Summary

Tortricidae Zararlı Böceklerinde Kütle Yetiştirme ve Moleküler Çalışmalar

Published: March 25, 2022
doi:

Summary

Mevcut protokol, tortricid haşere böceklerinin laboratuvarlarda yetiştirilme yöntemini açıklamaktadır. Böceklerin cinsiyetini ayırt etme ve yüksek verimli dizileme için nükleik asitleri çıkarma prosedürleri, iki tortricid zararlısı kullanılarak oluşturulmuştur.

Abstract

Genellikle tortrix veya yaprak silindiri güveleri olarak bilinen Tortricidae (Lepidoptera), ciddi tarımsal kayıplara neden olan birçok tarım ve ormancılık zararlısını içerir. Bu tür haşere güvelerinin biyolojisini anlamak için, temel teknikler yüksek talep görmüştür. Burada, kütle yetiştirme, gözlemler ve moleküler çalışmalar için yöntemler iki çay tortrix, Homona magnanima ve Adoxophyes honmai (Lepidoptera: Tortricidae) kullanılarak geliştirilmiştir. Böcekler dilimlenmiş yapay diyetle kitlesel olarak yetiştirildi ve biyolojik özellikleri göz önünde bulundurularak 100’den fazla kuşak boyunca akrabalık yoluyla sürdürüldü. Böceklerin çeşitli cinsiyet dimorfizmleri vardır; bu nedenle, sonraki tahlilleri önleyen gelişim aşamalarında cinsiyeti ayırt etmek zordur. Bu çalışma, tortrisid larvalarının cinsiyetinin, kadına özgü W kromozomunu görselleştirmek için testislerin veya laktik-asetik orsin boyamasının gözlemlenmesiyle belirlenebileceğini vurgulamıştır. Ayrıca, cinsiyet belirleme yöntemlerini kullanarak, bu çalışma cinsiyet tarafından belirlenen embriyolardan nükleik asit ekstraksiyonlarını ve yüksek verimli dizilemeye doğru uygulamayı mümkün kılmıştır. Bu ipuçları diğer haşere böcekleri için geçerlidir ve daha fazla morfolojik ve genetik çalışmayı kolaylaştıracaktır.

Introduction

Lepidopteran böcekleri, tanımlanan tüm canlı türlerinin %10’undan fazlasını temsil eder1 ve bazı takson türleri bitkilerde ciddi hasara ve ciddi tarımsal kayıplara neden olur 2,3. İpekböceği Bombyx mori4,5 gibi model böcekler kullanılarak moleküler ve genetik çalışmalar geliştirilmiş olmasına rağmen, haşere böcekleri, kısmen 6,7 yetiştirme ve idare etme zorlukları nedeniyle araştırılmamıştır. Bu nedenle, bu tür model olmayan haşere böceklerinin biyolojisini anlamak için temel çalışmalar ve teknikler gereklidir.

Genellikle tortrix veya yaprak silindiri güveleri olarak bilinen Tortricidae (Lepidoptera), birçok tarım ve ormancılık zararlısını içerir8. Böcek taksonlarından, oryantal çay tortrix Homona magnanima Diakonoff ve yaz meyvesi tortrix Adoxophyes honmai Yasuda, Doğu Asya’daki çay ağaçlarına zarar verdiği bilinen ciddi polifagot zararlılardır7. İki tür, maternal sekresyonlarla kaplı ince, yumuşak ve kırılgan yumurtalardan oluşan düz ve oval ölçek benzeri yumurta kümeleri (veya yumurta kütleleri) bırakır. Her ne kadar embriyogenez aşamaları böcek gelişimi ve cinsiyet tayini için çok önemli olsa da9, yumurtaların yapıları daha fazla analizin böceklerin biyolojisini anlamasını engellemektedir. Bu tür karmaşık yumurta kütlesini ortaya çıkaran zararlılar üzerinde daha fazla çalışma için zorlukların üstesinden gelmek önemlidir.

Burada, tortrisidlerin biyolojisini anlamak için, kitle yetiştirme yöntemleri, gözlemler ve moleküler çalışmalar A. honmai ve H. magnanima kullanılarak geliştirilmiştir. İlk olarak, kütle yetiştirme yöntemleri, her iki tortricidi de 100 nesil boyunca yetiştirilerek korur. Yumurtaların birleştirilmiş ölçek benzeri yumurta kütlesinden ayrılması, daha önce sineklerde kullanılan tekniklerden geliştirilen alkali ve organik çözücüler kullanılarak tortrisidlerin embriyogenez gözlemini kolaylaştırdı10. Ek olarak, bu çalışma, laktik-asetik orsin 11 kullanılarak lepidopteran dişilerin cinsiyet kromatininin boyama yöntemlerini geliştirerek küçük embriyoların cinsiyet ayrımcılığını ortayakoymuştur. Bu yöntemler birleştirilerek, cinsiyete göre belirlenmiş embriyolardan yüksek kalitede ve miktarda nükleik asitler çıkarıldı, aksi takdirde kurulması zor olan6. Ekstrakte edilen RNA, yeni nesil dizileme için kullanıldı. Toplu olarak, burada sunulan yöntemler diğer lepidopteran böceklerine ve diğer böcek taksonlarına uygulanır.

Protocol

1. Böcek toplama ve kütle yetiştiriciliği Daha önce yayınlanmış Referanslar 8,12’yi takip eden alanlardan tortrisid böcekleri toplayın.NOT: H. magnanima ve A. honmai larvaları hasarlı çay yapraklarından toplanır (Şekil 1A); yetişkinler 4 W taşınabilir UV ışığı kullanılarak çekilir (365 nm dalga boyu, bakınız Malzeme Tablosu, <strong class="x…

Representative Results

Ana hatların kurulması ve bakımlarıTarlada toplanan larvaların yaşayabilirliği, tarla konumuna, mevsimlere ve yetiştirme koşullarına farklı şekilde atfedilir (örneğin, Arai ve ark.12’de gösterildiği gibi, Tayvan, Taoyuan’daki canlılığın% 90’ı). Çiftlerin yaklaşık% 30-50’si her zamanki gibi yeni nesli üretecektir. H. magnanima ve A. honmai için, matrilinler 100’den fazla kuşak boyunca akrabalık yoluyla korunmuştur. <p class="jo…

Discussion

Tortricid çeşitli tarım ve ormancılık zararlılarından oluşur; Bu çalışmada tortriksin nesiller boyunca arka plana çıkarılması, böceklerin embriyogenezini ve cinsiyetinin gözlemlenmesi ve olgunlaşmış embriyolar kullanılarak moleküler analiz yapılması için yöntemler sunulmuştur.

Haşere böcek çalışmasının önündeki engellerden biri, yetiştirme yöntemleri oluşturmaktır. Özellikle akrabalık bazen türlerin uygunluğunu olumsuz yönde etkiler. Akrabalık depr…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Yazarlar, Japonya Bilimi Geliştirme Derneği (JSPS) Genç Bilim İnsanları için Araştırma Bursu’nun desteğini kabul etmek istemektedir [Hibe Numarası 19J13123 ve 21J00895].

Materials

1/2 ounce cup FP CHUPA CP070009 insect rearing; https://www.askul.co.jp/p/6010417/
1/2 ounce cup lid FP CHUPA CP070011 insect rearing; https://www.askul.co.jp/p/6010434/?int_id=recom_DtTogether
99.7% acetic acid FUJIFILM Wako Chemicals Co., Osaka, Japan 36289 fixation; https://labchem-wako.fujifilm.com/jp/product/detail/W01ALF036289.html
Agilent 2100 Bioanalyzer Agilent Technologies not shown Nucleic acids quantification; https://www.agilent.com/en/product/automated-electrophoresis/bioanalyzer-systems/bioanalyzer-instrument
Agilent RNA6000 nano kit Agilent Technologies 5067-1511 Nucleic acids quantification; https://www.agilent.com/cs/library/usermanuals/Public/G2938-90034_RNA6000Nano_KG
.pdf
benzalkonium chloride solution Nihon Pharmaceutical Co., Ltd No.4987123116046 Sterilization; https://www.nihon-pharm.co.jp/consumer/products/disinfection.html
Cotton AOUME 8-1611-02 insect rearing; https://item.rakuten.co.jp/athlete-med/10006937/?scid=af_pc_etc&sc2id=af_113_0_1
DAPI solution Dojindo, Tokyo, Japan 340-07971 stainings; https://www.dojindo.co.jp/products/D523/
Disodium Hydrogenphosphate FUJIFILM Wako Chemicals Co. 4.98748E+12 Na2HPO4; https://labchem-wako.fujifilm.com/jp/product/detail/W01W0119-0286.html
dsDNA HS quantification kit Invitrogen Q33231 Nucleic acids quantification; https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/Q33230?SID=srch-srp-Q33230
Econospin RNA II column Epoch Life Science Inc. EP-11201 RNA extraction; http://www.epochlifescience.com/Product/SpinColumn/minispin.aspx
Ethanol FUJIFILM Wako Chemicals Co., Osaka, Japan 4.98748E+12 fixation; https://labchem-wako.fujifilm.com/jp/product/detail/W01W0105-0045.html
Ethylenediamine-N,N,N',N'-tetraacetic Acid Tetrasodium Salt Tetrahydrate (4NA) FUJIFILM Wako Chemicals Co. 4.98748E+12 Cell lysis buffer (EDTA); https://labchem-wako.fujifilm.com/jp/product/detail/W01T02N003.html
Glassine paper HEIKO 2100010 insect rearing; https://www.monotaro.com/p/8927/0964/?utm_id=g_pla&
utm_medium=cpc&utm_source=
Adw
heat block WSC-2620 PowerBLOCK ATTO, Tokyo, Japan 4002620 incubation; https://www.attoeng.site/
heptane FUJIFILM Wako Chemicals Co., Osaka, Japan 4.98748E+12 fixation; https://labchem-wako.fujifilm.com/jp/product/detail/W01W0108-0015.html
INSECTA LF Nosan Co., Ltd not shown Artificial diet; https://www.nosan.co.jp/business/fodder/ist.htm
ISOGENII Nippon Gene 311-07361 RNA extraction; https://www.nippongene.com/siyaku/product/extraction/isogen2/isogen2.html
isopropanol FUJIFILM Wako Chemicals Co. 4.98748E+12 nucleic acids extraction; https://labchem-wako.fujifilm.com/jp/product/detail/W01W0232-0004.html
Lactic acid FUJIFILM Wako Chemicals Co. 4.98748E+12 Stainings; https://labchem-wako.fujifilm.com/jp/product/detail/W01W0112-0005.html
methanol FUJIFILM Wako Chemicals Co., Osaka, Japan 4.98748E+12 fixation; https://labchem-wako.fujifilm.com/jp/product/detail/W01W0113-0182.html
MSV-3500 vortex Biosan BS-010210-TAK Voltex mixer; https://biosan.lv/products/-msv-3500-multi-speed-vortex/
Nano Photometer NP 80 Implen not shown Nucleic acids quantification; https://www.implen.de/product-page/implen-nanophotometer-np80-microvolume-cuvette-spectrophotometer/tech-specs/
Natural pack wide Inomata chemical 1859 insect rearing; https://www.monotaro.com/g/03035766/?t.q=%E3%83%8A%E3%83%81%E3%83%A5%E3%
83%A9%E3%83%AB%E3%83%91%
E3%83%83%E3%82%AF%E3%83%
AF%E3%82%A4%E3%83%89
NEBNext Ultra II RNA Library Prep Kit for Illumina New England BioLabs E7770S Library preparation; https://www.nebj.jp/products/detail/2039
orcein FUJIFILM Wako Chemicals Co. 4.98748E+12 Stainings; https://labchem-wako.fujifilm.com/jp/product/detail/W01W0115-0094.html
Paraformaldehyde FUJIFILM Wako Chemicals Co. 160-16061 fixation; https://labchem-wako.fujifilm.com/jp/product/detail/W01W0116-1606.html
Polyoxyethylene(20) Sorbitan Monolaurate FUJIFILM Wako Chemicals Co. 4.98748E+12 Tween-20; https://labchem-wako.fujifilm.com/jp/product/detail/W01W0116-2121.html
Portable UV Black Light (4W, 365nm wavelength) Southwalker Co., Ltd., Kanagawa, Japan not shown Insect collection; http://www.southwalker.com/shopping/?pid=1364614057-467328
Potassium Chloride FUJIFILM Wako Chemicals Co. 4.98748E+12 KCl; https://labchem-wako.fujifilm.com/jp/product/detail/W01W0116-0354.html
Potassium Dihydrogen Phosphate FUJIFILM Wako Chemicals Co. 4.98748E+12 KH2PO4; https://labchem-wako.fujifilm.com/jp/product/detail/W01W0116-0424.html
ProLong Diamond Antifade Mountant Invitrogen, MA, USA P36965 antifade; https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/P36965
Proteinase K Solution Merck 71049-4CN DNA extraction; https://www.merckmillipore.com/JP/ja/product/Proteinase-K-Solution-600-mAU-ml,EMD_BIO-71049
protein precipitation solution Qiagen 158912 DNA extraction; https://www.qiagen.com/us/products/discovery-and-translational-research/lab-essentials/buffers-reagents/puregene-accessories/?cmpid=PC_DA_NON_
BIOCOMPARE_ProductListing_
0121_RD_MarketPlace_ProductC
Qubit V4 Invitrogen Q33238 Nucleic acids quantification; https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/Q33238
rifampicin FUJIFILM Wako Chemicals Co., Osaka, Japan 4.98748E+12 Sterilization; https://labchem-wako.fujifilm.com/jp/product/detail/W01W0118-0100.html
RNA HS quantification kit Invitrogen Q32855 Nucleic acids quantification; https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/Q32852
RNase solution Nippon Gene 313-01461 RNA extraction; https://www.nippongene.com/siyaku/product/modifying-enzymes/rnase-a/rnase-s.html
Silk Mate 2S Nosan Co., Ltd not shown Artificial diet; https://www.nosan.co.jp/business/fodder/ist.htm
Sodium Chloride FUJIFILM Wako Chemicals Co. 4.98748E+12 NaCl; https://labchem-wako.fujifilm.com/jp/product/detail/W01W0119-0166.html
Sodium Dodecyl Sulfate FUJIFILM Wako Chemicals Co. 4.98748E+12 Cell lysis buffer (SDS); https://labchem-wako.fujifilm.com/jp/product/detail/W01W0119-1398.html
sodium hypochlorite aqueous solution FUJIFILM Wako Chemicals Co., Osaka, Japan 4.98748E+12 egg separation; https://labchem-wako.fujifilm.com/jp/product/detail/W01W0119-0220.html
Tetracycline Hydrochloride FUJIFILM Wako Chemicals Co., Osaka, Japan 4.98748E+12 Sterilization; https://labchem-wako.fujifilm.com/jp/product/detail/W01W0120-1656.html
Tris-HCl FUJIFILM Wako Chemicals Co. 4.98748E+12 Cell lysis buffer; https://labchem-wako.fujifilm.com/jp/product/detail/W01W0120-1536.html
ultra-pure distilled water Invitrogen 10977023 RNA extraction; https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/10977015

References

  1. Gaston, K. J. The magnitude of global insect species richness. Conservation Biology. 5 (3), 283-296 (1991).
  2. Pogue, M. A world revision of the genus Spodoptera Guenée (Lepidoptera: Noctuidae). Memoirs of the American Entomological Society. 43, 1 (2002).
  3. Matsuura, H., Naito, A. Studies on the cold-hardiness and overwintering of Spodoptera litura F. (Lepidoptera: Noctuidae): VI. Possible overwintering areas predicted from meteorological data in Japan. Applied Entomology and Zoology. 32 (1), 167-177 (1997).
  4. Mita, K., et al. The construction of an EST database for Bombyx mori and its application. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 100 (24), 14121-14126 (2003).
  5. Kawamoto, M., et al. High-quality genome assembly of the silkworm, Bombyx mori. Insect Biochemistry and Molecular Biology. 107, 53-62 (2019).
  6. Fukui, T., et al. In vivo masculinizing function of the Ostrinia furnacalis Masculinizer gene. Biochemical and Biophysical Research Communications. 503 (3), 1768-1772 (2018).
  7. Arai, H., Ishitsubo, Y., Nakai, M., Inoue, M. N. A simple method to disperse eggs from lepidopteran scale-like egg masses and to observe embryogenesis. Entomological Science. 25 (1), 12497 (2022).
  8. vander Geest, L. P., Evenhuis, H. H. . Tortricid pests: their biology, natural enemies and control. , (1991).
  9. Kiuchi, T., et al. A single female-specific piRNA is the primary determiner of sex in the silkworm. Nature. 509 (7502), 633-636 (2014).
  10. Rand, M. D., Kearney, A. L., Dao, J., Clason, T. Permeabilization of Drosophila embryos for introduction of small molecules. Insect Biochemistry and Molecular Biology. 40 (11), 792-804 (2010).
  11. Kageyama, D., Traut, W. Opposite sex-specific effects of Wolbachia and interference with the sex determination of its host Ostrinia scapulalis. Proceedings of the Royal Society B. 271 (1536), 251-258 (2004).
  12. Arai, H., Lin, S. R., Nakai, M., Kunimi, Y., Inoue, M. N. Closely related male-killing and nonmale-killing Wolbachia strains in the oriental tea tortrix Homona magnanima. Microbial Ecology. 79 (4), 1011-1020 (2020).
  13. Schalamun, M., et al. Harnessing the MinION: An example of how to establish long-read sequencing in a laboratory using challenging plant tissue from Eucalyptus pauciflora. Molecular Ecology Resources. 19 (1), 77-89 (2019).
  14. Winnebeck, E. C., Millar, C. D., Warman, G. R. Why does insect RNA look degraded. Journal of Insect Science. 10 (1), 159 (2010).
  15. Ivey, C. T., Carr, D. E., Eubanks, M. D. Effects of inbreeding in Mimulus guttatus on tolerance to herbivory in natural environments. Ecology. 85 (2), 567-574 (2004).
  16. Saccheri, I., et al. Inbreeding and extinction in a butterfly metapopulation. Nature. 392 (6675), 491-494 (1998).
  17. Crnokrak, P., Roff, D. A. Inbreeding depression in the wild. Heredity. 83 (3), 260-270 (1999).
  18. Keller, L. F., Waller, D. M. Inbreeding effects in wild populations. Trends in Ecology & Evolution. 17 (5), 230-241 (2002).
  19. Margaritis, L. H., Kafatos, F. C., Petri, W. H. The eggshell of Drosophila melanogaster. I. Fine structure of the layers and regions of the wild-type eggshell. Journal of Cell Science. 43 (1), 1-35 (1980).
  20. Sugimoto, T. N., Ishikawa, Y. A male-killing Wolbachia carries a feminizing factor and is associated with degradation of the sex-determining system of its host. Biology Letters. 8 (3), 412-415 (2012).
check_url/63737?article_type=t&slug=mass-rearing-and-molecular-studies-in-tortricidae-pest-insects

Play Video

Cite This Article
Arai, H., Ishitsubo, Y., Nakai, M., Inoue, M. N. Mass-Rearing and Molecular Studies in Tortricidae Pest Insects. J. Vis. Exp. (181), e63737, doi:10.3791/63737 (2022).

View Video