogramvara.

Abstract

Begränsningarna av nuvarande behandlingar för att fördröja dopaminerg neuronal förlust vid Parkinsons sjukdom (PD) ökar behovet av alternativa terapier som kan återställa dessa neuroner. Mycket ansträngning riktas för närvarande mot en bättre förståelse av neuroregeneration med hjälp av prekliniska in vivo-modeller . Denna regenerativa förmåga till självreparation är dock ineffektiv hos däggdjur. Icke-däggdjursdjur som zebrafisk har således framträtt som en utmärkt neuroregenerativ modell på grund av dess förmåga att kontinuerligt självförnya och ha en nära hjärnhomologi till människor. Som en del av ansträngningen att belysa cellulära händelser som är involverade i neuroregenerering in vivo har vi etablerat den 6-hydroxydopamin (6-OHDA) -inducerade vuxna zebrafiskbaserade PD-modellen. Detta uppnåddes genom den optimerade intracerebroventrikulära (ICV) mikroinjektionen av 99,96 mM 6-OHDA för att specifikt ablate dopaminerga neuroner (DpN) i ventral diencephalon (Dn) i zebrafiskhjärnan. Immunofluorescens indikerade mer än 85 % av DpN-ablationen vid dag tre efter förlossningen och fullständigt återställande av DpN vid lesionsstället 30 dagar efter förlossningen. Den föreliggande studien bestämde försämringen och efterföljande återhämtning av zebrafiskens simbeteende efter lesion genom att använda det öppna fälttestet genom vilket två parametrar, körd sträcka (cm) och medelhastighet (cm / s), kvantifierades. Förflyttningen bedömdes genom att analysera inspelningarna av enskilda fiskar i varje grupp (n = 6) med hjälp av videospårningsprogramvara. Resultaten visade en signifikant (p < 0,0001) minskning av hastighet (cm / s) och körd sträcka (cm) för lesionerad zebrafisk 3 dagar efter 3 dagar efter sham. Den lesionerade zebrafisken uppvisade full återhämtning av simbeteende 30 dagar efter böjningen. De nuvarande resultaten tyder på att 6-OHDA-lesionerad vuxen zebrafisk är en utmärkt modell med reproducerbar kvalitet för att underlätta studien av neuroregeneration i PD. Framtida studier om mekanismerna bakom neuroregenerering samt inneboende och yttre faktorer som modulerar processen kan ge viktig inblick i nya strategier för cellersättningsbehandling mot PD.

Introduction

Parkinsons sjukdom (PD), en sjukdom som tydligt kännetecknas av muskelstyvhet, vilande tremor och bradykinesi, är den snabbast växande neurologiska sjukdomen i världen1,2. Risken och förekomsten av PD ökar snabbt med åldern, särskilt hos individer i åldern 50 år och äldre3. Etiologin och patogenesen av PD hittills är fortfarande dåligt förstådd. Detta har ofta lämnat den tidiga starten av PD odiagnostiserad. För närvarande är bristen på dopamin och förlusten av dopaminerga nervceller (DpN) hos PD-patienter starkt kopplade till manifestationen av motoriska symtom4. Genom att dra nytta av detta förhållande har flera behandlingar utformats antingen för att fungera direkt som dopaminersättning (dvs. levodopa) eller för att kompensera för förlusten av DpN (dvs. djup hjärnstimulering). Även om dessa behandlingar medför symtomatiska fördelar, ändrar de inte sjukdomsförloppets försämrade förlopp5. Mot bakgrund av denna betydande svaghet har cellersättningsterapi föreslagits. Effekten av detta tillvägagångssätt är emellertid inkonsekvent med tanke på utmaningarna med transplantatberedning, celltillväxtkontroll och fenotypinstabilitet. Cellersättningsterapi, som hade väckt etiska problem, utgör också risken för att inducera hjärntumörer och oönskade immunreaktioner6,7.

Begränsningarna i nuvarande terapeutiska strategier har lett till en större tonvikt på regenerering av DpN som ett potentiellt tillvägagångssätt vid behandling av PD. Regenerering av DpN eller neuroregeneration har framstått som ett av de lovande genombrotten i hanteringen av PD, inte bara på grund av dess potential som en ny terapeutisk metod utan också som medel för att förstå sjukdomsmekanismen8, 9. Detta tillvägagångssätt fokuserar på återställande av neuronal funktion genom differentiering, migration och integration av befintliga stamceller i de lesionerade kretsarna10. För att ytterligare utforska neuroregeneration har olika in vivo-studier genomförts. Det visade sig att ryggradsdjur som däggdjur, amfibier och reptiler genererar nya hjärnceller efter skada11,12. Bland ryggradsdjuren är däggdjursdjur mer eftertraktade med tanke på deras genetiska likhet med människor. Däggdjur uppvisar dock begränsad och dålig reparativ kapacitet i centrala nervsystemet (CNS) som kan pågå genom vuxen ålder efter en hjärnskada13. I allmänhet är däggdjur olämpliga som djurmodeller för att förstå neuroregenerering med tanke på att det låga antalet neuroner som produceras inte kommer att vara tillräckligt för att återställa skadade neurala kretsar som observerats vid PD. Som sådan är den teleostbaserade modellen, särskilt i zebrafisk, mycket gynnad för sin höga proliferativa hastighet, förmåga att kontinuerligt självförnya och stänga hjärnhomologi med människor14,15.

Zebrafisk används oftast för att studera oordnad rörelse i PD16. Den zebrafiskbaserade PD-modellen induceras vanligtvis av neurotoxiner, som inkluderar 1-metyl-4-fenyl-1,2,3,6-tetrahydropyridin (MPTP) och 6-hydroxydopamin (6-OHDA)17. Även om det är effektivt för att inducera specifik förlust av DpN och minskning av dopaminnivåer, efterliknar MPTP-baserade modeller inte nära villkoren för PD eftersom DpN-förlusten inte är begränsad enbart till CNS18. Oförmågan hos 6-OHDA att passera blod-hjärnbarriären begränsade dess effekter på cellulära och funktionella förändringar i hjärnan när det administreras intrakraniellt i motsats till intramuskulärt19. Perifer administrering av 6-OHDA orsakade en global minskning av dopaminnivåerna i hela nervsystemet20. Medan administrering av 6-OHDA i cerebrospinalvätskan orsakade ablation av DpN i hela CNS21, vilket inte efterliknar tillståndet som ses i PD varigenom förlusten av DpN uppträder specifikt vid substantia nigra i den mänskliga hjärnan. ICV-administrering av 6-OHDA, tvärtom, inducerade specifikt signifikant ablation av DpN i området ventral Dn i zebrafiskhjärnan, som liknade substantia nigra22. Intressant nog rapporterades återhämtning av DpN 30 dagar efter 6-OHDA-inducerad lesion och dessa neuroner överlevde under livet23,24. Den funktionella återhämtningen av DpN demonstrerades genom en lokomotorisk bedömning av tillryggalagd sträcka (cm) och medelhastighet (cm/s) med användning av den 6-OHDA-inducerade vuxna zebrafiskbaserade PD-modellen22.

Protocol

Den föreliggande studien har godkänts av kommittén för djurforskning och etik (CARE), Universiti Technologi MARA (UiTM) [Referensnr: UiTM CARE 346/2021, daterad den 7 maj 2021]. OBS: De publicerade protokollen22,25,26 för standardhållning och underhåll av den 6-OHDA-lesionerade vuxna zebrafisken PD-modellen användes. Experiment utfördes med vuxna manliga zebrafiskar (Danio rerio) i ?…

Representative Results

Det föreliggande experimentet bedömde förändringarna i vuxna zebrafiskars simbeteende efter ICV-mikroinjektion med 6-OHDA. Anledningen till att använda 6-OHDA som det valda neurotoxinet berodde på dess oförmåga att korsa blod-hjärnbarriären, vilket gav specifik och riktad ablation av DpN inom området intresse-ventral diencephalon (Dn)16. DpN-delpopulationen har här anatomisk likhet med DpN-delpopulationen i människans substantia nigra pars compacta31. <p cl…

Discussion

Det aktuella arbetet visade framgångsrikt den lokomotoriska bedömningen av den etablerade 6-OHDA-inducerade, vuxna zebrafiskbaserade PD-modellen. Hela experimentet involverade tre huvudsteg: pre-ICV mikroinjektionspreparat, ICV-mikroinjektion av zebrafisk och lokomotorisk bedömning. För att säkerställa en hälsosam återhämtning av vuxna zebrafiskar efter ICV-mikroinjektionsförfarandet och goda experimentella resultat har vissa goda metoder för varje steg rekommenderats i den aktuella studien.

<p class="jove…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete stöddes av ministeriet för högre utbildning Malaysia inom ramen för systemet för bidrag till grundforskning [600-IRMI/FRGS 5/3 (033/2019)].

Materials

Materials
6-Hydroxydopamine (6-OHDA) Sigma-Aldrich, Missouri, USA 162957
Ascorbic acid Thermo Fisher Scientific, California, USA FKC#A/8882/53
Disposable pasteur pipette, 3 mL Thermo Fisher Scientific, California, USA FB55348
Microcentrifuge tube, 0.2 mL Eppendorf, Hamburg, Germany 30124332
Nice conical flask, 100 mL Evergreen Engineering & Resources, Semenyih, Malaysia SumYau0200
Phosphate buffered saline (PBS) Sigma-Aldrich, Missouri, USA P4417
Sodium bicarbonate Sigma-Aldrich, Missouri, USA S5761
Sodium chloride Merck, Darmstadt, Germany 106404
Stereomicroscope Nikon, Tokyo, Japan SMZ745
Tricaine methanesulfonate (MS-222) Sigma-Aldrich, Missouri, USA E10521
Equipment
ANY-maze software Stoelting Co., Illinois, USA version 7.0; video tracking software
Cubis II Micro Lab Balance Sartorius, Göttingen, Germany SE 2
FemtoJet IV microinjector Eppendorf, Hamburg, Germany 5192000035
Femtotip II, sterile injection capillary Eppendorf, Hamburg, Germany 5242957000
InjectMan 4 micromanipulator Eppendorf, Hamburg, Germany 5192000027
LED Portable Lamp MR. DIY, Selangor, Malaysia 9023251 20 mAh
PELCO Pro Superalloy, offset, fine tips Ted Pella, California, USA 5367-12NM
Shanda aquarium heater Yek Fong Aquarium, Selangor, Malaysia SDH-228
Thermometer Sera Precision, Heinsberg, Germany 52525
Video camera Nikon, Tokyo, Japan D3100

References

  1. Dorsey, E. R., et al. regional, and national burden of Parkinson’s disease, 1990-2016: a systematic analysis for the Global Burden of Disease Study 2016. Lancet Neurology. 17 (11), 939-953 (2018).
  2. Maserejian, N., Vinikoor-Imler, L., Dilley, L. Estimation of the 2020 global population of Parkinson’s Disease (PD). Movement Disorder Council. 35 (1), 198 (2020).
  3. Hirsch, L., Jette, N., Frolkis, A., Steeves, T., Pringsheim, T. The Incidence of Parkinson’s Disease: A Systematic Review and Meta-Analysis. Neuroepidemiology. 46 (4), 292-300 (2016).
  4. Przedborski, S. The two-century journey of Parkinson disease research. Nature Review Neuroscience. 18 (4), 251-259 (2017).
  5. Cookson, M. R. . Disease-Modifying Targets in Neurodegenerative Disorders. , 157-174 (2017).
  6. Jamebozorgi, K., et al. Cellular and molecular aspects of Parkinson treatment: Future therapeutic perspectives. Molecular Neurobiology. 56 (7), 1-13 (2018).
  7. Parmar, M., Grealish, S., Henchcliffe, C. The future of stem cell therapies for Parkinson disease. Nature Review Neuroscience. 21 (1), 1-13 (2020).
  8. Foltynie, T. Can Parkinson’s disease be cured by stimulating neurogenesis. Journal of Clinical Investigation. 125 (3), 978-980 (2015).
  9. Winner, B., Winkler, J. Adult neurogenesis in neurodegenerative diseases. Cold Spring Harbour Perspect Biology. 7 (4), 021287 (2015).
  10. Huang, C., et al. Nerve guidance conduits from aligned nanofibers: improvement of nerve regeneration through longitudinal nanogrooves on a fiber surface. ACS Applied Materials & Interfaces. 7 (13), 7189-7196 (2015).
  11. Alunni, A., Bally-Cuif, L. A comparative view of regenerative neurogenesis in vertebrates. Development. 143 (5), 741-753 (2016).
  12. Dietz, V., Schwab, M. E. From the rodent spinal cord injury model to human application: promises and challenges. Journal of Neurotrauma. 34 (9), 1826-1830 (2017).
  13. La Rosa, C., Bonfanti, L. Brain plasticity in mammals: An example for the role of comparative medicine in the neurosciences. Frontiers in Veterinary Science. 5 (274), 1-8 (2018).
  14. Ferretti, P., Prasongchean, W. . Neural Stem Cells in Development, Adulthood and Disease. , 1-21 (2015).
  15. Vijayanathan, Y., et al. Adult endogenous dopaminergic neuroregeneration against Parkinson’s Disease: Ideal animal models. Neurotoxicity Research. 39 (2), 504-532 (2021).
  16. Vaz, R. L., Outeiro, T. F., Ferreira, J. J. Zebrafish as an animal model for drug discovery in Parkinson’s disease and other movement disorders: a systematic review. Frontier Neuroscience. 9, 347 (2018).
  17. Nie, S., et al. Small molecule TrkB agonist deoxygedunin protects nigrostriatal dopaminergic neurons from 6-OHDA and MPTP induced neurotoxicity in rodents. Neuropharmacology. 99, 448-458 (2015).
  18. Schober, A. Classic toxin-induced animal models of Parkinson’s disease: 6-OHDA and MPTP. Cell Tissue Research. 318 (1), 215-224 (2004).
  19. Betarbet, R., Sherer, T. B., Greenamyre, J. T. Animal models of Parkinson’s disease. Bioessays. 24 (4), 308-318 (2002).
  20. Anichtchik, O. V., Kaslin, J., Peitsaro, N., Scheinin, M., Panula, P. Neurochemical and behavioural changes in zebrafish Danio rerio after systemic administration of 6-hydroxydopamine and 1-methyl-4-phenyl-1,2,3,6-tetrahydropyridine. Journal of Neurochemistry. 88 (2), 443-453 (2004).
  21. Fiametti, L. O., Correa, C. N., Castro, L. M. d. Peptide profile of zebrafish brain in a 6-OHDA-induced Parkinson model. Zebrafish. 18 (1), 55-65 (2021).
  22. Vijayanathan, Y., et al. 6-OHDA-lesioned adult zebrafish as a useful Parkinson’s disease model for dopaminergic neuroregeneration. Neurotoxicity Research. 32 (3), 496-508 (2017).
  23. Caldwell, L. J., et al. Regeneration of dopaminergic neurons in adult zebrafish depends on immune system activation and differs for distinct populations. Journal of Neuroscience. 39 (24), 4694-4713 (2019).
  24. Zupanc, G. K., Hinsch, K., Gage, F. H. Proliferation, migration, neuronal differentiation, and long-term survival of new cells in the adult zebrafish brain. Journal of Comparative Neurology. 488 (3), 290-319 (2005).
  25. Lawrence, C. The husbandry of zebrafish (Danio rerio): a review. Aquaculture Research. 269 (1-4), 1-20 (2007).
  26. Reed, B., Jennings, M. Guidance on the Housing and Care of Zebrafish Danio rerio. Royal Society for the Prevention of Cruelty to Animals (RSPCA). , 7-53 (2011).
  27. Avdesh, A., et al. Regular care and maintenance of a zebrafish (Danio rerio) laboratory: an introduction. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (69), e4196 (2012).
  28. Altenhofen, S., et al. Tebuconazole alters morphological, behavioral and neurochemical parameters in larvae and adult zebrafish (Danio rerio). Chemosphere. 180, 483-490 (2017).
  29. Bridi, D., Altenhofen, S., Gonzalez, J. B., Reolon, G. K., Bonan, C. D. Glyphosate and Roundup alter morphology and behavior in zebrafish. Toxicology. 392, 32-39 (2017).
  30. Wright, D., Krause, J. Repeated measures of shoaling tendency in zebrafish (Danio rerio) and other small teleost fishes. Nature Protocols. 1 (4), 1828-1831 (2006).
  31. Pienaar, I. S., Götz, J., Feany, M. B. Parkinson’s disease: insights from non-traditional model organisms. Progress in Neurobiology. 92 (4), 558-571 (2010).
  32. Becker, T., Becker, C. G. Axonal regeneration in zebrafish. Current Opinion in Neurobiology. 27, 186-191 (2014).
  33. Collymore, C., Tolwani, A., Lieggi, C., Rasmussen, S. Efficacy and safety of 5 anesthetics in adult zebrafish (Danio rerio). Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 53 (2), 198-203 (2014).
  34. Katz, E. M., et al. The stability and efficacy of tricaine methanesulfonate (MS222) solution after long-term storage. Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 59 (4), 393-400 (2020).
  35. Thiele, S. L., Warre, R., Nash, J. E. Development of a unilaterally-lesioned 6-OHDA mouse model of Parkinson’s disease. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (60), e3234 (2012).
  36. Neiffer, D. L., Stamper, M. A. Fish sedation, analgesia, anesthesia, and euthanasia: considerations, methods, and types of drugs. Institute for Laboratory Animal Research. 50 (4), 343-360 (2009).
  37. Barbosa Júnior, A., et al. . Zebrafish Protocols for Neurobehavioral Research. 66, 323-330 (2012).
  38. Cocchiaro, J. L., Rawls, J. F. Microgavage of zebrafish larvae. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (72), e4434 (2013).
  39. Stewart, A., et al. Modeling anxiety using adult zebrafish: a conceptual review. Neuropharmacology. 62 (1), 135-143 (2012).
  40. Sykes, D. J., Suriyampola, P. S., Martins, E. P. Recent experience impacts social behavior in a novel context by adult zebrafish (Danio rerio). PLOS ONE. 13 (10), 0204994 (2018).
  41. Collymore, C., Tolwani, R. J., Rasmussen, S. The behavioral effects of single housing and environmental enrichment on adult zebrafish (Danio rerio). Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 54 (3), 280-285 (2015).
  42. Grossman, L., et al. Characterization of behavioral and endocrine effects of LSD on zebrafish. Behavioural Brain Research. 214 (2), 277-284 (2010).
  43. Stewart, A., et al. Homebase behavior of zebrafish in novelty-based paradigms. Behavioural Processes. 85 (2), 198-203 (2010).
  44. Abozaid, A., Tsang, B., Gerlai, R. The effects of small but abrupt change in temperature on the behavior of larval zebrafish. Physiology and Behavior. 227, 113169 (2020).
  45. Sekhar, M., Singh, R., Bhat, A., Jain, M. Feeding in murky waters: acclimatization and landmarks improve foraging efficiency of zebrafish (Danio rerio) in turbid waters. Biology Letters. 15 (7), 1-5 (2019).
  46. Valcarce, D. G., Martínez-Vázquez, J. M., Riesco, M. F., Robles, V. Probiotics reduce anxiety-related behavior in zebrafish. Heliyon. 6 (5), 03973 (2020).
  47. Tunbak, H., Vazquez-Prada, M., Ryan, T. M., Kampff, A. R., Dreosti, E. Whole-brain mapping of socially isolated zebrafish reveals that lonely fish are not loners. eLife. 9, 55863 (2020).
  48. Shams, S., Seguin, D., Facciol, A., Chatterjee, D., Gerlai, R. Effect of social isolation on anxiety-related behaviors, cortisol, and monoamines in adult zebrafish. Behavioral Neuroscience. 131 (6), 492-504 (2017).
  49. Burghardt, G. M., et al. Perspectives – Minimizing observer bias in behavioral studies: A review and recommendations. Ethology. 118 (6), 511-517 (2012).
  50. Kalueff, A. V., et al. Towards a comprehensive catalog of zebrafish behavior 1.0 and beyond. Zebrafish. 10 (1), 70-86 (2013).
  51. Franco-Restrepo, J. E., Forero, D. A., Vargas, R. A. A review of freely available, open-source software for the automated analysis of the behavior of adult zebrafish. Zebrafish. 16 (3), 223-232 (2019).
  52. Beal, M. F. Parkinson’s disease: a model dilemma. Nature. 466 (7310), 8-10 (2010).
  53. Jha, U., Thirumalai, V. Neuromodulatory selection of motor neuron recruitment patterns in a visuomotor behavior increases speed. Current Biology. 30 (5), 788-801 (2020).
  54. Reimer, M. M., et al. Dopamine from the brain promotes spinal motor neuron generation during development and adult regeneration. Developmental Cell. 25 (5), 478-491 (2013).
check_url/63355?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Md Hamzah, N., Lim, S. M., Vijayanathan, Y., Lim, F. T., Abdul Majeed, A. B., Tan, M. P., Ramasamy, K. Locomotor Assessment of 6-Hydroxydopamine-induced Adult Zebrafish-based Parkinson’s Disease Model. J. Vis. Exp. (178), e63355, doi:10.3791/63355 (2021).

View Video