Summary

Högupplöst hjärtpositronemissionstomografi/datortomografi för smådjur

Published: December 16, 2022
doi:

Summary

Här presenterar vi ett experimentellt avbildningsprotokoll för kvantifiering av hjärtfunktion och morfologi med hjälp av högupplöst positronemissionstomografi/datortomografi för små djur. Både möss och råttor beaktas och diskuterar de olika kraven på datortomografikontrastmedel för de två arterna.

Abstract

Positronemissionstomografi (PET) och datortomografi (CT) är bland de mest använda diagnostiska avbildningsteknikerna, och båda tjänar till att förstå hjärtfunktion och metabolism. I preklinisk forskning används dedikerade skannrar med hög känslighet och hög spatio-temporal upplösning, utformade för att klara de krävande tekniska kraven som orsakas av den lilla hjärtstorleken och mycket höga hjärtfrekvenser hos möss och råttor. I denna uppsats beskrivs ett bimodalt hjärt-PET / CT-avbildningsprotokoll för experimentella mus- och / eller råttmodeller av hjärtsjukdomar, från djurberedning och bildförvärv och rekonstruktion till bildbehandling och visualisering.

I synnerhet möjliggör den 18 F-märkta fluorodeoxyglukosen ([18F] FDG) -PET-skanningen mätning och visualisering av glukosmetabolism i de olika segmenten av vänster ventrikel (LV). Polarkartor är praktiska verktyg för att visa denna information. CT-delen består av en tidsupplöst 3D-rekonstruktion av hela hjärtat (4D-CT) med hjälp av retrospektiv gating utan elektrokardiografi (EKG) -ledningar, vilket möjliggör morfofunktionell utvärdering av LV och efterföljande kvantifiering av de viktigaste hjärtfunktionsparametrarna, såsom utstötningsfraktion (EF) och slagvolym (SV). Med hjälp av en integrerad PET / CT-skanner kan detta protokoll utföras inom samma anestesiinduktion utan att djuret behöver placeras mellan olika skannrar. Därför kan PET/CT ses som ett omfattande verktyg för morfofunktionell och metabolisk utvärdering av hjärtat i flera smådjursmodeller av hjärtsjukdomar.

Introduction

Smådjursmodeller är oerhört viktiga för att öka förståelsen av hjärt- och kärlsjukdomar 1,2. Icke-invasiva, diagnostiska bildverktyg har revolutionerat hur vi ser på hjärtfunktionen under de senaste decennierna, både i kliniska och prekliniska miljöer. När det gäller smådjursmodeller av hjärtsjukdomar har specifika avbildningsverktyg utvecklats med mycket hög spatiotemporal upplösning. Således kan sådana instrument matcha behovet av exakt kvantifiering av relevanta metaboliska och kinetiska myokardiella parametrar på de mycket små och mycket snabba hjärtan hos möss och råttor i specifika sjukdomsmodeller, såsom hjärtsvikt (HF)3 eller hjärtinfarkt (MI)4. Flera metoder finns tillgängliga för detta ändamål, var och en med sina egna styrkor och svagheter. Ultraljud (USA) avbildning är den mest använda modaliteten på grund av dess stora flexibilitet, mycket höga tidsupplösning och relativt låga kostnader. Antagandet av amerikansk hjärtavbildning hos små djur har ökat avsevärt sedan tillkomsten av system som använder sonder med ultrahög frekvens5,6, med rumsliga upplösningar under 50 μm.

Bland de största nackdelarna med USA för helt 3D-hjärtavbildning är behovet av linjära skanningar längs hjärtaxeln genom att montera sonden på ett motoriserat översättningssteg för att skapa en full stack med dynamiska B-lägesbilder av hela hjärtat7. Så småningom ger denna procedur upphov (efter noggrann rumslig och tidsmässig registrering av de bilder som förvärvats i varje sondposition) till en 4D-bild med olika rumsliga upplösningar mellan riktningarna i och utanför planet. Samma problem med ojämn rumslig upplösning uppstår vid hjärt-MR (CMR),8 som fortfarande representerar guldstandarden i funktionell avbildning av hjärtat. Verklig isotrop 3D-avbildning kan istället erhållas med användning av både datortomografi (CT) och positronemissionstomografi (PET)9. PET ger ett mycket känsligt verktyg när det gäller bildsignal per mängd injicerad sond (i nanomolarområdet), även om den lider av en minskad rumslig upplösning jämfört med CT, MR eller US. Den största fördelen med PET är dess förmåga att visa de cellulära och molekylära mekanismerna som ligger till grund för organets patofysiologi. Till exempel, en PET-skanning efter injektion av [18F] FDG möjliggör rekonstruktion av en 3D-karta över glukosmetabolismen i kroppen. Genom att kombinera detta med dynamisk (dvs. tidsupplöst) datainsamling kan spårkinetisk modellering användas för att beräkna parametriska kartor över de metaboliska hastigheterna för glukosupptag (MRGlu), vilket kommer att ge viktig information om myokardiell livskraft10.

CT kräver betydande volymer av externa kontrastmedel (CA) vid höga koncentrationer (upp till 400 mg jod per ml) för att ge en mätbar förbättring av relevanta vävnadskomponenter (t.ex. blod kontra muskler), men det utmärker sig i rumslig och tidsmässig upplösning, särskilt när man använder toppmoderna mikro-CT-skannrar avsedda för smådjursavbildning. 11 En typisk sjukdomsmodell där hjärt-PET / CT kan tillämpas är experimentell utvärdering av hjärtinfarkt och hjärtsvikt och relaterat svar på terapi. Ett vanligt sätt att inducera MI hos små djur är genom kirurgisk ligering av den vänstra främre nedåtgående (LAD) kransartären12,13 och sedan longitudinellt utvärdera sjukdomsprogressionen och hjärtombyggnaden under de följande dagarna4. Icke desto mindre är den kvantitativa morfofunktionella utvärderingen av hjärtat hos små djur till stor del tillämplig även för andra sjukdomsmodeller, såsom utvärdering av åldrandets effekt på hjärtfunktion14 eller förändrat receptoruttryck i modeller av fetma15. Det presenterade avbildningsprotokollet är inte begränsat till någon given sjukdomsmodell och kan därför vara av det bredaste intresset i flera sammanhang av preklinisk forskning med små gnagare.

I denna uppsats presenterar vi ett start-till-slut-experimentellt protokoll för hjärtavbildning med hjälp av smådjursintegrerad PET / CT. Även om det presenterade protokollet är utformat för en specifik bimodal integrerad skanner, kan PET- och CT-delarna av det beskrivna förfarandet utföras oberoende på separata skannrar från olika tillverkare. I den PET/CT-skanner som används är operationssekvensen organiserad i ett förprogrammerat arbetsflöde. Huvudgrenarna i varje arbetsflöde är ett eller flera förvärvsprotokoll; Varje förvärvsprotokoll kan ha en eller flera grenar för specifika förbehandlingsprotokoll, och i sin tur kan varje förbehandlingsprotokoll ha en eller flera grenar för specifika rekonstruktionsprotokoll. Både beredningen av djuret på bildbädden och beredningen av de externa medel som ska injiceras under avbildningsförfarandena beskrivs. Efter avslutad bildförvärvsprocedur tillhandahålls exempelprocedurer för kvantitativ bildanalys baserad på allmänt tillgängliga programvaruverktyg. Huvudprotokollet är speciellt utformat för musmodeller; Även om musen fortfarande är den mest använda arten inom detta område, visar vi också en anpassning av protokollet för råttavbildning i slutet av huvudprotokollet. Representativa resultat visas för både möss och råttor, vilket visar vilken typ av utdata som kan förväntas med de beskrivna procedurerna. En grundlig diskussion görs i slutet av detta dokument för att betona fördelarna och nackdelarna med tekniken, kritiska punkter, samt hur olika PET-radiotracers kan användas med nästan ingen modifiering av förberedelse- och förvärvs- / rekonstruktionsstegen.

Protocol

Djurförsök utfördes i enlighet med rekommendationerna i Guide for the Care and Use of Laboratory Animals i de internationella riktlinjerna för hantering av försöksdjur, som krävs enligt det europeiska direktivet (direktiv 86/609/EEG från 1986 och direktiv 2010/63/UE) och italienska lagar (D.Lgs. 26/2014). 1. Inställning av PET / CT-bildprotokoll och arbetsflöde OBS: Protokollet som presenteras här är speciellt utformat för hjärtavbildnin…

Representative Results

I detta avsnitt visas typiska resultat för både PET- och CT-analys enligt de procedurer som hittills beskrivits. Figur 6 visar resultaten av den automatiska segmenteringen av myokardiell och LV-hålighet av [18F] FDG PET scan av en kontroll (frisk) CD-1-mus. Även om höger kammare inte alltid är synlig i de rekonstruerade bilderna, kan orienteringsaxlarna baserade på DICOM-huvudet användas för att korrekt skilja interventrikulär septum från de andra LV-väggarna, vilket k…

Discussion

Protokollet som presenteras i denna uppsats fokuserar på ett typiskt experimentellt förfarande för translationell kardiovaskulär forskning på smådjursmodeller av hjärtskada genom att använda högupplöst PET / CT-avbildning. De presenterade resultaten indikerar det höga kvantitativa och kvalitativa värdet av PET- och Cine-CT-bilder, vilket ger både funktionell och strukturell information om hela hjärtat om dess glukosmetabolism, form och dynamiken i dess sammandragning. Dessutom är alla erhållna bilder 3D, …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denna forskning stöddes delvis av JPI-HDHL-INTIMIC “GUTMOM” -projektet: Moderns fetma och kognitiv dysfunktion hos avkomman: Orsakseffektrollen för GUT MicrobiOMe och tidig kostprevention (projektnummer INTIMIC-085, italienska utbildningsministeriet, universitets- och forskningsdekret nr 946/2019).

Materials

0.9% sterile saline Fresenius Kabi 0.9% sodium chloride for injection
1025L Physiological Monitoring Small Animal Instruments Physiological monitoring system for small animal imaging
5 mL syringes Artsana Syringes with needle for injection of PET tracer
Atomlab 500 Else Nuclear PET Dose calibrator
Atrium software Inviscan Version 1.5.5 PET/CT operating software
Butterfly catheters Delta Med 27.5 G needle
Carimas software Turku PET Center Version 2.10 Image analysis software
Fenestra VC Medilumine Lipid emulsion iodinated contrast agent for small animals
Heat lamp Heat lamp with clamp and switch
Insulin syringes Artsana Syringes with needle for injection of CT CA
Iomeron 400 mgI/mL Bracco Iomeprol, vascular contrast agent
IRIS PET/CT Inviscan PET/CT scanner for small animals
Isoflurane Zoetis Inhalation anesthetic, 250 mL
OneTouch Glucometer Johnson&Johnson Medical Glucose meter kit
Osirix MD software Pixmeo Version 11 Image analysis software
Oxygen Air liquide Compressed gas
Rectal probe for 1025L Small Animal Instruments Rectal probe with cable for SAII 1025L systems
Respiratory sensor for 1025L Small Animal Instruments Respiratory pillow with tubings for SAII 1025L systems
TJ-3A syringe pump Longer Motorized syringe pump for CT CA injection

References

  1. Zaragoza, C. Animal models of cardiovascular diseases. Journal of Biomedicine and Biotechnology. 2011, 497841 (2011).
  2. Russell, J. C., Proctor, S. D. Small animal models of cardiovascular disease: Tools for the study of the roles of metabolic syndrome, dyslipidemia, and atherosclerosis. Cardiovascular Pathology. 15 (6), 318-330 (2006).
  3. Riehle, C., Bauersachs, J. Small animal models of heart failure. Cardiovascular Research. 115 (13), 1838-1849 (2019).
  4. Menichetti, L., et al. MicroPET/CT imaging of αvß3 integrin via a novel 68Ga-NOTA-RGD peptidomimetic conjugate in rat myocardial infarction. European Journal of Nuclear Medicine and Molecular Imaging. 40 (8), 1265-1274 (2013).
  5. Zhou, H., et al. Development of a micro-computed tomography-based image-guided conformal radiotherapy system for small animals. International Journal of Radiation Oncology, Biology, Physics. 78 (1), 297-305 (2010).
  6. Di Lascio, N., Kusmic, C., Stea, F., Faita, F. Ultrasound-based pulse wave velocity evaluation in mice. Journal of Visualized Experiments. (120), e54362 (2017).
  7. Dann, M. M., et al. Quantification of murine myocardial infarct size using 2-D and 4-D high-frequency ultrasound. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 322 (3), 359-372 (2022).
  8. Espe, E. K. Novel insight into the detailed myocardial motion and deformation of the rodent heart using high-resolution phase contrast cardiovascular magnetic resonance. Journal of Cardiovascular Magnetic Resonance. 15 (1), 82 (2013).
  9. Vanhove, C., et al. Accurate molecular imaging of small animals taking into account animal models, handling, anaesthesia, quality control and imaging system performance. EJNMMI Physics. 2 (1), 31 (2015).
  10. Garcia, M. J., et al. State of the art: Imaging for myocardial viability: A scientific statement from the American Heart Association. Circulation: Cardiovascular Imaging. 13 (7), 000053 (2020).
  11. Panetta, D., et al. Cardiac computed tomography perfusion: Contrast agents, challenges and emerging methodologies from preclinical research to the clinics. Academic Radiology. 28 (1), 1-18 (2020).
  12. Kusmic, C. Up-regulation of heme oxygenase-1 after infarct initiation reduces mortality, infarct size and left ventricular remodeling: experimental evidence and proof of concept. Journal of Translational Medicine. 12 (1), 89 (2014).
  13. Muthuramu, I., Lox, M., Jacobs, F., De Geest, B. Permanent ligation of the left anterior descending coronary artery in mice: A model of post-myocardial infarction remodelling and heart failure. Journal of Visualized Experiments. (94), e52206 (2014).
  14. Fischer, M., et al. Comparison of metabolic and functional parameters using cardiac 18F-FDG-PET in early to mid-adulthood male and female mice. EJNMMI Research. 11 (1), 7 (2021).
  15. Valenta, I., et al. Feasibility evaluation of myocardial cannabinoid type 1 receptor imaging in obesity: A translational approach. JACC: Cardiovascular Imaging. 11 (2), 320-332 (2018).
  16. Fueger, B. J., et al. Impact of animal handling on the results of 18F-FDG PET studies in mice. Journal of Nuclear Medicine. 47 (6), 999-1006 (2006).
  17. . Carimas User Manual Available from: https://turkupetcentre.fl/carimas/files/archive/Html/a1.html (2022)
  18. Peters, A. M. Graphical analysis of dynamic data: The Patlak-Rutland plot. Nuclear Medicine Communications. 15 (9), 669-672 (1994).
  19. Choi, Y., et al. Parametric images of myocardial metabolic rate of glucose generated from dynamic cardiac PET and 2-[18F]fluoro-2-deoxy-d-glucose studies. Journal of Nuclear Medicine. 32 (4), 733-738 (1991).
  20. Laffon, E., Marthan, R. Is Patlak y-intercept a relevant metrics. European Journal of Nuclear Medicine and Molecular Imaging. 48 (5), 1287-1290 (2021).
  21. Flores, J. E., McFarland, L. M., Vanderbilt, A., Ogasawara, A. K., Williams, S. -. P. The effects of anesthetic agent and carrier gas on blood glucose and tissue uptake in mice undergoing dynamic FDG-PET imaging: Sevoflurane and isoflurane compared in air and in oxygen. Molecular Imaging and Biology. 10 (4), 192-200 (2008).
  22. Ng, C. K. Sensitivity of myocardial fluorodeoxyglucose lumped constant to glucose and insulin. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 260 (2), 593-603 (1991).
  23. Shoghi, K. I., Welch, M. J. Hybrid image and blood sampling input function for quantification of small animal dynamic PET data. Nuclear Medicine and Biology. 34 (8), 989-994 (2007).
  24. Heuberger, J., Pixmeo, S., Rosset, A. OsiriX User Manual. Blurb. , (2017).
  25. Cerqueira, M. D., et al. Standardized myocardial segmentation and nomenclature for tomographic imaging of the heart. A statement for healthcare professionals from the Cardiac Imaging Committee of the Council on Clinical Cardiology of the American Heart Association. Circulation. 105 (4), 539-542 (2002).
  26. Kolanowski, T. J., et al. Multiparametric evaluation of post-MI small animal models using metabolic ([18F]FDG) and perfusion-based (SYN1) heart viability tracers. International Journal of Molecular Sciences. 22 (22), 12591 (2021).
  27. Guiducci, L., et al. Contribution of organ blood flow, intrinsic tissue clearance and glycaemia to the regulation of glucose use in obese and type 2 diabetic rats: A PET study. Nutrition Metabolism and Cardiovascular Diseases. 21 (9), 726-732 (2011).
  28. Tadinada, S. M., et al. Functional resilience of C57BL/6J mouse heart to dietary fat overload. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 321 (5), 850-864 (2021).
  29. Dreyfuss, A. D., et al. A novel mouse model of radiation-induced cardiac injury reveals biological and radiological biomarkers of cardiac dysfunction with potential clinical relevance. Clinical Cancer Research. 27 (8), 2266-2276 (2021).
  30. Hsu, B. PET tracers and techniques for measuring myocardial blood flow in patients with coronary artery disease. Journal of Biomedical Research. 27 (6), 452-459 (2013).
  31. Dinkel, J., et al. Intrinsic gating for small-animal computed tomography. Circulation: Cardiovascular Imaging. 1 (3), 235-243 (2008).
  32. Kuntz, J., et al. Fully automated intrinsic respiratory and cardiac gating for small animal CT. Physics in Medicine and Biology. 55 (7), 2069-2085 (2010).
  33. Li, Y., Zhang, W., Wu, H., Liu, G. Advanced tracers in PET imaging of cardiovascular disease. BioMed Research International. 2014, 504532 (2014).
  34. Kim, D. -. Y., Cho, S. -. G., Bom, H. -. S. Emerging tracers for nuclear cardiac PET imaging. Nuclear Medicine and Molecular Imaging. 52 (4), 266-278 (2018).
  35. Maddahi, J., Packard, R. R. S. Cardiac PET perfusion tracers: Current status and future directions. Seminars in Nuclear Medicine. 44 (5), 333-343 (2014).
  36. Bentourkia, M. Kinetic modeling of PET data without blood sampling. IEEE Transactions on Nuclear Science. 52 (3), 697-702 (2005).
  37. Lammertsma, A. A. Forward to the past: The case for quantitative PET imaging. Journal of Nuclear Medicine. 58 (7), 1019-1024 (2017).
  38. Nahrendorf, M., et al. High-resolution imaging of murine myocardial infarction with delayed-enhancement cine micro-CT. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 292 (6), 3172-3178 (2007).
  39. Badea, C. T., Fubara, B., Hedlund, L. W., Johnson, G. A. 4-D micro-CT of the mouse heart. Molecular Imaging. 4 (2), 110-116 (2005).
  40. Technical Resources. MediLumine Available from: https://www.medilumine.com/technical-resources (2019)
  41. Nebuloni, L., Kuhn, G. A., Müller, R. A Comparative analysis of water-soluble and blood-pool contrast agents for in vivo vascular imaging with micro-CT. Academic Radiology. 20 (10), 1247-1255 (2013).
  42. Panetta, D., et al. Performance evaluation of the CT component of the IRIS PET/CT preclinical tomograph. Nuclear Instruments & Methods in Physics Research Section A: Accelerators Spectrometers Detectors and Associated Equipment. 805, 135-144 (2016).
  43. Gu, J., et al. At what dose can total body and whole abdominal irradiation cause lethal intestinal injury among C57BL/6J mice. Dose-Response. 18 (3), 1559325820956783 (2020).
  44. Amirrashedi, M., Zaidi, H., Ay, M. R. Advances in preclinical PET instrumentation. PET Clinics. 15 (4), 403-426 (2020).
  45. Clark, D. P., Badea, C. T. Advances in micro-CT imaging of small animals. Physica Medica. 88, 175-192 (2021).
  46. Belcari, N., Del Guerra, A., Panetta, D., Grupen, C., Buvat, I. High-Resolution and Animal Imaging Instrumentation and Techniques. Handbook of Particle Detection and Imaging. , 1497-1535 (2021).
  47. Wang, G., Rahmim, A., Gunn, R. N. PET Parametric imaging: Past, present, and future. IEEE Transactions on Radiation and Plasma Medical Sciences. 4 (6), 663-675 (2020).
  48. Befera, N. T., Badea, C. T., Johnson, G. A. Comparison of 4D-microSPECT and microCT for murine cardiac function. Molecular Imaging and Biology. 16 (2), 235-245 (2014).
  49. van Deel, E., Ridwan, Y., van Vliet, J. N., Belenkov, S., Essers, J. In vivo quantitative assessment of myocardial structure, function, perfusion and viability using cardiac micro-computed tomography. Journal of Visualized Experiments. (108), e53603 (2016).
  50. Lee, C. -. L., et al. Assessing cardiac injury in mice with dual energy-microCT, 4D-microCT and microSPECT imaging following partial-heart irradiation. International Journal of Radiation Oncology, Biology, Physics. 88 (3), 686-693 (2014).
  51. Harms, H., et al. Comparison of clinical non-commercial tools for automated quantification of myocardial blood flow using oxygen-15-labelled water PET/CT. European Heart Journal – Cardiovascular Imaging. 15 (4), 431-441 (2013).
  52. Nesterov, S. V., et al. Myocardial perfusion quantitation with 15O-labelled water PET: High reproducibility of the new cardiac analysis software (CarimasTM). European Journal of Nuclear Medicine and Molecular Imaging. 36 (10), 1594-1602 (2009).
  53. Nesterov, S. V., et al. Myocardial perfusion quantification with Rb-82 PET: Good interobserver agreement of Carimas software on global, regional, and segmental levels. Annals of Nuclear Medicine. 36, 507-514 (2022).
  54. Nesterov, S. V., et al. One-tissue compartment model for myocardial perfusion quantification with N-13 ammonia PET provides matching results: A cross-comparison between Carimas, FlowQuant, and PMOD. Journal of Nuclear Cardiology. , (2021).
  55. Thackeray, J. T., Kuntner-Hannes, C., Haemisch, Y. Preclinical Multimodality Imaging and Image Fusion in Cardiovascular Disease. Image Fusion in Preclinical Applications. , 161-181 (2019).
  56. Vohra, R., Batra, A., Forbes, S. C., Vandenborne, K., Walter, G. A. Magnetic resonance monitoring of disease progression in mdx mice on different genetic backgrounds. The American Journal of Pathology. 187 (9), 2060-2070 (2017).
  57. Baehr, A., et al. Agrin promotes coordinated therapeutic processes leading to improved cardiac repair in pigs. Circulation. 142 (9), 868-881 (2020).
  58. Lalwani, K., et al. Contrast agents for quantitative microCT of lung tumors in mice. Comparative Medicine. 63 (6), 482-490 (2013).
  59. Bertoldo, A., et al. Evaluation of compartmental and spectral analysis models of [18F]FDG kinetics for heart and brain studies with PET. IEEE Transactions on Bio-medical Engineering. 45 (12), 1429-1448 (1998).
  60. Li, Y., Kundu, B. K. An improved optimization algorithm of the three-compartment model with spillover and partial volume corrections for dynamic FDG PET images of small animal hearts in vivo. Physics in Medicine and Biology. 63 (5), 055003 (2018).
  61. Mabrouk, R., Dubeau, F., Bentourkia, M., Bentabet, L. Extraction of time activity curves from gated FDG-PET images for small animals’ heart studies. Computerized Medical Imaging and Graphics. 36 (6), 484-491 (2012).
check_url/64066?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Panetta, D., Guzzardi, M. A., La Rosa, F., Granziera, F., Terlizzi, D., Kusmic, C., Iozzo, P. High-Resolution Cardiac Positron Emission Tomography/Computed Tomography for Small Animals. J. Vis. Exp. (190), e64066, doi:10.3791/64066 (2022).

View Video