Summary

Mikrofluidisk enhet for separasjon av ikke-metastatiske (MCF-7) og ikke-tumor (MCF-10A) brystkreftceller ved bruk av AC-dielektroforese

Published: August 11, 2022
doi:

Summary

Brystkreftceller utviser forskjellige dielektriske egenskaper sammenlignet med ikke-tumorbrystepitelceller. Det har blitt antatt at, basert på denne forskjellen i dielektriske egenskaper, kan de to populasjonene skilles for immunterapiformål. For å støtte dette modellerer vi en mikrofluidisk enhet for å sortere MCF-7- og MCF-10A-celler.

Abstract

Dielektroforetiske enheter er i stand til å oppdage og manipulere kreftceller på en etikettfri, kostnadseffektiv, robust og nøyaktig måte ved å bruke prinsippet om polarisering av kreftcellene i prøvevolumet ved å bruke et eksternt elektrisk felt. Denne artikkelen demonstrerer hvordan en mikrofluidisk plattform kan utnyttes for kontinuerlig sortering av ikke-metastatiske brystkreftceller (MCF-7) og ikke-tumorbrystepitelceller (MCF-10A) ved bruk av hydrodynamisk dielektroforese (HDEP) fra celleblandingen. Ved å generere et elektrisk felt mellom to elektroder plassert side om side med et mikronstørrelsesgap mellom dem i en HDEP mikrofluidisk chip, kan ikke-tumorbrystepitelceller (MCF-10A) skyves bort, og viser negativ DEP inne i hovedkanalen, mens de ikke-metastatiske brystkreftcellene følger kurset upåvirket når de suspenderes i cellemedium på grunn av ledningsevne høyere enn membranledningsevnen. For å demonstrere dette konseptet ble simuleringer utført for forskjellige verdier av mediumkonduktivitet, og sortering av celler ble studert. En parametrisk studie ble utført, og en egnet celleblandingsledningsevne ble funnet å være 0,4 S / m. Ved å holde mediumkonduktiviteten fast ble det etablert en tilstrekkelig vekselstrømfrekvens på 0,8 MHz, noe som ga maksimal sorteringseffektivitet ved å variere den elektriske feltfrekvensen. Ved bruk av den demonstrerte metoden, etter å ha valgt riktig celleblanding suspensjonsmedium ledningsevne og frekvens av den påførte vekselstrøm, kan maksimal sorteringseffektivitet oppnås.

Introduction

En ondartet svulst som utvikler seg i og rundt brystvevet er en hyppig årsak til brystkreft hos kvinner over hele verden, noe som forårsaker et kritisk helseproblem1. Brysttumorer før metastase kan behandles gjennom kirurgi hvis de oppdages på et tidlig stadium, men hvis de ignoreres, kan de få alvorlige konsekvenser for pasientens liv ved å spre seg til lungene, hjernen og beinene. Behandlingene som tilbys på senere stadier, for eksempel stråling og kjemisk baserte terapier, har alvorlige bivirkninger2. Nylige studier har rapportert at en tidlig diagnose av brystkreft reduserer dødeligheten med 60%3. Derfor er det viktig å jobbe mot personlige tidlige deteksjonsmetoder. For dette formål har forskere som arbeider innen ulike fagområder og teknologi brukt mikrofluidikk til å utvikle enheter for tidlig diagnose av brystkreft4. Disse metodene inkluderer mikrokromatografi av celleaffinitet, magnetisk aktiverte mikrocellesorterere, størrelsesbasert kreftcellefangst og separasjon, og on-chip dielektroforese (DEP)5,6. Disse mikrofluidiske teknikkene som er rapportert i litteraturen, muliggjør presis cellemanipulering, sanntidsovervåking og sortering av veldefinerte prøver, som fungerer som et mellomtrinn i mange diagnostiske og terapeutiske anvendelser5. Integrasjonen av disse sorteringsmekanismene med mikrofluidikk gir fleksibel og pålitelig manipulering av målcellene 7,8,9,10. En av hovedfordelene ved en slik integrasjon er evnen til å arbeide med væskeprøver i nano til mikroliter volumer og også å kunne manipulere de elektriske egenskapene til prøvevæsken. Ved å justere ledningsevnen til suspensjonsvæsken inne i mikrofluidiske enheter, kan de biologiske cellene sorteres basert på deres størrelser og forskjeller i deres dielektriske egenskaper11,12.

Blant disse teknikkene er on-chip DEP ofte foretrukket, da det er en etikettfri cellesorteringsteknikk som utnytter de elektriske egenskapene til de biologiske prøvene. DEP har blitt rapportert å manipulere bio-prøver som DNA 13, RNA14, proteiner 15, bakterier 16, blodceller 17, sirkulerende tumorceller (CTCs) 18, og stamceller 19. Mikrofluidiske enheter som benytter DEP for sortering av biologiske prøver er rapportert mye i litteratur20. Reservoarbaserte DEP mikrofluidiske (rDEP) enheter for sortering av levedyktige og ikke-levedyktige gjærceller er rapportert som beskytter cellene mot bivirkninger av elektrokjemiske reaksjoner21,22. Piacentini og medarbeidere rapporterte en castellated mikrofluidisk cellesorterer som separerte røde blodlegemer fra blodplater med en effektivitet på 97%23. On-chip DEP-enheter med asymmetriske åpninger og innebygde elektroder har også blitt rapportert å sortere levedyktige og ikke-levedyktige celler24. Valero og Demierre og medarbeidere modifiserte den kastellerte mikrofluidiske cellesortereren ved å introdusere to matriser av mikroelektroder på begge sider av kanalen25,26. Dette bidro til å fokusere cellene i midten av kanalen. Zeynep og medarbeidere presenterte en DEP-basert mikrofluidisk enhet for å separere og konsentrere MCF7 brystkreftceller fra leukocytter27. De rapporterte en effektivitet ved å trekke ut MCF7-celler fra leukocytter mellom 74% -98% med en frekvens på 1 MHz og en påført spenning fra 10-12 Vpp. Supplerende tabell 1 representerer en kvalitativ og kvantitativ sammenligning mellom de DEP-baserte mikrofluidiske sorteringsenhetene basert på deres design, elektrodekonfigurasjon og driftsparametere (anvendt frekvens og spenning).

Mer nylig har forskere forsøkt å måle forskjellene i den dielektriske oppførselen til brystepitelceller (MCF-10A) og ikke-metastatiske brystkreftceller (MCF-7) inne i en mikrofluidisk chip28,29. Jithin og medarbeidere karakteriserte også de dielektriske responsene til forskjellige kreftcellelinjer ved hjelp av en åpen koaksial sondeteknikk med frekvenser mellom 200 MHz og 13,6 GHz30. Disse forskjellene i de dielektriske responsene til MCF-7 og MCF-10A cellelinjer kan utnyttes for å skille dem i kjøretid og kan føre til utvikling av personlige diagnoseenheter i tidlig fase.

I denne artikkelen simulerer vi kontrollert sortering av ikke-metastatiske brystkreftceller (MCF-7) og ikke-tumorbrystepitelceller (MCF-10A) ved hjelp av AC-dielektroforese. Endringsområdet i det elektriske feltet påvirker sorteringen inne i mikrofluidisk chip. Den foreslåtte teknikken er enkel å implementere og muliggjør integrering av sorteringsteknikken i forskjellige mikrofluidiske chipoppsett. Computational fluid dynamics (CFD) simuleringer ble utført for å studere separasjonen av ikke-metastatiske brystkreftceller og ikke-tumor brystepitelceller ved å variere ledningsevnen til væskemediet der cellene ble suspendert. I disse simuleringene er det vist at ved å holde ledningsevnen konstant og ved å endre den påførte frekvensen, kan separasjonen av kreftceller og friske celler kontrolleres.

Protocol

MERK: Protokollen her bruker COMSOL, en multifysikksimuleringsprogramvare, for å simulere kontrollert sortering av ikke-metastatiske brystkreftceller (MCF-7) og ikke-tumorbrystepitelceller (MCF-10A) ved hjelp av AC-dielektroforese. 1. Chipdesign og parametervalg Åpne multifysikkprogramvare og velg Tom modell. Høyreklikk på de globale definisjonene og velg Parametere. Importer parameterne gitt i tabell 1</…

Representative Results

Undersøke de optimale driftsparametrene for effektiv DEP-basert sortering av ikke-metastatisk brystkreft (MCF-7) og ikke-tumor brystepitel (MCF-10A) cellerFor å oppnå en vellykket separasjon av ikke-metastatisk brystkreft (MCF-7) og ikke-tumor brystepitel (MCF-10A) celler med divergerende dielektriske egenskaper når de gjennomgår dielektroforese, bør deres K-faktorer være forskjellige ved å holde den påførte frekvensen fast37,38. Kv…

Discussion

Mikrofluidiske enheter har blitt rapportert tidligere for cellekultur, fangst og sortering 47,52,53. Fremstillingen av disse enhetene i renrommet er en kostbar prosess, og det er viktig å kvantifisere utgangen og effektiviteten til en foreslått mikrofluidisk enhet gjennom CFD-simuleringer. Denne studien presenterer design og simuleringer av en AC-dielektroforetisk mikrofluidisk enhet for kontinuerlig separasjon av ikke-metasta…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denne studien ble støttet av Higher Education Commission of Pakistan.

Materials

COMSOL COMSOL multiphysics simulation software

References

  1. Liang, L., et al. Microfluidic-based cancer cell separation using active and passive mechanisms. Microfluidics and Nanofluidics. 24 (4), 26 (2020).
  2. Damiati, S., Kompella, U. B., Damiati, S. A., Kodzius, R. Microfluidic devices for drug delivery systems and drug screening. Genes. 9 (2), 103 (2018).
  3. Pashayan, N., et al. Personalized early detection and prevention of breast cancer: ENVISION consensus statement. Nature Reviews Clinical Oncology. 17 (11), 687-705 (2020).
  4. Panesar, S., Neethirajan, S. Microfluidics: Rapid diagnosis for breast cancer. Nano-micro Letters. 8 (3), 204-220 (2016).
  5. Chen, J., Li, J., Sun, Y. Microfluidic approaches for cancer cell detection, characterization and separation. Lab on a Chip. 12 (10), 1753-1767 (2012).
  6. Beech, J. P., Holm, S. H., Adolfsson, K., Tegenfeldt, J. O. Sorting cells by size, shape and deformability. Lab on a Chip. 12 (6), 1048-1051 (2012).
  7. Kang, Y., Li, D. Electrokinetic motion of particles and cells in microchannels. Microfluidics and Nanofluidics. 6 (4), 431-460 (2009).
  8. Schmid, L., Weitz, D. A., Franke, T. Acoustic microfluidic fluorescence-activated cell sorter. Lab on a Chip. 14 (19), 3710-3718 (2014).
  9. Yu, B. Y., Elbuken, C., Shen, C., Huissoon, J. P., Ren, C. L. An integrated microfluidic device for the sorting of yeast cells using image processing. Scientific Reports. 8, 3550 (2014).
  10. Asiaei, S., Darvishi, V., Davari, M. H., Zohrevandi, D., Moghadasi, H. Thermophoretic isolation of circulating tumor cells, numerical simulation and design of a microfluidic chip. Journal of Thermal Analysis and Calorimetry. 137 (3), 831-839 (2019).
  11. Song, Y., Li, M., Pan, X., Wang, Q., Li, D. Size-based cell sorting with a resistive pulse sensor and an electromagnetic pump in a microfluidic chip. Electrophoresis. 36 (3), 398-404 (2014).
  12. Giraud, G., et al. Dielectrophoretic manipulation of ribosomal RNA. Biomicrofluidics. 5 (2), 024116 (2011).
  13. Valero, A., Braschler, T., Demierre, N., Renaud, P. A miniaturized continuous dielectrophoretic cell sorter and its applications. Biomicrofluidics. 4 (2), 022807 (2010).
  14. Allahrabbi, N., Chia, Y. S. M., Saifullah, M. S. M., Lim, K. M., Lanry Yung, L. Y. A hybrid dielectrophoretic system for trapping of microorganisms from water. Biomicrofluidics. 9 (3), 034110 (2015).
  15. Vykoukal, D. M., Gascoyne, P. R. C., Vykoukal, J. Dielectric characterization of complete mononuclear and polymorphonuclear blood cell subpopulations for label-free discrimination. Integrative Biology: Quantitative Biosciences from Nano to Macro. 1 (7), 477-484 (2009).
  16. Shim, S., et al. Antibody-independent isolation of circulating tumor cells by continuous-flow dielectrophoresis. Biomicrofluidics. 7 (1), 11807 (2013).
  17. Jeon, H. J., Lee, H., Yoon, D. S., Kim, B. M. Dielectrophoretic force measurement of red blood cells exposed to oxidative stress using optical tweezers and a microfluidic chip. Biomedical Engineering Letters. 7 (4), 317-323 (2017).
  18. Song, H., et al. Continuous-flow sorting of stem cells and differentiation products based on dielectrophoresis. Lab on a Chip. 15 (5), 1320-1328 (2015).
  19. Tsai, S. L., Chiang, Y., Wang, M. H., Chen, M. K., Jang, L. S. Battery-powered portable instrument system for single-cell trapping, impedance measurements, and modeling analyses. Electrophoresis. 35 (16), 2392-2400 (2014).
  20. Chan, J. Y., et al. Dielectrophoresis-based microfluidic platforms for cancer diagnostics. Biomicrofluidics. 12 (1), 011503 (2018).
  21. Patel, S., et al. Microfluidic separation of live and dead yeast cells using reservoir-based dielectrophoresis. Biomicrofluidics. 6 (3), 34102 (2012).
  22. Yildizhan, Y., Erdem, N., Islam, M., Martinez-Duarte, R., Elitas, M. Dielectrophoretic separation of live and dead monocytes using 3D carbon-electrodes. Sensors. 17 (11), 2691-2704 (2017).
  23. Piacentini, N., Mernier, G., Tornay, R., Renaud, P. Separation of platelets from other blood cells in continuous-flow by dielectrophoresis field-flow-fractionation. Biomicrofluidics. 5 (3), 34122 (2011).
  24. Zhao, K., Duncker, B. P., Li, D. Continuous cell characterization and separation by microfluidic alternating current dielectrophoresis. Analytical Chemistry. 91 (9), 6304-6314 (2019).
  25. Valero, A., et al. Tracking and synchronization of the yeast cell cycle using dielectrophoretic opacity. Lab on a Chip. 11 (10), 1754-1760 (2011).
  26. Demierre, N., Braschler, T., Muller, R., Renaud, P. Focusing and continuous separation Of cells in a microfluidic device using lateral dielectrophoresis. International Solid-State Sensors, Actuators and Microsystems Conference. 430 (98), 1777-1780 (2007).
  27. Arslan, Z. C., Yalçın, Y. D., Külah, H. Label-free enrichment of MCF7 breast cancer cells from leukocytes using continuous flow dielectrophoresis. Electrophoresis. 43 (13-14), 1531-1544 (2022).
  28. Turcan, I., Olariu, M. A. Dielectrophoretic manipulation of cancer cells and their electrical characterization. ACS Combinatorial Science. 22 (11), 554-578 (2020).
  29. Park, J., et al. Sequential cell-processing system by integrating hydrodynamic purification and dielectrophoretic trapping for analyses of suspended cancer cells. Micromachines. 11 (1), 47 (2020).
  30. Hussein, M., et al. Breast cancer cells exhibits specific dielectric signature in vitro using the open-ended coaxial probe technique from 200 MHz to 13.6 GHz. Scientific Reports. 9, 4681 (2019).
  31. Fornes-Leal, A., Garcia-Pardo, C., Frasson, M., Pons Beltrán, V., Cardona, N. Dielectric characterization of healthy and malignant colon tissues in the 0.5-18 GHz frequency band. Physics in Medicine and Biology. 61 (20), 7334-7346 (2016).
  32. Çetin, B., Li, D. Dielectrophoresis in microfluidics technology. Electrophoresis. 32 (18), 2410-2427 (2011).
  33. Khan, S., Khulief, Y. A., Al-Shuhail, A. A. Effects of reservoir size and boundary conditions on pore-pressure buildup and fault reactivation during CO2 injection in deep geological reservoirs. Environmental Earth Sciences. 79, 294 (2020).
  34. Adams, T. N. G., Turner, P. A., Janorkar, A. V., Zhao, F., Minerick, A. R. Characterizing the dielectric properties of human mesenchymal stem cellsand the effects of charged elastin-like polypeptide copolymer treatment. Biomicrofluidics. 8 (5), 054109 (2014).
  35. Lo, Y. J., et al. Measurement of the Clausius-Mossotti factor of generalized dielectrophoresis. Applied Physics Letters. 104, 083701 (2014).
  36. Lo, Y. J., Lei, U. Measurement of the real part of the Clausius-Mossotti factor of dielectrophoresis for Brownian particles. Electrophoresis. 41 (1), 137-147 (2020).
  37. Ohta, A. T., et al. Optically controlled cell discrimination and trapping using optoelectronic Tweezers. IEEE Journal of Selected Topics in Quantum Electronics. 13 (2), 235-242 (2007).
  38. Sun, T., Morgan, H. Single-cell microfluidic Impedance cytometry. Microfluidics and Nanofluidics. 8 (4), 423-443 (2010).
  39. Weng, P. Y., et al. Size-dependent dielectrophoretic cross-over frequency of spherical particles. Biomicrofluidics. 10 (1), 1909-1921 (2016).
  40. Lu, Y. W., Sun, C., Kao, Y. C., Hung, C. L., Juang, J. Y. Dielectrophoretic cross-over frequency of single particles: Quantifying the effect of surface functional groups and electrohydrodynamic flow drag force. Nanomaterials. 10 (7), 1364 (2020).
  41. Henslee, E. A., Sano, M. B., Rojas, A. D., Schmelz, E. M., Davalos, R. V. Selective concentration of human cancer cells using contactless dielectrophoresis. Electrophoresis. 32 (18), 2523-2529 (2011).
  42. Chan, J. Y., et al. Dielectrophoresis-based microfluidic platforms for cancer diagnostics. Biomicrofluidics. 12 (1), 11503-11525 (2018).
  43. Gascoyne, P. R. C., Shim, S. Isolation of circulating tumor cells by dielectrophoresis. Cancers. 6 (1), 545-579 (2014).
  44. Liang, W., et al. Determination of dielectric properties of cells using ac electrokinetic-based microfluidic platform. Micromachines. 11 (5), 513-537 (2020).
  45. Frusawa, H., et al. Frequency-modulated wave dielectrophoresis of vesicles and cells periodic U-turns at the crossover frequency. Nanoscale Research Letters. 13 (169), 2583-2589 (2018).
  46. Wei, M. T., Junio, J., Ou-Yang, D. H. Direct measurements of the frequency-dependent dielectrophoresis force. Biomicrofluidics. 3 (1), 12003 (2009).
  47. Mustafa, A., Pedone, E., Marucci, L., Moschou, D., Lorenzo, M. D. A flow-through microfluidic chip for continuous dielectrophoretic separation of viable and non-viable human T-cells. Electrophoresis. 43 (3), 501-508 (2021).
  48. Wang, L., et al. Dual frequency dielectrophoresis with interdigitated sidewall electrodes for microfluidic flow-through separation of beads and cells. Electrophoresis. 30 (5), 782-791 (2021).
  49. Alazzam, A., Mathew, B., Alhammadi, F. Novel microfluidic device for the continuous separation of cancer cells using dielectrophoresis. Journal of Separation Science. 40 (5), 1193-1200 (2017).
  50. Yang, L., Banada, P. P., Bhunia, A. K., Bashir, R. Effects of dielectrophoresis on growth viability and immuno-reactivity of listeria monocytogenes. Journal of Biological Engineering. 2, 6 (2008).
  51. Matbaechi, H., Soltani, P., Hölzel, R., Wenger, C. Dielectrophoretic immobilization of yeast cells using CMOS integrated microfluidics. Micromachines. 11 (5), 501-518 (2020).
  52. Mustafa, A., Pedone, E., La Regina, A., Erten, A. A., Marucci, L. Development of a single layer microfluidic device for dynamic stimulation, culture and imaging of mammalian cells. bioRxiv. , (2022).
  53. Mustafa, A., et al. Enhanced dissolution of liquid microdroplets in the extensional creeping flow of a hydrodynamic trap. Langmuir. 32 (37), 9460-9467 (2016).
  54. Chang, H. F., Chou, S. E., Cheng, J. Y. Electric-field-induced neural precursor cell differentiation in microfluidic devices. Journal of Visualized Experiments. (170), e61917 (2021).
check_url/63850?article_type=t

Play Video

Cite This Article
ur Rehman, A., Zabibah, R. S., Kharratian, S., Mustafa, A. Microfluidic Device for the Separation of Non-Metastatic (MCF-7) and Non-Tumor (MCF-10A) Breast Cancer Cells Using AC Dielectrophoresis. J. Vis. Exp. (186), e63850, doi:10.3791/63850 (2022).

View Video